雙重化控對春玉米灌漿期穗位葉和籽粒蔗糖代謝關鍵酶活性的影響

李光彥 王慶燕 許艷麗 盧 霖 焦 瀏 董學瑞 董志強

中國農業科學院作物科學研究所 / 農業部作物生理生態與栽培重點開放實驗室， 北京100081

雙重化控對春玉米灌漿期穗位葉和籽粒蔗糖代謝關鍵酶活性的影響

李光彥 王慶燕 許艷麗 盧 霖 焦 瀏 董學瑞 董志強*

中國農業科學院作物科學研究所 / 農業部作物生理生態與栽培重點開放實驗室， 北京100081

以中單909和吉單35為材料， 設置乙矮合劑和聚糠萘合劑雙重化控處理， 研究玉米穗位葉和籽粒中蔗糖代謝相關酶活性的動態變化， 探討雙重化控調控玉米碳代謝的生理機制， 為建立玉米高產穩產的化學調控技術提供理論基礎。結果表明， 雙重化控提高了灌漿期穗位葉蔗糖合成酶（SS）和蔗糖磷酸合成酶（SPS）的活性， 尤其顯著提高灌漿后期（花后50 d）蔗糖合成能力， 提高灌漿前期（花后10～20 d）穗位葉蔗糖含量， 降低后期（花后30～50 d）蔗糖含量。雙重化控處理對玉米籽粒蔗糖合成酶（合成方向）和蔗糖磷酸合成酶活性的影響較小， 蔗糖合成酶分解方向活性呈升高趨勢； 中單909籽粒蔗糖含量灌漿前期（花后10 d）升高， 灌漿后期（花后50 d）降低， 花后20～40 d影響不顯著， 吉單35籽粒蔗糖含量花后10～20 d降低， 30～40 d升高， 50 d沒有顯著差異。雙重化控處理提高了中單909和吉單35灌漿中期和灌漿中后期灌漿速率， 使兩品種粒重和產量均顯著提高， 分別比對照增產4.61%和7.78%。本研究說明， 乙矮合劑和聚糠萘合劑雙重化控處理可通過調控源庫蔗糖代謝關鍵酶的活性， 促進蔗糖在源端的合成和在庫端的降解，從而促進碳同化物向籽粒的轉運， 達到高產。

春玉米； 乙矮合劑； 聚糠萘合劑； 蔗糖； 蔗糖代謝關鍵酶

作物高產不僅需要功能葉片強大的光合生產能力， 而且需要光合產物合理的運輸分配［1］。蔗糖是重要的光合產物， 為植物體內運輸的主要物質， 又是碳水化合物積累和貯藏的主要形式， 此外， 它還是細胞代謝的調節因子， 可能通過影響基因表達發揮作用［2-3］。蔗糖的代謝是一個復雜的過程， 受多種因素的影響。與蔗糖代謝和積累密切相關的酶主要有轉化酶（Inv）、蔗糖磷酸合成酶（SPS）和蔗糖合成酶（SS）， 溫度、密度、激素等因素主要通過影響蔗糖代謝相關酶活性間接影響蔗糖代謝與積累。趙福成等［4］研究發現高溫降低甜玉米SPS和SS合成活性， 提高SS分解活性， 導致糖分含量降低品質變劣； 覃鴻妮等［5］和趙宏偉等［6］認為高密度不利于玉米功能葉中蔗糖合成； 王俊忠等［7］和曹玉軍等［8］研究發現施氮量和施鉀量影響功能葉片和籽粒中蔗糖代謝關鍵酶活性； 王慶燕等［9］對春玉米苞葉和穗位葉噴施油菜素內酯顯著提高玉米光合能力， 促進穗位葉蔗糖合成， 增加籽粒中蔗糖積累， 提高籽粒干物重； 劉鵬等［10］對甜質型和普通型玉米籽粒發育過程中蔗糖代謝和淀粉合成相關酶活性動態比較研究發現， 甜質型玉米蔗糖積累較多的原因主要是蔗糖合成能力增加而非降解量減少。

