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苦菜蛋白質提取工藝優化

2014-12-16 08:10霍莉王頡
食品研究與開發 2014年20期
關鍵詞:苦菜蛋白質溶液

霍莉,王頡

(1.河北農業大學食品科技學院,河北保定 071001;2.河北大學化學與環境科學學院,河北保定 071000)

苦菜為菊科苦苣屬多年生草本植物,無毛,折斷有白汁,耐寒、耐熱、耐旱、耐瘠薄性均較強,廣泛分布于全國各個地方。全草含有多種營養成分,無毒,有抗菌、解熱、消炎、解毒等作用[1-4],尤其可解尼古丁之毒[5-6],為探究苦菜和尼古丁作用機理,需提取其主要成分。而苦菜蛋白也和其他植物蛋白一樣,不含膽固醇,容易消化,有良好的抗菌、免疫調節、抗腫瘤、保肝、抗衰老等作用[7-9],現對其利用只局限在飼料,仍有待進一步開發。植物蛋白提取方法有加熱、酸化加熱或堿化加熱凝聚法、酶法、鹽析法[10-13]??嗖说鞍滋崛∩儆醒芯?,采用鹽溶,超聲、酸熱綜合方法提取苦菜蛋白質,通過單因素和正交試驗考查料液比、加鹽量、pH、絮凝溫度等4個因素對苦菜蛋白質的提取工藝進行了優化,為實際提取苦菜蛋白的提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

苦菜(山苦荬):采于河北保定田間;鮮苦菜→洗凈→自然晾干→高速粉碎成粉末狀;硫酸、氫氧化鈉、硫酸銅、硫酸鉀、無水硫酸鈉、碳酸氫鈉、氯化鈉、硼酸、鹽酸均為分析純?;旌现甘緞篤(溶解于95%乙醇的0.1%溴甲酚綠溶液):V(溶于95%乙醇的0.1%甲基紅溶液)=5∶1。

消解爐,凱氏定氮儀(KDY-9810):北京通潤源機電有限公司;超級恒溫水?。荷虾>芸茖W儀器有限公司;離心機:北京京立離心機有限公司;烘箱:上海申賢恒溫儀設備器廠;FW80型高速萬能粉碎機:天津市泰斯特儀器有限公司;B3200S-T型超聲波清洗器:杭州旭東升科技有限公司;pHS-3CW酸度計:上海理達儀器廠。

1.2 實驗方法

1.2.1 蛋白質的測定

按照食品安全國家標準:食品中蛋白質的測定(GB 5009.5—2010),凱氏定氮法測定苦菜蛋白質含量。取0.5 g樣品粉末放入定氮瓶中,加入W(CuSO4):W(K2SO4)=1 ∶3 混合物 6 g,再加入 10 mL 濃 H2SO4,消煮至溶液呈透明的藍綠色,冷卻,加入10 mL蒸餾水稀釋。打開凱式定氮儀,將消煮管固定于加堿處,加稍過量的400 g/L的NaOH溶液(約40 mL)。將加有20 mL 2%硼酸溶液和1滴~2滴混合指示劑的錐形瓶放在蒸餾托盤上,按蒸餾鍵進行蒸餾,當冷凝管口的冷凝液呈中性時(pH紙測定)即為蒸餾終點;取下錐形瓶,再滴加1滴混合指示劑,用已標定的HCl溶液進行滴定,溶液由淺綠色變為淺紅色時即為滴定終點。蛋白含量(g/100 g)=[CHCl(V-V0)×0.014×6.25]×100/m。測定苦菜粗蛋白含量平均為21.11%。

1.2.2 蛋白質提取實驗設計

蛋白提取步驟為:鹽溶→超聲→離心→調pH→加熱沉淀→離心→干燥→稱重。

操作要點:由于蛋白質分子表面帶有電荷,低濃度中性鹽鹽離子可促使蛋白質溶解,為了方便食用,采用NaCl作為鹽,超聲可縮短提取時間。綜合采用蛋白質提取率高,凝集迅速的酸熱法,用鹽酸調pH,再加熱沉淀,離心干燥得到苦菜蛋白粉。

