浮游蟲黃藻生長及堿性磷酸酶對不同磷酸鹽濃度的響應

李 月，王云龍，歐陽瓏玲

（1.上海海洋大學水產與生命學院，上海 201306；2.中國水產科學研究院東海水產研究所，農業農村部東海漁業資源開發利用重點實驗室，上海 200090）

蟲黃藻（Symbiodinium sp.）是構成珊瑚礁生態系統所必需的共生甲藻。在共生體中，蟲黃藻為珊瑚提供氧氣及合成有機物等，而珊瑚蟲代謝產生的CO2、硝酸鹽和磷酸鹽等則為蟲黃藻所用，以維持其生長［1］。珊瑚礁在營養貧乏的淺水中形成，與其他水生系統相比，磷的濃度相對較低，其溶解無機磷（dissolved inorganic phosphorus，DIP）的濃度在0.05～0.50μmol·L－1［2－3］。國內外學者就不同磷酸鹽濃度對造礁珊瑚-蟲黃藻共生體中蟲黃藻的影響開展了較多研究。結果表明，磷酸鹽限制可引起共生蟲黃藻光合效率降低，增加珊瑚對熱和光脅迫的敏感度而導致其白化［4］；共生蟲黃藻的光合效率可隨磷酸鹽含量的升高而增加，同時珊瑚的鈣化速率也隨之加快，但在高磷酸鹽初始濃度影響下，共生蟲黃藻的光合作用效率隨著磷濃度的升高反而受到抑制［5］。

實際上，除與宿主共生外，蟲黃藻也可在珊瑚礁生活的海域外營浮游生活，且這類蟲黃藻可作為潛在的磷源儲備庫，對珊瑚礁的構建有著重要的生態學意義［6］。由于外部輸入和內部周轉情況不同，不同海域中磷的含量差異較大。根據《中國漁業生態環境狀況公報》，近十年我國海域活性磷酸鹽濃度最低為0.012μmol·L－1，最高達12.97μmol·L－1?；钚粤姿猁}水平在同一海域不同時期變化也較大，如赤潮發生后磷酸鹽濃度可降至最低。由此可見，浮游蟲黃藻處在磷酸鹽不斷變化的自然環境中。但由于目前僅見光照和代謝抑制劑對浮游蟲黃藻吸收磷酸鹽影響的研究［7］，不同磷酸鹽濃度對浮游蟲黃藻的影響尚不可知。雖然有學者就不同磷源和磷酸鹽濃度對從珊瑚中分離后單獨培養的蟲黃藻的生長影響進行了較為細致的研究［8－10］，但離體培養與營浮游生活的蟲黃藻對不同磷酸鹽濃度的響應可能存在差異［7］。因此，研究浮游蟲黃藻細胞對不同磷酸鹽濃度的響應，以及長時間處于低磷酸鹽環境中藻細胞的生長特性，可進一步幫助揭示蟲黃藻的生理生態特性，并為保護珊瑚礁生態系統提供理論依據。

鑒于此，本研究以從東海海域分離出的浮游蟲黃藻為實驗材料，研究短期內4個初始磷酸鹽濃度對該藻生長的影響，同時以高磷酸鹽初始濃度為培養條件對該蟲黃藻進行長期培養，研究藻細胞的生長特性，同時探究光合作用效率及堿性磷酸酶活性（alkaline phosphatase activity，APA）與磷酸鹽之間的響應聯系。

1 材料與方法

1.1 藻種來源及培養

蟲黃藻ECSFRI081109藻株由中國水產科學研究院東海水產研究所提供。該藻從舟山海域海水樣品中分離純化而得，通過掃描電鏡及ITS基因擴增和測序而確定其為蟲黃藻E系群的一種。

配置鹽度為28的人工海水，經0.45μm濾膜過濾后高壓蒸汽滅菌（121℃、20 min），并在超凈工作臺中配置f/2培養基，保證藻細胞無菌培養。將接種后的蟲黃藻放置于光照培養箱中，培養溫度為20℃，光照強度為4 000 lx，光暗比為12 h∶12 h。所有培養液每天8∶00和18∶00點手動搖勻兩次。