前人在營養運籌、種植方式、化控調節等方面采取措施［5-9］， 從促進玉米功能葉片中光合能力和蔗糖合成能力、促進蔗糖的轉運和積累角度出發， 探討玉米高產的途徑。植物生長調節劑在促進玉米根系生長、調控株型結構、提高抗逆能力和增加產量等方面的作用已得到普遍重視［11］。ECK主要成分為乙烯利和矮壯素， 在玉米六展葉拔節后噴施， 可有效矮化株高、降低群體倒伏， 并且在防止群體早衰方面效果顯著［12］； PKN主要成分為生長素和細胞分裂素， 是一種在東北地區廣泛應用的抗冷調節劑，具有促進碳氮代謝、提高籽粒灌漿速率和后期脫水速率的效果［13-15］。本研究采用乙矮合劑與聚糠萘合劑雙重化控方法， 從調節源庫代謝的角度， 研究雙重化控對功能葉和籽粒中蔗糖代謝關鍵酶活性的影響， 探討東北春玉米高產的化控技術途徑。

1 材料與方法

1.1 試驗地概況

吉林省公主嶺市中國農業科學院作物科學研究所試驗站（43°29′55″ N， 124°48′43″ E）耕層土壤（0～20 cm） pH 6.0， 含有機質2.62%、全氮0.13%、速效氮125.8 mg kg-1、速效磷24.46 mg kg-1、速效鉀187.74 mg kg-1。

1.2 試驗材料與設計

選用耐密型玉米品種中單909 （以下簡稱ZD）和稀植大穗型玉米吉單35 （以下簡稱JD）。種植密度為7.5萬株 hm-2， 60 cm等行距。全生育期施肥量N∶P2O5∶K2O = 247.5∶97.5∶120.0 （kg hm-2）， 基施尿素330 kg hm-2、磷酸二銨165 kg hm-2、氯化鉀127.5 kg hm-2。拔節期每公頃追施尿素177 kg、磷酸二銨55.5 kg、氯化鉀79.5 kg， 其他管理同當地大田生產。雙重化控處理（TR）， 于六展葉期葉面噴施乙矮合劑0.45 L hm-2， 九展葉葉面噴施聚糠萘合劑 0.45 L hm-2， 每公頃兌水225 L， 對照（CK）噴施等量清水。采用隨機區組設計， 3次重復。試驗小區面積10.0 m × 4.8 m。2013年5月9日播種， 9月25日收獲。2015 年5月1日播種， 10月3日收獲。

乙矮合劑（ethylene-chlormequat-potassium， 簡稱 ECK）、聚糠萘合劑（PASP-KT-NAA， 簡稱 PKN）由中國農業科學院作物科學研究所栽培生理系研制，黑龍江禾田豐澤興農科技開發有限公司生產提供。

1.3 測定項目與方法

開花期選取同天開花且長勢長相基本相同的單株掛牌標記， 從開花之日起， 每10 d取樣1次（去除葉脈穗位葉中部及穗中部籽粒）， 液氮速凍后放入-80℃冰柜儲存待測生理指標。

1.3.1 蔗糖與蔗糖代謝關鍵酶活性 參照劉鵬等［10］的方法測定蔗糖含量、蔗糖磷酸合成酶活性（SPS），并分別測定蔗糖合成酶（SS）合成方向和分解方向酶活性。參照趙智中等［16］的方法并稍加改進測定酸性轉化酶（AI）和中性轉化酶（NI）活性。加入pH 4.7 （AI）/ pH 7.0 （NI） 0.08 mol L-1的乙酸-K3PO4緩沖液（內含0.05 mol L-1的蔗糖）和酶提取液。將上述反應液在37℃下保溫10 min， 經沸水浴5 min終止反應。用煮沸失活的酶液作對照。冷卻后加1 mL 3，5-二硝基水楊酸試劑， 沸水浴5 min， 冷卻至室溫在540 nm波長下比色。

以每克植物鮮樣在 1 h內反應生成的蔗糖含量（mg）表示蔗糖合成酶（SS）、蔗糖磷酸合成酶（SPS）活性， 以每克鮮樣在 1 h內反應生成的果糖含量（mg）表示酸性轉化酶（AI）、中性轉化酶（NI）和蔗糖合成酶（分解方向SS）活性。

