溶氧濃度對rhG-CSF工程菌高密度發酵的影響

岑 仡，童 涌，楊 峰

(1.上海三維生物技術有限公司，上海 201206； 2. 第二軍醫大學無機化學教研室，上海 200433)

溶氧濃度對rhG-CSF工程菌高密度發酵的影響

岑 仡1，童 涌1，楊 峰2

(1.上海三維生物技術有限公司，上海 201206； 2. 第二軍醫大學無機化學教研室，上海 200433)

目的確定rhG-CSF工程菌高密度發酵的最佳溶氧濃度。方法通過通入純氧，高密度發酵的溶氧值可以精確控制?？疾觳煌苎鯘舛葘こ叹纳L、質粒丟失率、乙酸積累情況以及rhG-CSF表達的影響，來確定溶氧的最佳控制范圍。結果工程菌生長階段溶氧控制在25%，誘導后控制在35%，最有利于菌體生長和外源蛋白表達，最終菌體密度為(79.6±2.1)g/L，表達量為(40.2±1.2)%。結論溶氧對工程菌rhG-CSF高密度發酵有顯著影響。

rhG-CSF; 高密度發酵; 溶氧

粒細胞集落刺激因子(G-CSF)是目前已知血細胞集落刺激因子中特異作用粒系祖細胞，促進其向成熟中性粒細胞增殖、分化，并維持其功能、存活的造血生長因子。它對于治療由腫瘤放化療、骨髓移植所引起的粒細胞減少癥具有顯著療效[1]。由于rhG-CSF天然來源非常有限，利用基因工程重組技術，進行工程菌高密度發酵是大量獲取有藥用價值hG-CSF的一條重要途徑[2]。

溶氧是影響高密度發酵的一個重要參數。工程菌在生長過程中，需要大量的氧氣參與代謝，因而氧的供給非常重要。溶氧濃度過高或過低，都會影響菌體的生長和產物合成[3]。不同溶氧濃度(DO)對高密度發酵中的菌體生長、外源質粒丟失、乙酸的生成都會造成不同的影響，而這些因素又直接影響到外源蛋白的產量高低。本研究通過不同DO對上述3個因素影響的研究，最終確定了rhG-CSF工程菌pBVQG8/ MM294最適生長和最適表達的溶氧濃度，分別為25%和35%，為大規模生產rhG-CSF奠定了基礎。在確定了最適溶氧濃度后，rhG-CSF工程菌高密度發酵最終獲得菌體80 g/L，表達量可達菌體總蛋白的40%。

1 材料與方法

1.1工程菌 工程菌pBVQG8/ MM294由中國軍事醫學科學院構建，上海三維生物技術有限公司保存，受PRPL雙重啟動子控制，能在42 ℃下表達rhG-CSF，具有氨芐抗性。

1.2培養基 ①種子培養基：LB培養基[4]；②基礎培養基：蛋白胨 12 g/L、酵母膏 24 g/L、甘油 4 ml/L、KH2PO42.31 g/L、K2HPO412.54 g/L、葡萄糖20 g/L、MgSO40.2 g/L、微量元素[5]3 ml/L；③補料培養基：葡萄糖 500 g/L、MgSO40.2 g/L、100 g/L蛋白胨。

1.3發酵方法

1.3.1種子液制備 取甘油管1支，接種于LB培養基中，在28 ℃ 200 r/min下培養至OD600(波長600 nm處的吸光值)到0.5～0.7之間。再以2%的接種量接種于LB培養基中，在28℃ 200 r/min下培養至OD600到0.5～0.7之間接種于發酵罐進行發酵。

1.3.2高密度發酵 采用分批補料方式[6]。當發酵過程中殘糖濃度低于1 g/L后，開始補料，控制殘糖濃度為1 g/L。pH控制為7.0，生長階段溫度控制為28 ℃，誘導溫度控制為42 ℃。

1.4檢測方法 ①菌體濃度測定：可見光分光光度計在λ=600 nm處測吸光值。②發酵液中葡萄糖濃度測定：使用Roche公司生產的血糖儀進行檢測。③表達量的測定：發酵液菌體做聚丙烯酰胺凝膠電泳，掃描測定rhG-CSF表達量。④乙酸測定：HPLC法，參照文獻[7]方法。⑤質粒穩定性檢測參照文獻[8]方法。

2 結果與討論

2.1溶氧控制失敗與成功的高密度發酵比較 設定控制溶氧為30%進行發酵，隨著補料的進行，菌體生長進入對數生長期后，發酵罐的攪拌轉速和通氣量設定至最大值，但是DO仍無法控制在30%，DO隨著發酵的進行，不斷下降，直至降為0。生長曲線與溶氧值及乙酸生成情況見圖1，當DO降為0后，菌體的OD600值增加速率明顯減緩，甚至不增加，檢測最終發酵液中的乙酸含量達到9.2 g/L，已經達到對菌體生長抑制的濃度。這說明溶氧值對大腸桿菌高密度發酵至關重要。要解決溶解氧的問題，必須增加純氧供氣，來滿足發酵過程菌體對氧的需求。

圖1 溶氧控制失敗的生長情況

設定控制溶氧為 30%進行發酵，當溶氧控制不住的時候，改用純氧通氣，使溶氧值始終控制在30%。發酵結果：OD600值達到了75，乙酸最終累積濃度也只有1.23 g/L。

由圖2可以看出，DO控制成功與否，對于工程菌生長有的顯著的影響。DO控制成功后，發酵液的OD600可從40左右提高到了75。乙酸積累從原先的9.2 g/L下降到1.23 g/L，未達到抑制菌體生長的濃度。

