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信號在冬小麥根系細胞中的產生及傳導機理

2023-09-14 09:44祁偉亮孟建軍劉自成施萬喜楊財容喬義林李金玲陳思偉姚來來賴守孝劉文輝袁蘭蘭
西北農業學報 2023年9期
關鍵詞:隴東品系冬小麥

祁偉亮,孟建軍,張 成,劉自成,施萬喜,楊 虓,喬 巖,楊財容,喬義林,李金玲,陳思偉,姚來來,賴守孝,張 鵬,劉文輝,王 婧,袁蘭蘭

(1.隴東學院 農林科技學院,甘肅慶陽 745000;2.隴東旱地作物種質改良及產業化協同創新中心,甘肅慶陽 745000;3.甘肅省旱地冬小麥種質創新與應用工程研究中心,甘肅慶陽 745000; 4.成都師范學院 化學與生命科學學院,特色園藝生物資源開發與利用四川省高校重點實驗室,成都 611130)

1 材料與方法

1.1 試驗材料

材料有品種‘隴育5號’‘隴育8號’‘隴育10號’及品系‘隴育5-2’,源于隴東學院小麥研究所。

1.2 試驗方法

1.2.1 冬小麥遺傳背景分析 為進一步明確冬小麥品種‘隴育5號’‘隴育8號’‘隴育10號’及品系‘隴育5-2’的遺傳背景,染色體制片按照Qi等[14]的方法進行。首先將制備好的片子進行熒光原位雜交(Fluorescence in situ hybridization,FISH)分析,選用探針pSc119.2(綠色)和pTa535(紅色)檢測冬小麥品種‘隴育5號’‘隴育8號’‘隴育10號’及品系‘隴育5-2’的A、B、D染色體組。探針pSc119.2主要區分小麥B基因組,探針pTa535主要識別小麥A、B、D基因組[15]。探針pSc119.2和pTa535由上海英駿生物技術有限公司合成,雜交程序參照Fu等[16]和Qi等[14]的方法配置10 μL雜交液體系:pSc119.2(0.3 μL)+pTa535(0.3 μL)+9.4 μL(2 × SSC和 1×TE)緩沖液瞬時離心混合。每張載玻片上滴加10 μL探針工作液,置于37 ℃恒溫水浴鍋中雜交2 h,雜交完后用2×SSC溶液清洗,晾干后向每張載玻片上滴加10 μL DAPI復染液,黑暗環境下放置10 min后,然后用熒光顯微鏡(Olympus BX-51)采集照片。

1.2.2 ROS信號組織檢測 挑選籽粒飽滿的冬小麥種子,清洗干凈、吸干、低溫(4 ℃)春化12 h,以打破種子休眠。將冬小麥品種‘隴育5號’‘隴育8號’‘隴育10號’及品系‘隴育5-2’分別進行正常處理(25 ℃)、DPI+正常處理(25 ℃)、冷脅迫 (4 ℃)和DPI+冷脅迫(4 ℃)抑制處理。

正常處理(25 ℃)和DPI+正常處理(25 ℃):將冬小麥品種‘隴育5號’‘隴育8號’‘隴育10號’及品系‘隴育5-2’在正常處理(25 ℃)和 DPI+正常處理(25 ℃)條件下培養2 d,培養條件為晝夜溫度(25 ℃),光/暗周期(14 h/10 h),光照度(6 000 lx)。因DPI+正常處理(25 ℃)后種子未發芽,對正常處理(25 ℃)1 d和2 d的材料進行ROS組織染色,染色方法參照 Kumar等[17]的方法,首先將氯化硝基四氮唑藍(NBT)1%溶液倒入培養瓶,淹沒種子并避光侵染8 h。其后將材料浸泡在無水乙醇中。最后用甘油浸制并固定試驗材料并在正置熒光顯微鏡(BA410E)下拍照。DPI(317.92 μmol/L)稱取10 mg二苯基氯化碘鹽,以少許二甲亞砜溶解,用50 mmol/L磷酸緩沖液(pH 7.8)定容至100 mL。

冷脅迫(4 ℃)處理和DPI+冷脅迫(4 ℃)抑制處理:為了明確冷脅迫處理后,冬小麥品種‘隴育5號’‘隴育8號’‘隴育10號’及品系‘隴育5-2’在冷脅迫(4 ℃)環境下的發芽率、根系和芽的生長情況及ROS信號在冬小麥組織細胞中的產生規律。首先將冬小麥品種‘隴育5號’‘隴育8號’‘隴育10號’及品系‘隴育5-2’在冷脅迫 (4 ℃)條件下培養7 d,培養條件為晝夜溫度 (4 ℃),光/暗周期(14 h/10 h),光照度(6 000 lx)。然后分別對培養7 d的材料進行發芽率、根長和芽長測定,發芽率=種子發芽數/供試種子數×100%。