1.2 實驗設計

為了解不同磷酸鹽濃度對營浮游生活的蟲黃藻的影響，以及當藻細胞長時間處于低磷酸鹽環境中是否能維持生長，分別設計短期培養實驗和長期培養實驗。

1.2.1 短期培養實驗

本實驗設置4個磷酸二氫鈉初始濃度試驗組。其中，基于實驗室培養所用f/2培養基設置最高濃度為35.00μmol·L－1，基于近年來我國東海區海域中磷酸鹽濃度低值平均值和高值平均值設置濃度分別為0.15、10.00μmol·L－1，并增設20.00μmol·L－1試驗組。

將達到指數生長期的藻液經8 000×g離心收集后用不含磷的無菌人工海水洗滌，然后再離心收集并分別轉接至200 mL磷酸鹽初始濃度為0.15、10.00、20.00、35.00μmol·L－1的f/2培養基中培養，每個處理組設置3個重復。藻細胞初始密度為30×106個·L－1，培養條件與前面一致。實驗過程中不再添加任何營養物質。于第0、1、2、4、7天取樣測定細胞濃度、磷酸鹽濃度、APA。

1.2.2 長期培養實驗

將達到指數生長期的藻細胞經8 000×g離心收集后用不含磷的無菌人工海水洗滌，然后再離心收集轉接至200 mL磷酸鹽濃度為35.00 μmol·L－1的f/2培養基中培養，時長55 d。藻細胞初始密度約為5×106個·L－1，設置3個重復。實驗過程中不再添加任何營養物質。每隔5 d測定細胞濃度、磷酸鹽濃度、APA、光合作用參數。

1.3 比生長速率及葉綠素熒光參數測定

取0.9 mL藻液加入0.1 mL魯戈氏液固定，使用光學顯微鏡（BX43，Olympus，Japan），取0.1 mL樣品置于浮游植物計數框計數。蟲黃藻比生長速率（μ）按式（1）計算。

式（1）中，μ為連續培養時間內的比生長速率，N1及N2分別為培養時間t1和t2時的蟲黃藻細胞密度。

使用浮游植物熒光分析儀（PHYTO-PAMED，Walz，Effeltrich，Germany）測定葉綠素a含量和實際光化學量子效率（Fq′/Fm′），參數測定時光化學設置參見SHEN等［11］。

1.4 磷酸鹽濃度及APA檢測

磷酸鹽濃度采用磷鉬藍顯色法用分光光度計進行檢測［12］。APA測定參照OU等［13］測定方法。

1.5 數據處理

磷酸鹽初始濃度以實際測量值為準（圖1）。數據以3次重復的標準差（means±SD）表示。數據經正態化分布（Shapiro-Wilk）和方差齊性檢驗（Levene），通過單因素方差分析（one-way ANOVA），采用Tukey HSD事后多重比較法檢驗數據之間的差異（P＜0.05）。所有數據使用Excel 2010和PASW Statistics 19.0軟件進行分析，繪圖使用OriginPro 2018 v9.5.0。

2 結果與分析

2.1 短期培養下不同磷酸鹽濃度對蟲黃藻生長及APA的影響

對培養基中磷酸鹽濃度進行檢測發現，當初始濃度為35.00μmol·L－1時，磷酸鹽濃度在培養初期（0～2 d）即呈下降趨勢，且第2天后下降幅度顯著增加（圖1-A）。當初始濃度為10.00、20.00μmol·L－1時，在第0～2天磷酸鹽濃度降低不顯著，第2天后開始顯著下降。當磷酸鹽初始濃度為0.15μmol·L－1時，盡管起始濃度較低，但磷酸鹽濃度在1 d后下降至0.05μmol·L－1，隨后無顯著變化（P＞0.05）。

培養過程中，4個試驗組中藻細胞的APA變化趨勢存在差異（圖1-B），主要為低磷酸鹽初始濃度（0.15μmol·L－1）的試驗組與其他3組變化趨勢不同。磷酸鹽初始濃度為10.00、20.00、35.00μmol·L－1的試驗組APA均呈總體下降趨勢，不同的是前兩個試驗組APA在接種后第1天出現了一定程度的降低，隨后上升，第2天后開始趨于穩定。而磷酸鹽初始濃度為0.15μmol·L－1的試驗組藻細胞中APA前期顯著上升，第2天達最大后緩慢下降，至第4天趨于穩定。整個培養過程中，磷酸鹽初始濃度為10.00、20.00、35.00μmol·L－1的試驗組中藻細胞的APA顯著低于濃度0.15μmol·L－1的試驗組（P＜0.05），表明其與環境中無機磷濃度呈負相關［14］。由此可見，低無機磷條件可誘導堿性磷酸酶（alkaline phosphatase，AP）活性增強。