1.3.2 粒重與籽粒灌漿速率 在玉米吐絲期， 選取長勢、穗型基本一致的植株掛牌標記。自吐絲后5 d起， 每隔5 d （灌漿30 d后每隔10 d）在每小區標記的植株上取3個果穗， 每穗取中部籽粒100粒， 于105℃烘箱中殺青30 min， 80℃烘至恒重后稱重。參照陳傳永等［17］方法進行Logistic模擬測定灌漿速率。

1.3.3 測產 在每處理小區中選取10 m2稱重計產， 并選取20個平均穗調查穗部性狀， 測定出籽率和含水率， 計算產量（按14%含水量計）。

1.4 試驗數據處理

采用 Microsoft Excel 2007整理數據和作圖，SPSS 19.0統計分析， 以 LSD檢驗平均數間差異顯著性（P ＜ 0.05*； P ＜ 0.01**）。兩年的試驗結果趨勢基本一致， 本文采用2015年的數據。

2 結果與分析

2.1 雙重化控對玉米穗位葉蔗糖代謝的調控

2.1.1 穗位葉蔗糖含量 蔗糖是功能葉片中最主要的光合產物， 也是物質轉運的主要形式。如圖 1所示， 在花后10～50 d內， 穗位葉蔗糖含量呈先增加后降低再增加的變化規律， 而化控處理 ZDTR在花后50 d降低， 品種間表現為ZD高于JD?；靥幚?，ZD和JD穗位葉蔗糖含量在花后10～20 d顯著高于對照， 分別提高 1.95%～6.09%和 4.56%～23.35%； 在花后30～50 d低于對照， 分別降低1.46%～42.52%和13.19%～44.64%。

圖1 雙重化控對穗位葉蔗糖含量的影響Fig. 1 Effect of PGR （plant growth regulators） on sucrose content in ear leaf

2.1.2 穗位葉蔗糖合成酶與蔗糖磷酸合成酶活性

蔗糖合成酶和蔗糖磷酸合成酶是葉片中蔗糖合成的關鍵酶， 分別催化果糖與UDPG和6-磷酸果糖與UDPG生成蔗糖， 其中蔗糖合成酶催化蔗糖合成的可逆反應。在花后10～50 d內， ZD穗位葉SS活性（圖 2-A）呈雙峰曲線， 峰值分別出現在花后 20 d和 40 d， JD穗位葉SS活性呈單峰曲線， 在花后30 d或40 d達到最大值， 品種間表現為ZD高于JD?；靥幚砗?， ZD和 JD穗位葉 SS活性高于 CK?；ê?0～50 d內， ZDTR穗位葉 SPS活性比 CK 高10.54%～48.74%， 而在花后10 d活性降低； JDTR穗位葉 SS活性在花后10～50 d內比 CK高 22.89%～76.86%， 其中在花后40 d降低， 差異不顯著。

圖2 雙重化控對穗位葉蔗糖合成酶（A）與蔗糖磷酸合成酶（B）活性的影響Fig. 2 Effect of PGR （plant growth regulators） on SS （A） and SPS （B） activities in ear leaf

如圖2-B所示， 在花后10～50 d內， SPS活性隨灌漿進程基本呈單峰曲線， ZDCK、ZDTR和ZDCK SPS活性均在花后30 d達到最大值， JDTR在花后20 d達最大值?；靥幚砗?， ZD和JD穗位葉SPS活性整體高于CK， 且ZD高于JD。在花后20～50 d內，ZDTR和JDTR分別比CK活性高6.04%～93.75%和2.04%～238.88%， 而在花后10 d分別降低37.34%和25.48%。