1.2.3 蛋白質提取率計算公式

蛋白質提取率(%)=(苦菜蛋白質提取絕對干重/苦菜粗蛋白含量)×100%

2 結果與討論

2.1 單因素試驗

2.1.1 料液比的影響

稱取的5g苦菜粉末,料液比分別為1∶10、1∶15、1 ∶20、1∶25、1 ∶30,以加鹽(NaCl)量為 1%,超聲 30 min(可大大節省提取時間,文獻加熱提取需浸泡24 h[10]),離心,取上清液,以1 mol/L的稀鹽酸調pH3.0于60℃下加熱10 min,靜置1 h,3000 r/min離心10 min,棄上清液,50℃下烘箱干燥,回潮后稱重。結果見圖1。

當料液比為1∶15,1∶20蛋白提取率較高,分別為44.62%和44.76%,其他配比蛋白提取率都較低,顯然料液比有最佳范圍。加水少,苦菜蛋白溶解不充分;加水多,沉淀不完全,易損失。

圖1 料液比對蛋白提取率的影響Fig.1 Impacts of the ratio of ixeris chinensis to water

2.1.2 提取液pH的影響

用1mol/L的稀鹽酸調節pH分別為2.7、3.0、3.3、3.6、3.9,料液比 1 ∶20,加鹽量為 0.6%,絮凝溫度為60℃進行試驗,其他操作同2.1.1,結果如圖2所示。

圖2 pH對蛋白提取率的影響Fig.2 Impacts of pH

當pH為3.0時達到最大(27.00%),且pH>3.0蛋白提取率下降。所以選擇pH為3.0。

2.1.3 絮凝溫度的影響

設 60、65、70、75、80 ℃ 5 個不同水平,料液比為1∶20,pH3.0,加鹽量為0.6%下進行試驗,其他操作同2.1.1,見圖 3。

圖3 絮凝溫度對蛋白提取率的影響率的影響Fig.3 Impacts of flocculation temperature

說明苦菜蛋白提取率隨溫度升高顯著增大,到70℃達最大值(27.57%),70℃以后蛋白提取率升高不大,Julius.K等[14]對植物蛋白提取所需要的熱能進行研究,可以估算提取葉蛋白的溫度范圍。

2.1.4 加鹽量的影響

加鹽量分別為 0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%,以料液比為1∶20,pH3.0,絮凝溫度60℃,其他操作同上,見圖4。

圖4 加鹽量對蛋白提取Fig.4 Impacts of Adding salt

圖4結果表明隨加鹽量增加苦菜蛋白提取率為先增加后減少,當加鹽量為0.8%時,蛋白提取率出現最佳值(32.49%)。低濃度Cl-可促使蛋白質溶解,但濃度過高,會引起鹽析。開始考察加鹽量大于1%時,蛋白提取率顯著下降,可能與苦菜自身蛋白質顆粒大小、組成和親水性有關。

2.2 正交試驗

在單因素考察苦菜蛋白提取條件基礎上,采用四因素(料液比、加鹽量、pH值、絮凝溫度)三水平進行正交試驗,優化苦菜蛋白質的提取工藝,實驗設計見表1,結果見表 2。

表1 正交試驗設計Table 1 Design of orthogonal experiment

正交試驗及極差分析結果表明,影響苦菜蛋白質提取率的因素主次順序為:加鹽量>pH>料液比>絮凝溫度;最佳提取工藝為:加鹽量1.0%,pH3.0,料液比1∶25 g/L,絮凝溫度65℃。在此條件下,苦菜葉蛋白的提取率可達49.36%。

2.3 粗蛋白中蛋白含量

取提取的粗蛋白0.5 g若干份,方法同1.2.1,凱氏定氮法測定粗蛋白中蛋白含量均為53.7%。

表2 正交試驗結果Table 2 Rusults of orthogonal experiment

3 結論

苦菜含有豐富的種類均衡的氨基酸的蛋白質[15],苦菜蛋白功用還有待深入研究,而苦菜蛋白提取是基礎。

以苦菜蛋白提取率大,操作簡便為目的,采用了鹽溶、超聲、酸熱綜合方法提取苦菜蛋白質,提取時間大大縮短,得到影響粗蛋白提取率的因素依次為加鹽量>pH值>料液比>絮凝溫度;最佳提取工藝為:加鹽量1.0%,pH值3.0,料液比1∶25 g/L,絮凝溫度65℃。在此條件下,苦菜葉蛋白的提取率可達49.36%。

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