由圖1-C可知，接種后到2 d時，各試驗組藻細胞密度增長緩慢或呈下降趨勢，表現出了至少兩天的生長遲滯期，這與其他甲藻相似［15－16］。之后，除磷酸鹽初始濃度為0.15μmol·L－1的試驗組外，其他試驗組藻細胞在2 d后的生長趨勢較一致，即細胞密度在培養后期仍呈現增長的趨勢。培養至第7天，藻細胞密度因磷酸鹽初始濃度不同而出現差異，具體表現為：磷酸鹽初始濃度為35.00μmol·L－1時，藻細胞密度最高，且顯著高于其他組（P＜0.05）；初始濃度為10.00 μmol·L－1和20.00μmol·L－1時，藻細胞密度次之，且兩組間無顯著差異（P＞0.05）；磷酸鹽初始濃度為0.15μmol·L－1時，藻細胞密度最低，僅為最高試驗組細胞密度的1/3。

圖1 不同磷酸鹽初始濃度處理下培養基中磷酸鹽濃度（A）和蟲黃藻細胞APA（B）藻細胞密度（C）的變化Fig.1 Effects of different initial concentrations of phosphate treatment on the phosphate concentration in the medium（A），APA of alga（B）and cell density of Symbiodinium sp.（C）

2.2 長期培養下不同高磷酸鹽初始濃度對蟲黃藻生長的影響

當磷酸鹽初始濃度為35.00μmol·L－1時，培養基中細胞濃度開始迅速增加，第20天達最高，為2.34×108個·L－1，此后出現波動式下降（圖2-A）。而比生長速率在培養前5 d處于較高水平，之后有所下降，20 d后比生長速率常出現負值，與生長變化相符（圖2-B）。藻細胞葉綠素a含量在前15 d呈指數上升，第15天達最大值，為3 034.27μg·L－1，隨后開始下降，第40天后基本保持穩定，為807.71～873.23μg·L－1（圖2-C）。對藻細胞的Fq′/Fm′分析結果顯示，Fq′/Fm′在培養前5 d升高，隨后顯著下降，第25天后變化趨勢出現改變，呈波動下降狀態（圖2-D）。

圖2 不同高磷酸鹽初始濃度長期培養下蟲黃藻細胞生長及光合作用特征變化情況Fig.2 Changes of cell growth and photosynthetic characteristics of Symbiodinium sp.cultured with long-term high initial phosphate concentration

2.3 長期培養下培養基中磷酸鹽濃度及藻細胞APA的變化

長期培養實驗開始時，培養基中磷酸鹽濃度迅速下降，第5天時降到0.04μmol·L－1，隨后一直處于較低水平，并呈現出小幅波動，為0.04～0.53μmol·L－1（圖3-A）。藻細胞APA在培養前期維持在較低的水平，第20天顯著增加，至第30天時APA增加到最大，隨后呈現下降-上升的波動趨勢（圖3-B）。分析發現20～55 d時藻細胞APA與數量的變化趨勢相反，推測藻細胞數量下降后的再次上升是由于藻細胞衰亡釋放有機磷為AP提供底物，使得藻細胞重新獲得無機磷而得以增殖。

圖3 不同高磷酸鹽初始濃度長期培養下培養基中磷酸鹽濃度（A）和藻細胞APA（B）的變化Fig.3 Changes of DIP in the culture media of Symbiodinium sp.（A）and APA of microalgal cells（B）with long-term high initial phosphate concentration