2.2 雙重化控對玉米籽粒蔗糖代謝的調控

2.2.1 籽粒蔗糖含量 籽粒中的蔗糖積累是個復雜的過程， 包括源端轉運、自身分解與合成。由圖3可見， 花后10～50 d內， ZD籽粒蔗糖含量呈降低的趨勢， JD籽粒蔗糖含量呈先增加后降低的變化趨勢，JDCK和JDTR分別在20 d和30 d達到最大值?；靥幚砗?， ZDTR在花后10～20 d內蔗糖含量顯著高于ZDCK， 比ZDCK提高5.95%～10.97%， 花后30～50 d 內ZDTR蔗糖含量降低3.51%～11.95%； JDTR在花后30～40 d蔗糖含量比JDCK增加11.77%～19.02%， 其他時期比JDCK降低3.91%～20.35%。

圖3 雙重化控對籽粒蔗糖含量的影響Fig. 3 Effect of PGR （plant growth regulators） on sucrose content in grain

2.2.2 籽粒蔗糖合成酶與蔗糖磷酸合成酶活性

如圖4-A所示， 花后10～50 d內， 兩品種玉米籽粒中SS活性呈單峰曲線變化， 均在花后20 d達到峰值?；靥幚韺善贩NSS活性的影響不一致， ZDTR在花后 30 d和 50 d SS （合成方向）活性顯著高于ZDCK， 分別提高16.77%和6.89%， 而在花后10～20 d和40 d低于ZDCK， 降低5.61%～11.33%， 花后10 d 和40 d降低顯著； JDTR在花后20 d和50 d SS （合成方向）活性顯著高于 JDCK， 分別提高 32.97%和38.45%， 在花后10 d和30～40 d降低0.65%～30.00%，僅在花后40 d降低顯著。

圖4 雙重化控對籽粒蔗糖合成酶（A）與蔗糖磷酸合成酶（B）活性的影響Fig. 4 Effect of PGRs （plant growth regulators） on SS （A） and SPS （B） in grain

由圖 4-B可知， ZDCK籽粒 SPS活性在花后10～20 d降低幅度較大， 隨后活性變化平穩， ZDTR在生育期內SPS活性變化平穩， 在花后20～50 d與ZDCK差異不顯著； JDTR和JDCK SPS活性基本呈先增加后降低的變化趨勢， 在花后 40 d達到最高，JDTR在花后 10～20 d較JDCK活性提高 10.09%～23.97%， 花后30～50 d降低5.15%～35.63%。

2.2.3 籽粒蔗糖轉化酶活性 蔗糖轉化酶催化蔗糖不可逆地分解為果糖和葡萄糖， 根據其最適 pH又可分為酸性轉化酶（AI）和中性轉化酶（NI）。如圖5-A所示， 在花后 10～50 d內， 兩品種玉米籽粒 AI活性呈降低的趨勢， 在花后10 d活性最高?；靥幚砗?， ZDTR籽粒AI活性在花后20～30 d比ZDCK降低 9.85%～49.50%， 差異顯著， 而在其他時期活性提高0.49%～33.44%； JDTR籽粒AI活性在花后20 d 比JDCK降低19.26%， 差異顯著， 而在其他時期提高6.71%～13.77%。

與AI活性相比， NI活性較低。在花后10～50 d內， ZD籽粒NI活性呈雙峰曲線變化， 分別在花后20 d和40 d達到峰值； JD整體呈先下降再升高的趨勢，在花后30 d活性最低?；靥幚砗?， ZDTR籽粒NI活性在花后20 d顯著降低， 降低37.83%， 在其他時期NI活性均有不同程度的提高， 但僅在花后50 d與CK差異顯著； JDTR在花后20～30 d籽粒NI活性比JDCK降低7.94%～35.12%， 在其他時期提高20.03%～92.13%。

圖5 雙重化控對籽粒酸性蔗糖轉化酶（A）與中性蔗糖轉化酶（B）活性的影響Fig. 5 Effect of PGRs （plant growth regulators） on AI （A） and NI （B） of grain

2.2.4 籽粒蔗糖合成酶（分解方向）活性 蔗糖合成酶催化蔗糖合成與分解的可逆反應， 分解方向的SS催化蔗糖分解成UDPG和果糖。如圖6所示， 在花后10～50 d， 兩品種玉米籽粒SS活性呈單峰曲線變化， 在花后40 d活性最高。品種間ZD比JD活性高?；靥幚砗?， ZDTR和JDTR籽粒SS活性不同程度提高， 但與CK差異不顯著。

