豬傳染性胸膜肺炎的綜合防治措施

袁芳艷等

摘要：豬傳染性胸膜肺炎是由豬胸膜肺炎放線桿菌引起的一種高度接觸性呼吸道傳染病。豬胸膜肺炎放線桿菌特異性地寄生在豬體內，傳染性強，傳播速度快，給養豬業的健康發展構成極大的威脅。對豬傳染性胸膜肺炎的病原學、流行病學、診斷及綜合防治措施進行了詳細分析，以期對臨床防控該病提供參考。

關鍵詞：豬傳染性胸膜肺炎；流行病學；診斷方法；綜合防治

中圖分類號：S858.28 文獻標識碼：B 文章編號：1007-273X（2015）08-0023-02

豬傳染性胸膜肺炎的主要病原菌是豬胸膜肺炎放線桿菌（Actinobacillus Pleuropneumoniae，APP），該病以飛沫和接觸性傳播為主，主要臨床特征有急性出血性肺炎和亞急性慢性壞死性肺炎。隨著集約化養豬業的發展，國家及地區間引種頻繁，該病發病率及死亡率大大高于以前。我國自1987年首次發現該病，現該病已經成為育肥豬和種豬死亡的主要原因之一，血清型也越來越復雜，給養豬業造成了巨大的經濟損失。

1 病原學

豬胸膜肺炎放線桿菌是豬傳染性胸膜肺炎的致病菌。最早是Pattison于1957 年在英國首次發現并報道[1]。曾稱為胸膜肺炎嗜血桿菌（Hemophilus pleura pneumonia）或副溶血嗜血桿菌（Haemophilus parahaemolytics）或豬胸膜肺炎嗜血桿菌。APP是一種兼性厭氧的革蘭氏陰性菌，呈短桿菌或球桿菌，具有莢膜，不產生芽孢，沒有運動性。APP生長條件要求苛刻，在巧克力瓊脂培養基呈不透明圓形菌落，在瓊脂血平板上呈β溶血，在金黃色葡萄球菌周圍有衛星現象。

根據莢膜多糖血清學反應的不同，迄今為此，已報道的APP血清型共有15種。根據生長是否依賴v因子（煙酰胺腺嘌呤二核苷酸，或輔酶I，NAD），又可將APP分為2種生物型。生物I型（血清型1-12、15型）依賴NAD，而生物II型（血清型13、14）則不依賴[2]。其中，APP生物I型具有毒力。

豬胸膜肺炎放線桿菌的毒力因子主要有RTX毒素、莢膜多糖、脂多糖、外膜蛋白等，在APP抗原的識別及保護性免疫中具有重要作用。

2 流行病學

豬傳染性胸膜肺炎只感染豬，不感染人。豬傳染性胸膜肺炎對豬的感染范圍很廣，各種年齡及性別的豬都可感染，尤其以斷奶仔豬最易感。發病速度快，死亡率高，損失較大。

發病豬和慢性感染帶菌豬是豬傳染性胸膜肺炎的傳染源，主要通過飛沫或接觸傳播，病原菌可通過呼吸、咳嗽、噴嚏等方式，經呼吸道直接傳播，也可以通過運輸車輛、飼養或免疫用器具、工作人員等間接傳播。

3 診斷方法

3.1 臨床診斷

根據病程的發展，在臨床上一般可將豬傳染性胸膜肺炎分為最急性型、急性型、慢性型三種類型。

最急性型豬傳染性胸膜肺炎發病突然且病程短，體溫可高達41.5 ℃以上，精神抑郁，食量急劇下降甚至廢絕；病豬的口周圍、鼻、眼、耳皮膚發紺；隨著病情的發展，病豬呼吸出現障礙，張口喘息；站立困難，常常呈犬臥姿勢；口鼻流出帶血樣液體，氣管和支氣管腔內有大量泡沫樣血色分泌物；肺出現充血、出血、壞死等病變。一般于出現臨床癥狀后1～3 d內死亡，死亡率高達80%～100%。

急性型病豬體溫升高，精神抑郁，食欲減少，咳嗽或張口呼吸，喉頭充滿血樣液體；病豬喜臥，常呈犬臥或犬坐姿勢；耳、鼻、四肢末端發紺，常于發病后3～5 d死亡。若豬能耐過，癥狀逐漸消退，則可康復或轉為慢性型，此時病豬呈間歇性咳嗽，生長遲緩。肺病灶區呈大理石樣的花紋；胸腔有混濁的積液。

慢性型病豬多由急性轉變而來。病豬體溫正?；蚵愿?，食量不大，有程度不一的間歇性咳嗽，具有輕微的呼吸障礙。若病豬耐過，也會生長緩慢，且是潛在的病原菌攜帶者，存在散毒的危險?；虬l生繼發感染或混合感染，使損失明顯加大。剖檢可見肺臟有壞死區、大小不等的結節；肺臟與胸膜發生纖維素性粘連；心臟內有大量心包液及菜花樣贅生物；關節腫大，有黃色積液。

3.2 實驗室診斷

包括直接鏡檢、細菌的分離鑒定和血清學診斷。

從豬鼻或口腔分泌物、氣管、扁桃體、肺，淋巴結、胸膜及胸積液、關節液等處采集病料，采集病料時最好在無菌操作臺內。

（1）鏡檢：從氣管、肺臟、關節液等取樣涂片，革蘭氏染色后鏡檢，選取呈現小球桿或線桿狀的革蘭氏陰性菌做進一步鑒定。

（2）培養基分離：將革蘭氏染色鏡檢后細菌劃線接種于表皮葡萄球菌的TSA平板（含5%綿羊血），于CO2培養箱內培養24 h后，選取表面光滑、圓形、邊緣整齊、針尖大小的菌落，進一步開展生化特性、溶血性、CAMP試驗等。

