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microRNA-338-3p抑制HepG2肝癌細胞的遷移和侵襲

2024-05-07 09:34念家輝韋卿劉國滿黃梓華黃理政浦澗
右江醫學 2024年3期
關鍵詞:微小RNA侵襲肝細胞癌

念家輝 韋卿 劉國滿 黃梓華 黃理政 浦澗

基金項目:廣西自然科學基金(2020GXNSFAA259019)

第一作者簡介:念家輝,男,醫學學士,在讀碩士研究生,研究方向:肝臟疾病基礎與臨床。E-mail:123554419@qq.com

▲通信作者:浦澗。E-mail:pujianym@163.com

[本文引用格式]念家輝,韋卿,劉國滿,等.microRNA-338-3p抑制HepG2肝癌細胞的遷移和侵襲[J].右江醫學,2024,52(3):198-202.

【摘要】? 目的? 研究microRNA-338-3p對HepG2肝癌細胞遷移、侵襲和上皮間質轉化的影響。

方法? 取HepG2肝癌細胞,隨機分為三組:control組(未轉染)、vector組(轉染空質粒)、OE組(轉染microRNA-338-3p質粒),分別取生理鹽水、空質粒、microRNA-338-3p轉染,培養48小時。實時熒光定量PCR(qPCR)檢測microRNA-338-3p的轉染效率;劃痕實驗檢測細胞的遷移指數;Transwell法檢測細胞的侵襲能力;蛋白質印跡法(Western blot實驗)檢測細胞E-cadherin、N-cadherin的相對蛋白表達量。

結果? (1)microRNA-338-3p的轉染陽性率超過90%,符合實驗標準。(2)HepG2肝癌細胞的遷移指數,control組與vector組相比較,差異無統計學意義(P>0.05);OE組與control組、vector組相比較,遷移指數明顯降低,差異有統計學意義(P<0.01)。(3)HepG2肝癌細胞的侵襲能力,control組與vector組相比較,差異無統計學意義(P>0.05);OE組HepG2與control組、vector組相比較,侵襲能力顯著下降,差異有統計學意義(P<0.001)。(4)E-cadherin相對蛋白表達量,control組與vector組相比較,差異無統計學意義(P>0.05);OE組與control組、vector組相比較,E-cadherin相對蛋白表達量均增高,差異有統計學意義(P<0.05)。(5)N-cadherin的相對蛋白表達量,control組與vector組相比較,差異無統計學意義(P>0.05);OE組與control組、vector組相比較,N-cadherin相對蛋白表達量減少,差異均有統計學意義(P<0.01)。

結論? (1)microRNA-338-3p可抑制HepG2肝癌細胞的遷移、侵襲能力;(2)microRNA-338-3p通過促進E-cadherin蛋白表達并抑制N-cadherin蛋白表達,從而抑制HepG2肝癌細胞的上皮間質轉化。

【關鍵詞】? 微小RNA;肝細胞癌;遷移;侵襲

中圖分類號:R735.7??? 文獻標志碼:A??? DOI:10.3969/j.issn.1003-1383.2024.03.002

Inhibition of microRNA-338-3p on migration and invasion of HepG2 hepatoma cells

NIAN Jiahui1, WEI Qing2, LIU Guoman2, HUANG Zihua2, HUANG Lizheng2, PU Jian1▲

(1. Department of Hepatobiliary Surgery, Affiliated Hospital of Youjiang Medical University for

Nationalities, Baise 533000, Guangxi, China; 2. Graduate School, Youjiang Medical

University for Nationalities, Baise 533000, Guangxi, China)

【Abstract】? Objective? To investigate the effects of microRNA-338-3p on migration, invasion and epithelial mesenchymal transformation of HepG2 hepatoma cells.

