菊芋菊糖的提取、聚合度分布及抗氧化活性的研究

張宏志，馬艷弘*，黃開紅，李亞輝，黃玉玲

（1.江蘇省農業科學院農產品加工研究所，江蘇南京210014；2.鹽土大地農業科技有限公司，江蘇大豐224145）

菊芋菊糖的提取、聚合度分布及抗氧化活性的研究

張宏志1，馬艷弘*1，黃開紅1，李亞輝1，黃玉玲2

（1.江蘇省農業科學院農產品加工研究所，江蘇南京210014；2.鹽土大地農業科技有限公司，江蘇大豐224145）

以新鮮菊芋為原料，比較熱水浸提、酶法、超聲和微波輔助熱水浸提4種提取方法對菊芋菊糖的提取率、聚合度、抗氧化能力的影響。采用不同截留相對分子質量的超濾管對提取液中菊糖聚合度分布進行分析，通過清除1，1-二苯基-2-三硝基苯肼（DPPH）、羥基自由基（·OH）和超氧陰離子自由基（O2-·）試驗來研究菊糖體外抗氧化活性。結果表明，菊芋菊糖最佳提取工藝為：料液質量體積比1 g∶20 mL，微波功率800 W，間歇式輔助處理6 min，提取溫度80℃，提取時間120 min，菊糖得率為15.35%。酶法輔助提取對菊糖聚合度基本沒有影響，超聲和微波輔助造成菊糖平均聚合度下降，其中聚合度30＜DP＜60的菊糖樣品比例由32.5%分別下降到28.6%和16.5%，聚合度DP＞60的菊糖比例由13.6%下降到6.8%和3.6%。不同體外抗氧化體系中，4種方法提取所得菊糖均表現出一定的抗氧化能力，且與其質量濃度呈明顯量效關系。其中，微波輔助提取法所得菊糖對活性氧自由基的清除作用最強，顯示出較強的抗氧化活性。

菊芋；菊糖；提??；聚合度；抗氧化

菊芋（Jerusalem artichoke）為菊科向日葵屬植物，俗稱鬼子姜、洋姜等，原產于北美洲，后經歐洲引入我國，以塊莖繁殖，耐低溫、貧瘠和鹽堿，產量較高，在我國的沿海灘涂地區有大面積種植，是對沿海灘涂進行土壤改良的先鋒植物［1］。菊芋塊莖中富含菊糖（又稱菊粉），質量分數為菊芋濕重的10%～20%，干重的80%左右，是加工生產菊糖及其制品的首選原料［2］。菊糖是由D-果糖經β（2→l）糖苷鍵脫水聚合而形成的果聚糖，呈直鏈結構，其末端連接1個葡萄糖殘基，每個菊糖分子約含30～50個果糖殘基［3］。菊糖作為天然可溶性膳食纖維，能夠增殖腸道內雙歧桿菌，防止腸道感染，促進礦物質的吸收，控制血脂，防治便秘和肥胖，降低血糖；此外，菊糖可作為糖、脂肪替代物大量用于低熱量、低糖、低脂肪食品中，顯著改善無脂、低脂食品的口感和質感，是一種純天然的功能性食品添加劑［4-6］。

目前，國內菊芋主要被用來制作醬菜或泡菜，以其為原料提取菊粉的產業還處在起步階段，其加工要經過切片、烘干、粉碎、提取等諸多工序，存在能耗大、生產成本高，提取率低等諸多技術難題。有關菊糖提取分離的研究雖有零星報道［7-9］，但大多不適合規?；a，且不同提取方法對聚合度和抗氧化能力的影響，以及聚合度和抗氧化能力之間的關聯性也鮮有報道。鑒于此，作者系統研究了熱水浸提法，以及酶法、超聲、微波輔助熱水浸提對菊糖提取率、聚合度及體外抗氧化活性的影響，為尋求科學高效的菊糖加工技術途徑，提高菊芋經濟效益，實現菊糖產業化生產提供科學依據。

1　材料與方法

1.1材料與試劑

新鮮菊芋：江蘇大豐鹽土大地有限公司提供；果蔬脫衣劑：購自廈門味可多食品添加劑有限公司產品；果膠酶和纖維素酶：購自南京奧多福尼生物科技有限公司；羥自由基和超氧陰離子自由基測試試劑盒：購自南京建成生物工程研究所；所用DPPH（1，1-二苯基-2-三硝基苯肼）、苯酚、濃硫酸、酒石酸鉀鈉、3，5-二硝基水楊酸（均為分析純）：均購自國藥集團化學試劑有限公司。

1.2儀器與設備

DK-8D型電熱恒溫水槽：上海精宏實驗設備有限公司產品；JJ500型電子天平：常熟市雙杰測試儀器廠產品；HR2096型攪拌機：飛利浦電子香港有限公司產品；SCIENTZ-ⅡD超聲波細胞破碎機：寧波新芝科技股份有限公司產品；WD800G型微波爐：佛山順德格蘭仕微波爐電器有限公司產品；D-8型紫外可見分光光度計：上海奧析科學儀器有限公司產品；LXJ-ⅡB型低速大容量多管離心機：上海安亭科學儀器廠產品；Milipore超濾管：南京漢隆實驗器材有限公司產品；FE-20實驗室pH計：梅特勒-托利儀器有限公司產品；RE6000型旋轉蒸發器：上海亞榮生化儀器廠產品。