2.3 通徑分析

相關分析表明（表1）， 穗位葉蔗糖含量（X1）、蔗糖合成酶（降解方向）（X4）與籽粒蔗糖含量呈顯著或極顯著正相關， 酸性轉化酶（X2）、蔗糖合成酶（X5）、蔗糖磷酸合成酶（X6）與籽粒蔗糖含量呈極顯著負相關。通徑分析表明， 穗位葉蔗糖含量（X1）、酸性轉化酶（X2）、蔗糖合成酶（X5）通徑系數對籽粒蔗糖含量為正效應， 籽粒中性轉化酶（X3）、蔗糖合成酶（降解方向）（X4）、蔗糖磷酸合成酶（X6）通徑系數對籽粒蔗糖含量為負效應。對籽粒蔗糖含量的直接作用表現為酸性轉化酶（X2）＞蔗糖合成酶（X5）＞中性轉化酶（X3）＞蔗糖磷酸合成酶（X6）＞蔗糖合成酶（降解方向）（X4）＞穗位葉蔗糖含量（X1）； 間接作用表現為蔗糖磷酸合成酶（X6）＞蔗糖合成酶（降解方向）（X4）＞穗位葉蔗糖含量（X1）＞中性轉化酶（X3）＞酸性轉化酶（X2）＞蔗糖合成酶（X5）， 其中穗位葉蔗糖含量（X1）、蔗糖合成酶（降解方向）（X4）對籽粒蔗糖含量的間接作用為負效應， 其他參數為正效應； 穗位葉蔗糖含量（X1）通過酸性轉化酶（X2）、蔗糖合成酶（降解方向）（X4）對籽粒蔗糖含量的間接作用負相關程度較高， 酸性轉化酶（X2）通過蔗糖合成酶（降解方向）（X4）、蔗糖合成酶（X5）對籽粒蔗糖含量的間接作用正相關程度較高。分析結果表明， 酸性轉化酶（X2）、中性轉化酶（X3）、蔗糖合成酶（X5）對籽粒蔗糖含量的直接貢獻較大， 穗位葉蔗糖含量（X1）、蔗糖合成酶（降解方向）（X4）、蔗糖磷酸合成酶（X6）對籽粒蔗糖含量的間接貢獻較大， 且通過酸性轉化酶（X2）的間接作用較大。

2.4 籽粒干物質積累和灌漿速率

由圖 7可知， 兩品種百粒重均隨籽粒的發育呈現“慢—快—慢”的 S型變化， 籽粒灌漿速率呈單峰曲線的變化， 在花后 30 d左右達到最大灌漿速率。雙重化控處理后， ZDTR （圖7-A）籽粒干物重在25～65 d以后均比ZDCK有所提高， 成熟期百粒重比ZDCK顯著提高 4.33%， 而籽粒灌漿速率在花后10～40 d ZDTR比ZDCK提高6.30%～17.31%， 在花后40～65 d降低7.65%～44.07%； JDTR （圖7-B）籽粒干物重在花后30～65 d以后比CK有所提高， 成熟期百粒重比JDCK顯著提高， 提高4.74%， 而籽粒灌漿速率在花后 25～65 d JDTR比 JDCK提高 2.71%～14.24%。

表1 籽粒蔗糖積累與代謝關鍵酶活性的通徑分析和相關系數Table 1 Path and regression analysis of sucrose accumulation and key enzymes activity in grain

圖7 雙重化控對籽粒干物質積累和灌漿速率的影響Fig. 7 Effect of PGRs （plant growth regulators） on grain weight and grain filling rate

2.5 產量

由圖 8可知， 化控處理后兩品種春玉米產量均顯著高于CK， ZDTR比ZDCK增產628.12 kg hm-2，JDTR比JDCK增產1017.99 kg hm-2， 分別比對照增產4.61%和7.78%。ZD產量高于JD。