2 結果與分析

2.1 冬小麥遺傳背景及種子發芽情況分析

為進一步明確冬小麥品種‘隴育5號’‘隴育8號’‘隴育10號’及品系‘隴育5-2’的遺傳背景,以pSc119.2和pTa535為探針進行遺傳背景分析,結果表明:‘隴育5號’(圖1-a)、‘隴育5-2’(圖1-b)、‘隴育8號’(圖1-c)和‘隴育10號’(圖1-d)等材料均屬于六倍體材料(2n=42),染色體組成為AABBDD基因組。

以pSc119.2(綠色)和pTa535(紅色)為探針對‘隴育5號’(a)、‘隴育5-2’(b)、‘隴育8號’(c)和‘隴育10號’(d)進行鑒定

在正常(25 ℃)環境下‘隴育5號’‘隴育5-2’‘隴育8號’和‘隴育10號’的發芽率無顯著差異(P>0.05)且發芽率均在95%以上,這說明供試材料的種子生長活力較好。在4 ℃冷脅迫環境下培養7 d后,‘隴育5號’‘隴育5-2’‘隴育8號’和‘隴育10號’種子的發芽率分別為91.71%、 90.63%、72.45%和62.78%(表1),且冷脅迫 (4 ℃)環境下品系‘隴育5-2’和‘隴育5號’的長勢顯著好于‘隴育8號’和‘隴育10號’(圖2),其中‘隴育5號’的芽長為2.15 cm,顯著長于品系‘隴育5-2’,但品系‘隴育5-2’的根長為3.81 cm,顯著長于‘隴育5號’(表1),這說明‘隴育5-2’和‘隴育5號’在冷脅迫環境下的適應能力存在差異性。

表1 冷(4 ℃)脅迫處理后冬小麥發芽率及生長情況

冬小麥‘隴育5號’(a)、‘隴育5-2’(b)、‘隴育8號’(c)和‘隴育10號’(d)

2.2 正常環境下在冬小麥組織細胞中的分布規律

冬小麥‘隴育5號’(a, b, c)、‘隴育5-2’(d, e, f)、‘隴育8號’(g, h, i)和‘隴育10號’(j, k, l)在正常環境下(25 ℃)培養1 d(a, d, g, j)和2 d(b, e, h, k)時,并采用NBT對冬小麥進行染色,藍色聚合物沉淀代表在植株體內的富集程度。在正常環境下 (25 ℃)DPI處理冬小麥‘隴育5號’(c)、品系‘隴育5-2’(f)、‘隴育8號’(i)和‘隴育10號’(l)2 d

2.2 冷脅迫環境下,在冬小麥組織細胞中的分布規律

對冷(4 ℃)脅迫處理(a, b, c, g, h, i)和冷(4 ℃)脅迫+DPI處理 (d, e, f, j, k, l)后的冬小麥幼苗進行NBT染色,‘隴育5號’(a, d, g, j)、‘隴育5-2’(b, e, h, k)、‘隴育8號’(c, f, i, l)

3 討 論

冬小麥是甘肅主要糧食作物,面積和產量均居全省口糧作物之首,其中旱地小麥約占 75%。而隴東作為甘肅冬小麥的主產區,因冬季嚴寒干旱、春季降水少,春旱和小麥生育后期高溫等環境因素影響,導致冬小麥的越冬率、產量及品質等造成嚴重影響。因此選育強抗寒抗旱冬小麥品種,是促進甘肅冬小麥增產的有效的技術途徑。目前在甘肅隴東等北部晚熟冬麥區生產推廣的‘隴育5號’[19]、‘隴育10號’[20]和‘隴育8號’[21]等品種具有較強的抗寒、抗旱性和豐產性,其中‘隴育5號’成為北部冬麥區旱地甘肅隴東和寧夏固原的第一大品種,2017年被全國農技中心確定為“華北、西北地區耐旱節水品種”。本研究通過FISH技術分析,結果表明‘隴育5號’‘隴育8號’‘隴育10號’和品系‘隴育5-2’等材料均屬于六倍體材料(2n=42)。在4 ℃冷脅迫環境下培養7 d后,‘隴育5-2’和‘隴育5號’的發芽率和長勢顯著好于‘隴育10號’‘隴育8號’,這說明‘隴育5-2’和‘隴育5號’在冷脅迫環境下具有較好的適應性。

3.2 NADPH酶介導產生的ROS在冬小麥細胞內及細胞間的信號傳導機制

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