（3）血清學診斷：包括2-巰基乙醇試管凝集試驗、乳膠凝集試驗、瓊脂擴散試驗和酶聯免疫吸附試驗等方法。PCR和ELISA因具有特異、敏感、快速、操作方便等特征而被廣泛應用。DA等[3]利用a p xⅣA建立了Southern印跡檢測方法，李樹清等[4]根據apxⅣ毒素基因和16S rRNA序列，建立了檢測APP的復合PCR方法。張志妮等[5]利用apxⅣ毒素基因序列的保守區域設計特異性引物，建立檢測APP標準菌株血清型1-12的 PCR方法，可最低檢出 DNA 含量為9 pg/μL ，而副豬嗜血桿菌、豬放線桿菌、豬源多殺性巴氏桿菌、豬霍亂沙門氏菌、豬源支氣管敗血波氏菌、豬丹毒桿菌的PCR檢測結果都為陰性。

4 綜合防治措施

防治豬傳染性胸膜肺炎的重點是生物安全管理，牽涉到引種，飼養管理、免疫和治療等方面。

4.1 嚴把引種關

規范引種檢疫，杜絕病原傳播。堅持自繁自養原則，盡量減少引種或采取人工授精的方式來減少病原傳入。豬售出或轉欄時，采取全進全出的方式。應選擇非疫病區豬進行引種，并嚴格按照引種檢疫規定執行。

4.2 加強飼養管理

保持適當飼養密度，密度越高，豬群發生豬傳染性胸膜肺炎的可能性越大。嚴格按照全進全出的方式。母豬進產房前，要徹底清洗干凈，再反復消毒并且空置幾天。仔豬盡量保證產后吃上足夠的初乳。仔豬斷奶轉欄時盡量減少溫度等環境應激、按體重分開飼養，盡量維持同一欄內的仔豬體重和采食量相似。提高豬群飼料的質量，保證充足的蛋白質和能量，適當添加維生素、微量元素等。

4.3 疫苗免疫

根據疫苗的最佳免疫時機制定并完善免疫程序，可免疫2次，35～40日齡仔豬第1次免疫接種，首免后4周加強免疫1次。目前常用的豬傳染性胸膜肺炎疫苗為滅活疫苗，可以降低病豬死亡率，起到一定的保護效果，但不能降低發病率和慢性感染機率，且APP血清型眾多及地流行型有別，不同血清型之間交叉保護效果有限，導致免疫效果不理想。臨床感染APP后存活的豬具有對所有血清型菌株的保護力，表明弱毒活疫苗具有良好的應用前景。張倩等[6]等構建了APP血清7型菌株突變株WF83ΔapxⅡC/apxⅠAN/apxⅠAC，與親本菌株相比，突變株體外培養無溶血活性，小鼠試驗表明毒性也顯著降低，為開發成弱毒活疫苗打下了基礎。

4.4 藥物治療

豬傳染性胸膜肺炎病情發展迅速，要適當采用抗生素治療。臨床豬放線桿菌耐藥性較強，而且因為不同豬場用藥情況差異，因此其耐藥性也存在差異，在使用抗生素前要做藥敏試驗。根據本研究室近幾年的藥敏試驗結果，氟苯尼考、磺胺類及頭孢類敏感性較高，對病豬可采取口服或肌肉注射的方式治療，如果病豬群還混合感染病毒病，則需要添加抗病毒藥物治療。

5 小結

豬傳染性胸膜肺炎是嚴重影響養豬業的呼吸道疾病，豬傳染性胸膜肺炎的防控工作是一項關聯到引種、消毒、飼料、疫病防治等多個方面的綜合措施，而且要根據豬場的實際情況對癥下藥?，F代科學技術的飛速發展，加快了人們對APP致病機理的研究，也有助于更加簡便靈敏的檢測方法和更環保而高效的疫苗的研發。

參考文獻：

[1] NICOLET J. Actinobacillus pleuropneumoniae[C]. In：Leman A D， straw B， Mengeling W L， et al.Diseases of swine[M]. Lowa stare university Press， Ame， 1992.401-408.

[2] BLACKALL P J， KLAASEN H L， VAN DEN BOSCH H， et al. Proposal of a new serovar of Actinobacillus pleuropneumoniae： sreovar 15[J]. Vet Microbiol， 2002， 84（1-2）： 47-52.

[3] DA COSTA M M， KLEIN C S ， BALESTRIN R， et al. Evaluation of PCR based on gene apxⅣA associated with 16S rDNA sequencing for the identification of Actinobacillus pleuropneumoniae and related species [J]. Curr Microbiol，2004，48 （3）：189-195.

[4] 李樹清，易建平，陳志飛，等.復合 PCR 鑒定胸膜肺炎放線桿菌方法的建立及初步應用[J].微生物學報，2005，45（6）：966-969.

[5] 張志妮，顧萬軍，黃良宗，等.豬胸膜肺炎放線桿菌致病性生物Ⅰ型PCR 診斷方法的建立[J] .揚州大學學報 （農業與生命科學版），2010，3（1）：6-9.

[6] 張 倩，陳廣力，文心田，等.胸膜肺炎放線桿菌復合減毒突變株WF83ΔapxⅡC/apxⅠAN/apxⅠAC的構建[J].農業生物技術學報，2015，23（7）：841-850.