Methods? HepG2 hepatoma cells were extracted. They were randomly divided into three groups: control group (non-transfected), vector group (transfected with empty plasmid) and OE group (transfected with microRNA-338-3p plasmid). Normal saline, empty plasmid and microRNA-338-3p were transfected, respectively, and cultured for 48 hours. Real-time fluorescence quantitative PCR (qPCR) was used to detect the transfection efficiency of microRNA-338-3p. The migration index of cells was detected by scratch test. The invasive ability of cells was detected by Transwell method. The relative protein expression levels of E-cadherin and N-cadherin were detected by Western blot assay.

Results? (1) The positive rate of microRNA-338-3p transfection in this study was over 90%, which met the experimental criteria. (2) The migration index of HepG2 liver cancer cells showed no statistically significant difference between the control group and the vector group (P>0.05). The migration index of the OE group was significantly lower than that of the control group and the vector group, and difference was statistically significant (P<0.01). (3) There was no statistically significant difference in the invasion ability of HepG2 hepatocellular carcinoma cells in the control group and the vector group (P>0.05); compared with the control group and the vector group, the invasion ability of HepG2 in the OE group significantly decreased, and the difference was statistically significant (P<0.001). (4) There was no statistically significant difference in the relative protein expression of E-cadherin between the control group and the vector group (P>0.05); the relative protein expression of E-cadherin in the OE group was higher than that in the control group and the vector group, and the difference was statistically significant (P<0.05). (5) There was no statistically significant difference in the relative protein expression of N-cadherin between the control group and the vector group (P>0.05); compared with the control group and the vector group, the relative protein expression of N-cadherin decreased in the OE group, and the difference was statistically significant (P<0.01).

Conclusion? (1) microRNA-338-3p can inhibit the migration and invasion ability of HepG2 liver cancer cells; (2) microRNA-338-3p inhibits epithelial mesenchymal transition in HepG2 liver cancer cells by promoting E-cadherin protein expression and inhibiting N-cadherin protein expression.

【Keywords】? microRNA; hepatocellular carcinoma; migration; invasion

肝細胞癌(hepatocellular carcinoma,HCC)作為最常見的原發性肝癌類型,目前已成為世界上第六大常見的癌癥種類和第三大癌癥死因[1]。盡管治療方案不斷取得進步,但許多HCC患者的預后仍然無法令人滿意。上皮間質轉化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)是一種由上皮表型向間質表型的形態轉化過程,與肝癌患者的預后密切相關,也是肝癌晚期轉移的重要環節。在發生EMT的癌細胞中,N-cadherin和Vimentin等間充質標志物的表達上調,E-cadherin和ZO-1等上皮標志物的表達下調[2]。微小RNA(microRNAs,miRNAs)是一種長度為18~22個核苷酸的非編碼單鏈小RNA,可以通過與靶mRNA的3'-UTR結合抑制基因表達,miRNAs異常表達對HCC細胞的增殖、遷移、侵襲和耐藥的調控作用已經廣泛受到關注,其中也包括EMT相關的癌癥轉移[3]。因此,本研究旨在通過體外干擾microRNA-338-3p表達,探究其對HepG2肝癌細胞遷移、侵襲和EMT的影響。

1? 材料與方法

1.1? 材料和試劑

人肝癌細胞HepG2來自中科院干細胞庫;DMEM高糖培養基(Gibco公司,貨號:C11995500BT);青鏈霉素混合液(Solarbio公司,貨號:P1400-100);結晶紫染色液(Solarbio公司,貨號:G1063-100 mL)、胰蛋白酶-EDTA消化液(Solarbio公司,貨號:T1320-100);胎牛血清(OriCell公司,貨號:FBSST-01033-500);慢病毒合成(上海吉瑪制藥技術有限公司,貨號:ZLDZ003);miRNA第一鏈cDNA合成試劑盒[生工生物工程(上海)股份有限公司,貨號:B532451-0020];實時熒光定量PCR試劑盒SYBR Green Master (Roche公司,貨號:4913914001-5 mL);TRIzol RNA提取試劑(賽默飛公司,貨號:15596026CN);引物合成[生工生物工程(上海)股份有限公司,貨號:H001];E-cadherin抗體(武漢三鷹生物技術有限公司,貨號:20874-1-AP);N-cadherin抗體(武漢三鷹生物技術有限公司,貨號:22018-1-AP)和內參β-actin抗體(武漢三鷹生物技術有限公司,貨號:20536-1-AP);Transwell小室8 μm PC膜(corning公司,貨號:3422);RIPA裂解液(上海雅酶生物醫藥科技有限公司,貨號:PC102);BCA蛋白濃度測定試劑盒(上海碧云天生物技術股份有限公司,貨號:P0010S);ECL化學發光試劑盒(上海碧云天生物技術股份有限公司,貨號:P0018S)。