圖8 雙重化控對兩品種玉米產量的影響Fig. 8 Effect of PGRs （plant growth regulators） on yield

3 討論

葉片是玉米進行光合作用的主要器官， 維持葉片較強的碳代謝是籽粒產量形成的基礎。蔗糖是高等植物光合作用的主要產物， 也是植物體內碳同化物運輸的主要形式， 在植物的糖代謝中具有重要的作用［18］。但前人研究表明， 葉片中過多的蔗糖積累會影響與光合作用相關的一些基因表達， 不利于光合作用［19］?；瘜W調控是調節植物生長代謝的重要手段， 乙矮合劑和聚糠萘合劑是分別針對玉米莖稈倒伏和低溫冷害特點而研制的新型調節劑， 其主要成分分別為乙烯利、矮壯素和生長素、細胞分裂素。盧霖等［12］、徐田軍等［13］研究結果表明， 乙矮合劑、聚糠萘合劑具有提高抗氧化酶活性、降低群體花后早衰的作用， 使植株在生育末期仍可以保持較高的物質生產能力， 陳傳曉［20］研究發現聚糠萘合劑提高了玉米穗位葉蔗糖代謝關鍵酶（蔗糖合成酶、蔗糖磷酸合成酶和轉化酶）的活性， 增強了葉片光合性能，增加了蔗糖的積累。與前人單一化控處理結果相似，本研究結果表明， 乙矮合劑和聚糠萘合劑雙重化控促進了穗位葉SS和SPS活性， 提高灌漿前期（花后10～20 d）穗位葉蔗糖含量， 降低后期（花后30～50 d）蔗糖含量， 促進了蔗糖合成與轉運。

源端轉運至庫中的蔗糖， 經AI、NI、SS的分解，生成單糖類物質供自身能量消耗和淀粉等的合成。籽粒中蔗糖的降解反映了“庫”強度的高低［21］。一般認為， 轉化酶是蔗糖從韌皮部卸出的主要驅動力，在蔗糖運輸和調節源庫關系中起著關鍵作用［22-23］，但也有研究認為， 轉化酶僅在籽粒發育的早期為胚乳細胞的快速分裂提供碳源， 對物質積累幾乎未起作用［24-25］， 這與本研究中轉化酶活性僅在灌漿前期維持較高的活性一致。張海艷等［26］研究認為分解方向的蔗糖合成酶是玉米淀粉合成的限速酶， 與淀粉積累速率和籽粒灌漿速率顯著相關， 而旺盛的蔗糖降解是籽粒淀粉積累和粒重提高的基礎。Hubbard等［27］提出將幾種酶活性加減來獲得綜合效應， 以此得到凈活性； 劉鵬等［10］也認為籽粒中蔗糖積累是分解和合成兩個方向共同作用的結果。通過 Hubbard的凈活性方法研究發現， 本試驗兩品種的籽粒蔗糖分解能力大于合成能力（花后10～40 d）， 而雙重化控提高蔗糖分解的凈活力， 促進了蔗糖分解， 提高中單909灌漿中期和吉單35中后期灌漿速率， 提高了粒重。本研究發現， 玉米籽粒中蔗糖含量與除中性轉化酶外的其他因素均達到顯著或極顯著相關， 但各因素對蔗糖含量的貢獻率和作用方式不同。

維持功能葉片中較高的蔗糖合成， 是作物高產的物質基礎。前人在探究提高源端蔗糖合成能力方面做了大量研究。一般認為， 種植密度可以顯著影響功能葉蔗糖合成能力［5-6］； 張超男等［28］研究認為，不同的施肥方式可以影響玉米葉片磷酸蔗糖合成酶活性； 陳洋等［29］研究發現適宜的施氮量可以提高玉米穗位葉蔗糖合成酶與磷酸蔗糖合成酶活性。前人研究認為生長素促進碳同化產物向“庫”端和施用外源生長素的部位積累［30］； 細胞分裂素能提高蔗糖轉化酶的活性［31］。董學會等［11］研究認為30%己乙水劑可以加快同化物輸出， 與本研究結果雙重化控極顯著地降低灌漿后期功能葉中的蔗糖含量一致。乙矮合劑和聚糠萘合劑是分別針對玉米莖稈倒伏和低溫冷害特點而研制的新型調節劑。本研究結果表明，雙重化控提高了穗位葉蔗糖合成相關酶的活性， 尤其顯著促進灌漿后期（花后 50 d）蔗糖合成能力， 促進了穗位葉蔗糖轉運， 提高籽粒中蔗糖分解能力和灌漿中期灌漿速率， 增加粒重和產量。雙重化控對保障灌漿后期功能葉正常的物質生產能力和物質轉運具有重要作用。

