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肺癌組織中miR-125b-1基因的突變及其臨床意義

2010-10-29 06:22霍學云鄭永明
實用醫藥雜志 2010年1期
關鍵詞:單鏈基因突變產物

霍學云,蘇 琳,鄭永明

肺癌是常見的惡性腫瘤之一,如今由肺癌及其轉移瘤所致的病死率已占癌癥病死率之首。盡早發現、診斷及治療是降低肺癌病死率的有效途徑,而要做到早發現、早診斷、早治療就必須明確其發生、發展及轉移機制。肺癌的形成是一個多階段、多步驟的復雜過程。微小 RNA(microRNAs,miRNA)與腫瘤的發生明顯相關[1],在人類腫瘤中miRNA的表達水平異?;虬l生突變[2]。miR-125b-1定位于11q23-24雜合型缺失(LOH)的微小區域,這一區域在肺部腫瘤、乳腺癌和卵巢癌中存在突變或缺失[3],提示其可能與肺癌的發生相關。目前對miRNA與腫瘤關系的研究中,通常只是鑒定miRNA的表達豐度,其核苷酸序列是否突變尚無報道。為了從DNA水平研究miR-125b-1基因異常與肺癌發生的關系,筆者應用聚合酶鏈反應-單鏈構象多態性 (PCRSSCP)分析方法檢測人肺癌組織miR-125b-1基因的突變情況,并分析了其與肺癌患者臨床病理生理特征和預后的關系?,F將結果報告如下。

1 資料與方法

1.1 一般資料 119例肺癌組織標本取自筆者所在醫院病理科存檔的2004-06~2006-10的組織蠟塊。其中男92例,女27例;年齡30~76歲,平均(56±12)歲。每例均有詳細的臨床資料和手術記錄,所有患者術前均未進行任何抗腫瘤治療。按照WHO標準(1999年第3版)進行組織學分類,鱗癌50例,腺癌51例,大細胞癌9例,小細胞癌9例;按國際抗癌聯盟 (UICC,1997年第5版)TNM分期,T1期 34例,T2期 61例,T3期 22例,T4期 2例;N0期54例,N1期30例,N2期 31例,N3期 4例。另取同期手術的肺良性病變肺組織42例作對照,其中男28例,女 14 例;年齡 10~60 歲,平均(39±10)歲;支氣管擴張14例,肺結核瘤13例,炎性假瘤11例,肺膿腫4例。

1.2 患者隨訪資料 以門診、電話、隨訪信形式對119例試驗組患者進行隨訪,隨訪時間至2007-05,有隨訪結果的有94例,失訪25例。94例中,死亡人數(直接死于肺癌的患者)為63例,截尾人數(失訪、死于其它原因或持續生存至本文總結時)為31例,中位生存期是41個月。

1.3 模板DNA的提取 石蠟包埋組織模板DNA的提取參考文獻[4]進行。1%瓊脂糖電泳鑒定,紫外分光光度儀測定OD值計算出DNA含量。取200ng作為PCR模板。

1.4 引物設計 根據ensembl數據庫中的miR-125b-1基因序列,應用在線引物設計程序primer3(http://frodo.wi.mit.edu/cgi-bin/primer3/primer3_www.cgi)設計引物,并在 http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/網站上比對,選擇產物唯一性、大小228bp的引物。引物序列:上游5'-CGAACAGAAATTGCC TGTCA-3',下游 5'-CAATCACCTCAGACAAACTTT CTT-3',由上海生工生物技術公司合成。

1.5 PCR擴增 20 μl反應體系,含10×擴增緩沖液2.0 μl,4 種 dNTP 混合物 0.4 μl,引物混合物 2.0 μl,Taq DNA 聚 合 酶 0.1 μl,Mg2+1.2 μl,ddH2O12.3 μl,模板DNA2.0μl。PCR反應條件:94℃預變性10min;94℃變性 30 s,56℃復性 30 s,72℃延伸 30 s,共 35個循環后,最后72℃延伸7min。反應完成后,取5μl反應液用1%瓊脂糖凝膠電泳,觀察PCR產物擴增情況,在預期位置有清晰擴增帶之后進行SSCP。

1.6 SSCP分析 取10 μl PCR產物, 加入 10 μl變性劑 (95%甲酰胺,10mmol/LEDTA,0.02%溴酚藍),95℃變性5 min,立即于冰浴中驟冷,再于10%變性聚丙烯酰胺凝膠電泳(120V,4℃電泳18~20 h)。電泳結束后將其浸在含0.5 μg/ml溴化乙錠的1×TBE緩沖液中染色30~45 min,在紫外燈下觀察變性后的二條單鏈電泳遷移率,并比較肺癌患者和正常對照者的結果。

1.7 統計學處理 本組所得數據采用χ2檢驗、非參數統計中Spearman等級相關、Kaplan-Meier生存曲線分析和對數秩和檢驗進行分析,數據統計在SPSS13.0軟件上進行。