1.2? 細胞培養和處理

HepG2肝癌細胞復蘇后,培養于含有10%胎牛血清的DMEM培養基中,置于37 ℃、5%CO2恒溫培養箱中。每天常規換液1次,當細胞融合度達到90%左右即可按1∶2或1∶3傳代處理,取對數生長期細胞進行下一步實驗。

1.3? 細胞轉染和驗證

取情況良好、對數生長期的HepG2肝癌細胞進行實驗,將HepG2肝癌細胞以2×105個/well接種于六孔板中,每孔加入2 mL完全培養基,在37 ℃、5%CO2恒溫培養箱中過夜。次日按MOI=20稀釋病毒原液,將原細胞培養液移去,加入含有病毒稀釋液的DMEM完全培養基。24小時后移去六孔板中的舊病毒液,加入新鮮DMEM完全培養基繼續常規培養72小時,使用嘌呤霉素連續篩選2周。根據轉染具體情況建立對照,分為control組(未轉染)、vector組(轉染空質粒)、OE組(轉染microRNA-338-3p質粒)。使用熒光倒置顯微鏡觀察轉染后細胞的熒光表達效率;使用TRIzol試劑從HepG2肝癌細胞中提取總RNA,通過miRNA第一鏈cDNA合成試劑盒將總RNA逆轉錄為cDNA,以該cDNA為模板進行實時熒光定量PCR,反應條件為95 ℃ 10分鐘,40個循環的95 ℃ 10 s、60 ℃ 30 s。以U6為內參,結果用2-△△Ct測定相對表達量。microRNA-338-3p上游引物:5-AACAGTGTCCAGCATCAGTGA-3,U6上游引物及通用下游引物由生工生物工程(上海)股份有限公司設計合成。

1.4? 細胞劃痕實驗

預先對六孔板做好標記,將各組細胞按照5×105個/well的濃度接種到六孔板上,每孔加入2 mL完全培養基,放置于37 ℃、5%CO2恒溫箱過夜。等待細胞貼壁并均勻鋪滿單層進行操作,使用無菌黃色槍頭垂直平滑地劃出劃痕,用PBS將飄起的細胞充分洗去,再加入含有1%血清的DMEM培養基2 mL繼續在37 ℃、5%CO2恒溫箱中培養48小時。分別記錄鏡下0小時和48小時同一劃痕區域的圖片,計算遷移指數,遷移指數=(0小時的面積-48小時后的面積)/0小時的面積×100%。

1.5? 細胞侵襲實驗

使用無血清DMEM培養基將各組細胞的濃度稀釋至2×105個/mL,充分重懸后每組分別取出100 μL的細胞懸液接種到預制好基質膠的Transwell小室中,加入600 μL 10%血清DMEM完全培養基,放置于37 ℃、5%CO2恒溫箱繼續培養24小時。使用甲醇對培養結束后的細胞進行10分鐘固定,PBS漂洗兩次后用0.1%結晶紫染色15分鐘,再用PBS漂洗去多余的染料,輕柔地擦去Transwell小室上表面的細胞,最后對穿過膜的細胞進行計數。