4 結論

中單909和吉單35灌漿期（10～50 d）穗位葉蔗糖含量呈先增加后降低再增加的變化規律， 雙重化控提高穗位葉灌漿期 SS和 SPS活性， 降低灌漿后期（30～50 d）的穗位葉蔗糖含量， 促進了蔗糖合成與轉運； 中單909籽粒蔗糖含量變化呈降低的趨勢， 吉單35籽粒蔗糖含量呈先增加后降低的變化趨勢， 雙重化控降低中后期（30～40 d）籽粒蔗糖合成酶（SS）活性，提高籽粒蔗糖合成酶（SS）分解方向活性， 促進蔗糖的水解； 通過調控源庫蔗糖代謝關鍵酶的活性， 促進蔗糖向籽粒轉運， 分別提高兩品種灌漿中期和中后期灌漿速率， 百粒重分別提高4.33%和4.74%。雙重化控處理較各自對照分別增產4.61%和7.78%。籽粒蔗糖的代謝是一個復雜的過程， 受多種因素的共同作用， 其代謝機制仍需結合其他因素進一步探討。

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Effect of Plant Growth Regulators on Key Enzymes in Sucrose Metabolism of Ear Leaf and Grain at Filling Stage of Spring Maize

LI Guang-Yan， WANG Qing-Yan， XU Yan-Li， LU Lin， Jiao Liu， DONG Xue-Rui， and DONG Zhi-Qiang*
Institute of Crop Science， Chinese Academy of Agricultural Sciences / Key Laboratory of Crop Ecophysiology and Cultivation， Beijing 100081，China

In order to explore the new cultivation techniques， chemical control was established in this study. We conducted a field experiment using two varieties of Zhongdan 909 and Jidan 35 with treatments of leaf-spraying ethylene-chlormequat-potassium （ECK） in V6 and PASP-KT-NAA （PKN） in V9. The results showed that ECK & PKN increased the activities of sucrose synthetase （SS） and sucrose phosphate synthetase （SPS） and sucrose content during early grain filling stage （10-20 d after anthesis）in ear leaf， and decreased sucrose content in ear leaf during late grain filling stages （30-50 d after anthesis）， especially it improved the ability of sucrose synthesis at the late filling stage （50 d after anthesis）. ECK & PKN also decreased SS （synthesis） activity in grain during middle and late grain filling stages and increased SS （resolving） activity， promoting sucrose decomposition ability，with less effect on SS （synthesis） and SPS activities in grain. The yields of Zhongdan 909 and Jidan 35 compared with their own control were respectively increased by 4.61% and 7.78%. The study indicated that ECK & PKN enhance sucrose synthesis in leaf and decomposition ability in grain， and promote the translocation of carbon assimilation to grain， resulting in high grain-filling rate， high grain weight， and high yield.

Spring maize； ECK； PKN； Sucrose； Key enzymes of sucrose metabolism

10.3724/SP.J.1006.2016.01215

本研究由國家自然科學基金項目（31470087）， 國家科技支撐計劃項目（2012BAD04B01-07， 2012BAD4B02）和中國農業科學院科技創新工程項目資助。
This study was supported by the National Natural Science Foundation of China （31470087）， the National Key Technology R&D Program of China （2012BAD04B01-07， 2012BAD4B02） and Science and Technology Innovation Project of Chinese Academy of Agricultural Sciences.
*

（Corresponding author）： 董志強， E-mail： dongzhiqiang@caas.cn， Tel： 010-82106043

聯系方式： E-mail： liguangyan5112@126.com
Received（

）： 2015-12-31； Accepted（接受日期）： 2016-05-09； Published online（網絡出版日期）： 2016-05-23.
URL： http：//www.cnki.net/kcms/detail/11.1809.S.20160523.0852.004.html