2 結 果

2.1 DNA抽提結果 所抽提DNA樣本濃度及純度,均可用于后續實驗研究(PCR反應)。

2.2 PCR擴增產物的鑒定 設計的miR-125b-1PCR產物長度228bp,其中包括含有成熟的miR-125b-1發夾結構前體序列及其兩側序列。在119例肺癌組織和42例肺良性病變組織中全部擴增成功,PCR擴增產物均呈228bp大小的清晰目的片段條帶,由含EB的1%瓊脂糖電泳驗證,見圖1所示。

圖1 PCR擴增產物的電泳圖M為對照物(100~500bp);1~3為肺癌組織;N為癌旁正常肺組織

2.3 PCR-SSCP分析 119例肺癌組織和42例肺良性病變組織的PCR擴增產物進行SSCP后,在同一膠片中進行比較,單鏈帶出現異常區帶者,視為有突變。結果顯示119例肺癌組織中PCR擴增產物有40例(34%)出現異常泳動區帶,說明在擴增的靶片段中檢測到堿基突變。見圖2。

圖2 PCR-SSCP電泳分析圖ssDNA為單鏈DNA,dsDNA為殘存雙鏈DNA,→為異常泳動區帶

2.4 基因突變與肺癌患者臨床病理和生理特征之間的關系 肺癌組織中miR-125b-1基因突變與淋巴結轉移呈顯著性相關,N分期越高者,發生基因突變概率越高,進一步行Spearman相關分析顯示兩者呈顯著性正相關(r=0.285,P<0.01);與臨床分期呈顯著性相關,Spearman相關分析顯示兩者呈顯著性正相關(r=0.241,P<0.01)。而 miR-125b-1 基因的缺失與肺癌患者細胞分化程度、病理類型、原發腫瘤分期等均無明顯關系(P>0.05)。見表1。

2.5 肺癌組織中miR-125b-1基因突變與肺癌患者術后生存率的關系 將miR-125b-1基因突變組和未突變組進行Kaplan-Meier生存曲線分析和對數秩和檢驗,結果發現miR-125b-1基因突變組術后生存時間顯著低于非突變組(P<0.05),見圖3。

3 討 論

微小 RNA(microRNAs,miRNA)是一類近年來新發現的長約22個核苷酸 (nt)的非編碼的單鏈RNA分子,在生物中廣泛存在,在進化中高度保守,在生長、發育、分化、增殖、凋亡等生理過程中發揮重要的調控作用。miRNA最新有關研究表明:miRNA與腫瘤緊密關聯,已經證實miR-32、miR-125b-1、let-7與肺癌的發生相關:其中miR-32位于9q31.2,這一區域在許多腫瘤中是缺失高頻區,包括肺鱗癌[5]、膀胱癌[6]、頭頸部腫瘤[7]等,其表達在肺癌中降低。在本文119例肺癌組織中有40例發生突變,突變率34%;而在42例肺良性病變組織中未有突變。本文結果從分子水平說明miR-125b-1基因突變與肺癌的發生、發展可能有密切關系。

表1 miR-125b-1基因缺失與肺癌患者臨床和病理生理特征的關系

圖3 基因突變組和基因未突變組的Kaplan-Meier生存曲線

現有的研究表明:miR-125b-1是長約22個核苷酸(22nt)的非編碼 RNA,它是由長 88nt、帶有發夾結構的pre-miRNA剪切而成,pre-miRNA的序列和結構的變化對于接下來形成成熟的miRNA的剪切反應影響很大[8],因此在miRNA加工途徑中任何突變,都可能擾亂基因的正常調控而導致腫瘤的發生??傊甿iR-125b-1基因突變有可能是miR-125b-1表達豐度的下降的原因之一,或與其表達豐度的下降呈現協同作用,使成熟miR-125b-1在肺癌中的功能發生相應改變。

此外,本文比較了肺癌組織中miR-125b-1基因突變與肺癌患者的臨床病理生理特征之間關系,發現基因突變與淋巴結轉移有密切的關系 (P<0.05),且基因突變與淋巴結轉移之間存在正相關關系,提示可能在肺癌細胞的轉移過程中起重要作用,增加患者發生淋巴結轉移的風險性。應用Kaplan-Meier生存曲線分析,發現基因突變是肺癌患者預后不良的危險因素,可能與肺癌進展的某些調控機制有關。

綜上所述,本文結果提示miRNA基因可能參與了肺癌的發生、發展過程。堿基突變很可能改變miRNA的功能,從而誘發腫瘤,檢測腫瘤組織特定miRNA序列是否突變,有利于了解腫瘤發生發展的機理。

[1]Croce CM,Calin GA.miRNAs,cancer,and stem cell division[J].Cell,2005,122(1):6-7.

[2]Hammond SM.MicroRNAs as oncogenes.Curr Opin Genet Dev,2006,16(1):4-9.

[3]Iorio MV,Ferracin M,Liu CG,et al.MicroRNA gene expression deregulation in human breast cancer.Cancer Res,2005,65(16):7065-7070.

[4]張維銘.現代分子生物學實驗手冊.北京:科學出版社,2001.80-85.

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[8]Bracht J,Hunter S,Eachus R,et al.Trans-splicing and polyadenylation of let-7 microRNA primary transcripts.RNA,2004,10(10):1586-94.

[2009-09-26收稿,2009-10-28修回]

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