1.6? 蛋白質印跡法實驗

提取各組HepG2肝癌細胞的總蛋白,通過BCA法測定蛋白濃度。制作7.5%SDS-PAGE凝膠,在每個加樣孔中加入30 μg蛋白樣本,濃縮膠電泳80 V,分離膠電泳120 V。濕轉法設定恒流300 mA 1.5小時將蛋白條帶轉至PVDF膜上,快速封閉液封閉15分鐘。加入一抗(E-cadherin、N-cadherin)后在4 ℃冰箱中孵育過夜,PBS漂洗三次后再加入二抗室溫孵育1小時,PBS漂洗三次,顯影后使用Image J軟件分析蛋白條帶灰度值,以β-actin作為內參計算蛋白相對表達量。

1.7? 統計學方法

使用SPSS 22.0版統計學軟件對實驗結果進行統計分析。計量資料以均值±標準差(±s)表示,兩樣本均數間的比較采用t檢驗;多個樣本間的比較采用單因素方差分析。檢驗水準設定為α=0.05,雙側檢驗。

2? 結? 果

2.1? microRNA-338-3p mimics慢病毒過表達效率檢測

熒光倒置顯微鏡下觀察各組HepG2肝癌細胞,成功被感染的細胞能夠發出綠色熒光。vector組和OE組的熒光效率均超過90%。如圖1A所示。使用RT-qPCR檢測各組細胞的microRNA-338-3p表達量,control組與vector組相比microRNA-338-3p的表達量未見明顯差異(P>0.05);control組與OE組microRNA-338-3p的表達量比較差異有統計學意義(P<0.0001),OE組microRNA-338-3p的表達量顯著上升;vector組與OE組microRNA-338-3p的表達量比較差異有統計學意義(P<0.0001),OE組microRNA-338-3p的表達量顯著上升。如圖1B所示。

2.2? 劃痕實驗檢測microRNA-338-3p對HepG2肝癌細胞遷移能力的影響

劃痕實驗結果顯示,microRNA-338-3p可以抑制HepG2肝癌細胞的遷移能力,將control組細胞48小時的遷移指數與vector組對比,差異無統計學意義(P>0.05);將control組細胞48小時的遷移指數與OE組對比,差異有統計學意義(P<0.001),OE組的遷移能力顯著小于control組;將vector組細胞48小時的遷移指數與OE組對比,差異有統計學意義(P<0.01),OE組的遷移能力顯著小于vector組。如圖2A、2B所示。

2.3? Transwell侵襲實驗檢測microRNA-338-3p對HepG2肝癌細胞侵襲能力的影響

Transwell侵襲實驗結果顯示,microRNA-338-3p可以抑制HepG2肝癌細胞的侵襲能力。將control組的穿膜細胞計數后與vector組對比,兩組差異無統計學意義(P>0.05),而與OE組對比差異有統計學意義(P<0.001),OE組的穿膜細胞計數顯著小于control組,可以認為OE組的侵襲能力顯著小于control組;將vector組的穿膜細胞計數后與OE組對比,差異有統計學意義(P<0.001),OE組的穿膜細胞計數顯著小于vector組,可以認為OE組的侵襲能力顯著小于vector組。如圖3A、3B所示。

2.4? 蛋白質印跡法實驗檢測E-cadherin、N-cadherin蛋白表達

Western bolt實驗結果顯示,microRNA-338-3p可以促進上皮細胞標志物E-cadherin的表達,抑制間質細胞標志物N-cadherin的表達。control組和vector組的E-cadherin相比差異無統計學意義(P>0.05);control組和OE組的E-cadherin相比差異有統計學意義(P<0.05),OE組的E-cadherin表達量高于control組;而vector組和OE組的E-cadherin相比差異有統計學意義(P<0.05),OE組的E-cadherin表達量高于vector組。如圖4A、4C所示。control組和vector組的N-cadherin相比差異無統計學意義(P>0.05);control組和OE組的N-cadherin相比差異有統計學意義(P<0.01),OE組的N-cadherin表達量顯著低于control組;vector組和OE組的N-cadherin相比差異有統計學意義(P<0.05),OE組的N-cadherin表達量顯著低于vector組。如圖4B、4D所示。

