蝴蝶蘭“火鳳凰”組織培養關鍵技術研究

曾燕紅，玉新愛，蘇榮軍

（1.廣西玉林農業學校，廣西 玉林 537000；2.玉林市農業科學院，廣西 玉林 537000）

蝴蝶蘭屬蘭科蝴蝶蘭屬?；w輕盈美麗，花形奇特，花色艷麗，花期長，被稱為“洋蘭皇后”（圖1）。由于其觀賞和經濟價值高，深受國內外花卉市場的青睞。蝴蝶蘭屬單莖氣生蘭，極少數側枝。所以，在大規模生產中，采用分株繁殖是非常困難的。此外，由于大部分的種子尚未完全成熟，而且種子中沒有胚乳，因此發芽速度較慢，難以通過播種技術進行有性生殖。組織培養技術具有快速的生長速度和較高的繁殖能力；具有年生產能力高的優點，是目前工廠式育苗的主要技術途徑。目前，國內外關于蝴蝶蘭的組培技術已較為成熟，但由于品種之間的誘導率差異大、增殖系數低、植物生長調節劑的種類和濃度比例不確定等原因，其技術水平也有差異。所以，開發適合于特殊品種的組培快繁技術系統具有十分重要的現實意義。因此，本文選擇了蝴蝶蘭“火鳳凰”的莖稈作為實驗材料，通過對蝴蝶蘭“火鳳凰”的不定芽誘導、增殖和生根等各個階段的影響進行了研究，確定了“火鳳凰”組培快繁的最佳培養條件，使其快速繁殖技術系統得到優化，為其工業化、規?；a提供技術支撐[1]。

圖1 蝴蝶蘭

1 材料和方法

1.1 試驗材料

加入不同比例的植物生長調節劑。用8.00 g/L的瓊脂對所有的載體進行了固化，并且在25 g/L的蔗糖和5.6的 pH值下進行了固化。加入0.50 g/L的活性碳（AC）以防爆炸褐化，然后在121℃下進行30 min的殺菌，如圖2所示。

圖2 蝴蝶蘭組織培養（一）

1.2 材料選擇和滅菌

開花期間，從花卉市場購買蝴蝶蘭“火鳳凰”，應選擇生長旺盛、無病蟲害、無變異的母株為外植體。在收集前對外植體進行預處理（在收獲前5～7 d向母株噴灑菌劑），能有效地預防和降低內源污染，增加誘變成功率。外植體的最佳選擇是蝴蝶蘭第一芽開花的帶腋芽花梗。將其切成5 cm左右的小段，小鑷子去除腋芽外部苞片，放入燒杯中，如圖3所示。

圖3 蝴蝶蘭組織培養（二）

在燒杯中滴入幾滴洗滌劑，用自來水沖洗6～8 h，再用無菌水沖洗，然后在無菌工作臺上消毒表面。表面用75% 酒精消毒30 s，用無菌水沖洗3次，然后用0.1% HgCl2溶液浸泡花梗10 min，繼續搖動，用無菌水清洗4～5次；用消毒過的濾紙將物料表面的濕氣吹干，然后進行接種。無菌材料是蝴蝶蘭組織培養的一個重要條件和保障，而滅菌是一種行之有效的方法。采用表面消毒方法，將表面的細菌殺死，使其在最大程度上維持其活性。所以，在蝴蝶蘭的組織培養中，殺菌是一個非常關鍵的環節（注：消毒時間取決于外植體的種類或成熟度）。

1.3 方法

首先是對疫苗室和操作臺進行清潔和消毒，然后是酒精燈；消毒器、接種刀、鑷子等接種器具的準備；隨后完成接種。

將蝴蝶蘭的花梗兩端切去，將帶腋芽的花梗節切成1～2 cm的小段，根據生長極性插入培養基中。每個處理接種30個外植體，重復3次。注意嚴格規范無菌操作，盡可能減少因操作不當而引起的污染；嚴格消毒器具，減少與病毒的交叉感染；切取外植體時要用銳利的刀具和快速的切割，同時要避免互相擠壓，以免損傷材料；所有的外植體取刀時，刀口的尺寸和切點都要合理、正確（例如：切花梗的下端為45°切口，上端為平面）；為了確保所需的養分和光照，外植體應在培養皿中均勻地分布。

以MS+花寶1號+花寶2號為基質，添加不同比例的6-BA和NAA。各培養基上分別接種帶有腋芽的蝴蝶蘭花梗小段，每處理均為20個花梗段，重復3次，30 d后統計各處理誘導率。