圖2 溶氧控制失敗與成功的菌體生長曲線

通過上述實驗的比較，說明DO對于rhG-CSF發酵是至關重要的，但最適DO還需要進行實驗考察進行確定。

2.2溶氧濃度對rhG-CSF工程菌高密度發酵生長階段的影響 分別控制不同的溶氧濃度(5%～40%)，進行不誘導高密度發酵，培養9 h后，取樣，分別測定發酵液OD600、乙酸含量、質粒穩定性。

在DO控制在5%～25%之間時，發酵最終光密度隨著DO的升高也不斷升高。當DO在25%～30%之間時，發酵液的OD600值也達到最高值75左右。隨后OD600隨著DO的增加而減少，此種減少可能是由于供氧過高而導致前期菌體快速生長，導致其他的營養物質過早耗竭，最終使菌體過早衰老，并發生菌體自溶所致，見圖3。

圖3 不同DO值下的菌體密度

發酵過程中, 追求高溶氧水平未必能得到高表達效果。如Meyer和 Fiechter發現, 用枯草桿菌生產A干擾素時, 溶氧限制在較低水平對產物形成有利[9]，可能是在高溶氧濃度下，菌體生理代謝活性較強, 比生長速率較快, 而質粒復制速度趕不上菌體生長速度, 質?？截悢禍p少, 造成質粒穩定性降低，質粒丟失, 最終影響蛋白產量。所以溶氧對工程菌的質粒穩定性的影響必須進行考察，見圖4。隨著DO值的上升，質粒穩定率也不斷下降，當溶氧值大于30%后，質粒穩定率下降的更加明顯。

溶氧濃度過低會弱化TCA循環, 改變轉錄水平的相關基因與葡萄糖和乙酸代謝[10], 導致乙酸大量積累。有文獻報道，當發酵液中的乙酸濃度高于5～10 g/L時[11]，會對菌體生長產生抑制作用, 降低生物量和蛋白產量。因此不同DO下的乙酸積累濃度也必須進行考察，結果見圖5。發酵液中的乙酸濃度，隨著DO的上升，不斷降低。溶氧值在5%時，乙酸積累濃度高達7.2 g/L，達到抑制菌體生長的濃度，當DO值超過10%之后，發酵液中的乙酸積累量都達不到抑制所需要的濃度。

圖4 不同DO值下的質粒穩定性

圖5 不同DO下的乙酸積累情況

通過對菌體密度、質粒穩定性和乙酸積累濃度三方面的考察以及綜合評定，確定了菌體生長階段的最適溶氧濃度為25%。

2.3不同DO對rhG-CSF表達的影響 將工程菌種子液接種于發酵基礎培養基中，控制溫度28 ℃，pH 7.0，進行高密度發酵，生長階段DO控制在25%，當OD600值到達30左右時，然后控制不同的溶氧濃度(5%～45%)下，進行誘導表達，結果見圖6。表達量隨著所控制的溶氧值升高而升高，當DO值到達35%后，表達量基本趨于穩定，在40%左右?？紤]到節約攪拌動力和氧氣用量，筆者決定誘導后溶氧值控制在35%。

2.4穩定性研究 確定好的最適溶氧濃度運用于rhG-CSF高密度發酵中，重復進行3批發酵，考察其穩定性。發酵條件為溫度28 ℃，溶氧25%、pH7.0，當OD600值達到30左右時，迅速將培養溫度升至42 ℃，同時控制溶氧濃度為35%。進行誘導表達，結果見表1，得到基本一致的結果。

圖6 不同DO值下的表達量

批號誘導OD600最終OD600表達量(%)菌體量(g/L)F00128.245.840.582F00229.247.141.279F00330.346.538.978

圖7 3批發酵菌體電泳圖譜

2.5結論 通過在不同溶氧值下工程菌pBVQG8/ MM294高密度發酵下的菌體生長、質粒丟失率、乙酸積累濃度、rhG-CSF表達量的考察，確定了工程菌生長階段和誘導階段的最適溶氧濃度，分別為25%和35%。通過對溶氧濃度的優化，工程菌pBVQG8/ MM294高密度發酵最終OD600值為45，菌體量為80 g/L，rhG-CSF表達量為40%。

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2011-01-22

[修回日期] 2011-04-22

EffectofdissolvedoxygenonhighdensityfermentationofE.coliinproducingrhG-CSF

CEN Yi1， YANG Feng2，TONG Yong1

(1.Shanghai Sunwaybio Company, Shanghai 201206,China；2.Department of Inorganic Chemistry,School of Pharmacy, Second Military Medical University, Shanghai 200433, China)

ObjectiveTo study the density of the dissolved oxygen(DO) on fermentation of E.coli in producing rhG-CSF.MethodsPure oxygen was used to control DO precisely and to observe the growth of engineered bacteria, the lost of plasmids ,the accumulation of acetic acid from different DO density. The optimum density of DO for fermentation was determined.Results25% in growth phase and 30% after induction was optimum density of DO for rhG-CSF expression and engineered bacteria growth. Under these conditions, the wet cell weight reached(79.6±2.1) g/L and the expression of rhG-CSF was(40.2±1.2)%.ConclusionsThe growth of engineered bacteria and the expression of rhG-CSF were influenced by the density of dissolved oxygen significantly.

rhG-CSF; high density fermentation; dissolved oxygen

上海市高新技術成果轉化項目[98-0075(5)].

岑 仡(1974-)，男，執業藥師.共同第一作者：童 涌(1972-)，男，碩士，執業藥師.

楊 峰.Tel: (021)81871220， E-mail: yangfeng1008@sohu.com.

R966

A

1006-0111(2011)03-0197-04