3? 討? 論

肝細胞癌是常見的惡性腫瘤之一,發病率和病死率都很高。近年有大量研究聚焦于肝細胞癌發生發展的機制,但是肝細胞癌進展的分子機制尚不明確,目前仍缺乏治療晚期肝細胞癌的臨床有效途徑。目前一些研究表明microRNA-338-3p在抑制多種惡性腫瘤的特性中廣泛發揮作用[4],然而其介導肝細胞癌發生發展的機制尚未完全明確。miRNA在腫瘤的發生、發展和轉移過程中起著關鍵作用,不同miRNA的生物活性調控了HCC細胞的侵襲和轉移,有的充當促癌基因發揮作用,有的充當抑癌基因發揮作用,如過表達miRNA-96-5p可以促進SMMC-7721和MHCC-97H肝癌細胞的增殖、遷移和侵襲[5];過表達miRNA-299-3p可以抑制HCC細胞的增殖、侵襲和抗凋亡,并限制EMT和細胞干性[6]。因此,明確特定miRNA的功能也許會為肝細胞癌的患者提供有效治療方案。E-cadherin常被認為可以抑制肝癌細胞的生長和轉移,它不僅和基因突變、染色體不穩定性、DNA甲基化、組蛋白修飾和非編碼RNA有關[7],還有研究發現在其他腫瘤中E-cadherin的表達量與淋巴結累積情況、腫瘤分化程度顯著相關[8],E-cadherin的缺失往往被認為是EMT的標志之一。N-cadherin對大腦、心臟、骨骼肌、血管的發育和功能調節起著重要作用,同時N-cadherin的異常表達也與腫瘤細胞的凋亡、血管生成、侵襲和轉移密切相關[9]。本研究中,實驗結果顯示在HepG2肝癌細胞中過表達microRNA-338-3p后,HepG2肝癌細胞的細胞劃痕愈合率降低,侵襲實驗中穿膜細胞數減少,上皮細胞標志物E-cadherin蛋白表達量上升,間質細胞標志物N-cadherin蛋白表達量下降。

綜上所述,microRNA-338-3p可以抑制HepG2肝癌細胞的遷移、侵襲能力;microRNA-338-3p通過促進E-cadherin蛋白表達并抑制N-cadherin蛋白表達,從而抑制HepG2肝癌細胞的上皮間質轉化,有望為肝細胞癌的臨床治療提供新思路。

參? 考? 文? 獻

[1] ??SUNG H, FERLAY J, SIEGEL R L, et al. Global cancer statistics 2020:GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin,2021,71(3):209-249.

[2] ??HUANG Y H, HONG W Q, WEI X W. The molecular mechanisms and therapeutic strategies of EMT in tumor progression and metastasis[J]. J Hematol Oncol,2022,15(1):129.

[3] ??PAN G T, LIU Y H, SHANG L R, et al. EMT-associated microRNAs and their roles in cancer stemness and drug resistance[J]. Cancer Commun,2021,41(3):199-217.

[4] ??MIRZAEI S, ZARRABI A, ASNAF S E, et al. The role of microRNA-338-3p in cancer:growth,invasion,chemoresistance,and mediators[J]. Life Sci,2021,268:119005.

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[8] ??RAJKUMAR S D, GUNABOOSHANAM B, JOSEPH L D, et al. Utility of immunohistochemical expression of E-cadherin in colorectal carcinoma[J]. Prz Gastroenterol, 2022, 17(1): 59-66.

[9] ??CAO Z Q, WANG Z, LENG P. Aberrant N-cadherin expression in cancer[J]. Biomedecine Pharmacother, 2019, 118: 109320.

(收稿日期:2023-03-11? 修回日期:2023-10-22)

(編輯:潘明志)

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