采用MS+花寶1號作為基質，添加了6-BA、NAA等不同比例的植物生長調節劑。將初代培養30 d左右的蝴蝶蘭不定芽轉入增殖培養基中。每次處理20個不定芽，重復3次，培養30 d左右時，統計新的不定芽的發生情況，計算增殖系數。

以1/2 MS、MS為基質，添加不同比例的植物生長調節劑IBA和NAA。選擇發育均勻的蝴蝶蘭，將其接種于不同的發芽基中進行生根實驗。每次處理20株，3次重復，約45 d后統計各處理出根情況。

適宜的溫度為25～28℃，環境濕度為60% ～80% 。在黑暗中培育7～9 d，防止褐變，光照強度為2 000～2 500 Lx，光照時間為每天11～13 h。

2 結果與分析

2.1 不同基本培養基對腋芽萌發誘導的影響

將消毒后的“火鳳凰”花梗接種到不定芽誘導培養基上，14 d左右開始萌發不定芽。添加不同的植物生長調節劑配比，雖然對“火鳳凰”花梗誘導率不同，但添加一定濃度的6-BA和NAA都有利于“火鳳凰”不定芽的誘導。在9組處理中，處理5的誘導率最高，達到86.7% ，即最佳的不定芽誘導培養基為MS+花寶1號+花寶2號+3.00 mg/L 6-BA+0.05 mg/L NAA培養基。

誘導率=萌發的外植體數/接種的總外植體數×100% 。

2.2 不同培養基對不定芽增殖的影響

將不定芽從花梗中分離出來，在15 d后，不定芽基部開始生長出原球莖，25 d左右逐漸長出葉片。當植物生長調節劑NAA濃度相同時，蝴蝶蘭“火鳳凰”的不定芽增殖系數隨著6-BA的濃度升高而升高。但增殖系數大時，葉片顏色淡、生長玻璃化、脆嫩。綜合增殖系數和幼苗長勢，增殖培養基最優的組合是處理6：MS+花寶1號+5.00 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA，增殖系數達到3.9。

增殖系數=增殖不定芽總數/增殖不定芽外植體數。

2.3 不同生根培養基對幼苗生根的影響

在引種蝴蝶蘭的基本培養基中，1/2 MS培養基的生根率均高于 MS，而1/2 MS+1.0 mg/L IBA+0.5 mg/L NAA的9號培養基，其生根率達86.7% 。結果表明，最適宜的培養基是1/2 MS+1.0 mg/L IBA+0.5 mg/L NAA。

3 結論與討論

蝴蝶蘭的組織培養是影響組織培養成敗的重要因素。不同品種的蝴蝶蘭，不同的栽培材料，不同的生長時期，不同的栽培材料對培養基的需求也不同。因此，對蝴蝶蘭的培養基進行篩選，既是蝴蝶蘭組織培養的基礎，又是其重要的一步。

在誘導蝴蝶蘭“火鳳凰”花梗腋芽萌發的實驗中，添加一定濃度的6-BA和NAA都有利于“火鳳凰”不定芽的誘導，這和高壯壯等[2]的試驗結果一致。本試驗中最佳的不定芽誘導培養基為MS+花寶1號+花寶2號+3.00 mg/L 6-BA+0.05 mg/L NAA培養基。

細胞分裂素對蝴蝶蘭不定芽增殖的試驗中，6-BA對增殖效果的影響強于 NAA；且濃度5.00 mg/L 6-BA比濃度3.00 mg/L 6-BA的增殖效果要更優。當6-BA濃度為5.00 mg/L時，NAA濃度為1.0 mg/L時的增殖系數比0.50 mg/L增殖效果更高，但幼苗長勢受到影響。所以MS作為不定芽增殖的基本培養基，在不同植物生長調節劑濃度配比下，5.00 mg/L 6-BA+0.50 mg/L NAA最適合不定芽增殖生長。這個試驗結果與陳春等[3-6]的試驗結論相似，表明蝴蝶蘭增殖時要同時增殖系數和幼苗生長狀態。

而在誘導蝴蝶蘭生根的基礎培養基中，1/2 MS培養基的生根率總體優于MS培養基，其中生根率最高的是1/2 MS+1.0 mg/L IBA+0.5 mg/L NAA的9號培養基，其生根率為86.7% 。由此可知，誘導蝴蝶蘭生根的最適培養基配方為1/2 MS+1.0 mg/L IBA+0.5 mg/L NAA。