3 討論

磷作為藻類生長所必須的營養物質，在合成核苷酸、磷脂以及通過磷酸化調控蛋白質的功能中起重要作用，是浮游植物生長的重要營養元素之一［17］。浮游蟲黃藻的細胞數量在高磷酸鹽初始濃度（35.00μmol·L－1）下顯著高于其他組，表明營養水平的提高促進了該藻的生長。然而，對共生蟲黃藻的研究表明，單獨增加磷酸鹽濃度對共生體中蟲黃藻的密度無影響［18］；或在高磷酸鹽初始濃度（30.00μmol·L－1）環境下，共生體中蟲黃藻密度會隨著磷酸鹽濃度的提高而降低［5］。導致浮游蟲黃藻和共生蟲黃藻存在差異的原因可能是共生蟲黃藻生活的直接環境是共生體膜泡結構，營養鹽為蟲黃藻吸收利用需穿過兩層膜，因此藻細胞可利用的磷酸鹽濃度較低，且宿主有能力限制共生蟲黃藻對磷酸鹽的吸收［8，19］。LIU等［9］比 較 了 高 磷 酸 鹽 初 始 濃 度（36.00μmol·L－1）和無磷酸鹽（＜0.01μmol·L－1）培養條件下離體蟲黃藻（Symbiodinium voratum）的生長特征，本研究與其結果一致，即藻細胞數量與環境中的磷酸鹽濃度呈正相關關系，表明共生蟲黃藻在離開宿主后對磷酸鹽的吸收能力與浮游蟲黃藻相似。

在高磷酸鹽初始濃度的長期培養過程中，隨著培養基中磷酸鹽的迅速消耗，浮游蟲黃藻細胞Fq′/Fm′顯著下降并伴隨著比生長速率下降，這是由于磷酸鹽缺乏會破壞藻類類囊體膜，從而降低細胞的光合效率影響藻類的生長［20］。藻細胞的密度比葉綠素a出現5 d的滯后下降趨勢，表明在磷酸鹽大量消耗后藻細胞呈現出衰敗態勢，雖然細胞數量增加但逐漸衰老的細胞中葉綠素a含量較正常生長細胞偏低［21］。此外，藻類的生長與N/P值密切相關，水體中N/P值過高會形成的磷限制狀態［19］。長期培養實驗中后期（20 d以后），培養基中N/P均值為340①中國水產科學研究院東海水產研究所未發表數據，說明浮游蟲黃藻處于磷限制的生長環境中［22］。此時藻細胞雖呈現出下降-上升的波動生長趨勢，但藻細胞數量上升時的比生長速率約為10～20 d的2倍，表明該藻與其他甲藻一樣具有耐低磷特性［23］。

雖然DIP是藻類吸收磷的首選形式，但當DIP受到限制時，細胞也可利用溶解有機磷（dissolved organic phosphorus，DOP）和顆粒有機磷（particulate organic phosphorus，POP）［2，24］。堿性磷酸酶能水解DOP釋放DIP，被認為是藻類最常見的DOP利用機制［14］，其活性與環境中無機磷濃度呈負相關［25］。當磷酸鹽初始濃度為0.15 μmol·L－1時，浮游蟲黃藻APA顯著高于其他3個試驗組。研究表明，藻類AP的表達受環境調控，一般認為當外界DIP濃度為0.05～3.70 μmol·L－1時可誘導APA增強［26］。在長期培養實驗中，當培養基中磷酸鹽濃度下降至0.04 μmol·L－1后，浮游蟲黃藻細胞APA并未立即升高（圖3），這是由于藻細胞APA還受細胞內磷含量的調控。在環境磷酸鹽豐富的情況下，甲藻具有過量攝取磷并儲存于細胞內部的能力，當受到磷限制影響時藻細胞會啟用自身磷庫維持生長［27］。此外，該表現與短期培養實驗中低磷酸鹽初始濃度組（0.15μmol·L－1）的不同，可推測短期培養接種時細胞磷庫狀態處于較低水平。當然，這需要后續實驗加以證實。值得注意的是，在短期和長期培養實驗中AP活性的增強并未引起培養基中DIP濃度升高，可能是因為AP水解與DIP的吸收是同時進行的，這與東海原甲藻（Prorocentrum donghaiense）對有機磷的利用形式相似，而與米氏凱倫藻（Karenia mikimotoi）相反［28－29］。目前，關于甲藻對磷的利用機制的研究頗多，但不同種類間具有較大差異［23］。浮游蟲黃藻是對珊瑚礁系統具有重要生態意義的種類，其對磷的利用途徑及在分子層面的機理解析將是今后需要重點研究的方向。