1.3工藝流程

鮮菊芋→清洗→脫皮→蒸煮→打漿→提取→過濾→除雜→脫色→濃縮→冷凍干燥→成品

1.4操作方法

1.4.1菊芋樣品預處理將新鮮菊芋洗凈后瀝干，浸入85℃含質量濃度1.5 g/dL的果蔬脫衣劑水溶液中靜置15 min，輕微攪拌，待菊芋表皮自然脫落后取出菊芋塊莖，清水沖洗，蒸煮至熟化，與水按一定比例混合后打漿，得到用于提取菊芋菊糖的無褐變反應的乳白色原料液。

1.4.2菊芋菊糖提取

1）熱水浸提法稱取10 g預處理過的鮮菊芋于250 mL錐形瓶中，研究料液質量體積比和提取溫度、時間、次數對菊糖提取率的影響。具體方法如下：

料液比：提取時間30 min，取溫度60℃，提取次數1次，試驗組料液質量體積比分別為1 g∶5 mL～1 g∶30 mL，試驗重復3次；

提取溫度：提取時間30 min，料液質量體積比為1 g∶20 mL，提取次數1次，試驗組溫度分別為60、70、80、90、100℃，試驗重復3次；

提取時間：取溫度90℃，料液質量體積比為1 g∶20 mL，提取次數1次，試驗組時間分別為30、60、90、120、150 min，試驗重復3次；

提取次數：提取時間90 min，取溫度90℃，料液質量體積比為1 g∶20 mL、試驗組提取次數分別為第1次、第2次、第3次，試驗重復3次。

在上述單因素試驗基礎上，選定對提取率影響較大的因素進行正交設計法，以確定菊糖最佳浸提條件。

表1　正交試驗因素及水平表Table 1Factors and levels of orthogonal experiment

3）超聲波輔助法稱取10 g預處理過的鮮菊芋于250 mL錐形瓶中，以料液質量體積比1 g∶20 mL加入蒸餾水，在超聲波細胞破碎機中分別處理不同時間（5～25 min），超聲輸出功率為800 W，超聲作用時間5 s，超聲間歇時間2 s，然后按優選的熱水浸提參數提取菊糖，考察超聲輔助對菊糖提取效果的影響。

4）微波輔助法稱取10 g預處理過的鮮菊芋于250 mL錐形瓶中，以料液質量體積比1 g∶20 mL加入蒸餾水，在微波爐中用中火功率分別處理不同時間（2～10 min），處理過程每微波1 min間歇1 min，并不斷用水補齊原料液比，然后按優選的熱水浸提參數提取菊糖，考察微波輔助對菊糖提取效果的影響。

1.4.3菊芋菊糖分離純化取過濾后的菊糖提取液進行除雜處理，添加質量分數10%新鮮石灰乳調節pH值為11左右，放入70℃恒溫水浴保溫60 min后抽濾，濾液再用磷酸回調pH值為6.5左右，再經離心可得澄清的提取液。脫色工藝為量取上述澄清提取液100 mL置于燒杯中，加入質量分數2%高溫活化處理過的活性炭粉末，攪拌均勻后于70℃恒溫水浴保溫60 min，冷卻至室溫后離心，上清液再用2層定性濾紙抽濾，以去除殘留的活性炭粉末。

1.5指標測定

1.5.1總糖的測定采用苯酚-硫酸法測定菊芋汁中總糖含量。菊芋提取液經適當稀釋后過濾，取濾液2 mL加入1 mL 6%的苯酚和5 mL濃硫酸，立即搖勻，在常溫下放置20 min后，在490 nm下測定吸光值，最后根據標準曲線計算總糖含量。

1.5.2還原糖的測定采用3，5-二硝基水楊酸（DNS）法測定菊芋汁中還原含量。菊芋提取液經適當稀釋后過濾，取濾液2 mL加入1.5 mL DNS試劑，混勻后沸水浴5 min，冷卻至室溫后用蒸餾水定容至25 mL，于540 nm處測定吸光值，最后根據標準曲線計算還原糖含量。

1.5.3菊芋聚合度分布測定參照文獻［10～12］的原理和方法，將菊糖提取液靜置過夜后離心，上清液依次通過截留分子質量1 000、5 000、3 000的超濾管進行超濾處理，離心轉速為3 500 r/min，離心時間為25 min，所得截留液分別收集、濃縮，凍干，得到不同相對分子質量范圍的菊芋菊糖，測定菊糖含量，以此分析菊糖的聚合度分布。

1.5.4體外抗氧化活性的測定

“我問她為什么來找我，她說在城里不認識別的律師，既然羅素青信任我，那她也只能叫我替她辦這件事。她想讓我幫她辦理房產過戶等等手續，我真的沒時間，也不想跟羅瑞他們交涉，這肯定是個麻煩事，所以她就找了你?！标惵蓭熃忉尩?。

1）DPPH清除率的測定參照Braca［13］的方法。用無水乙醇準確配制質量分數為0.004%的DPPH溶液，4℃避光待用。將1.4.3節純化得到的菊糖用雙蒸水配制成不同質量濃度（0.5、1.0、2.0、4.0、8.0和10.0 mg/mL），各取1 mL上述多糖溶液于試管中，再加入4 mL 0.004%的DPPH溶液，混勻，避光靜置30 min，無水乙醇做空白，在517 nm處測定吸光值A，重復3～5次，計算清除率E。以近似質量濃度VC作為對照，比較二者清除羥自由基能力的強弱。

2）羥自由基（·OH）清除率的測定利用Fenton反應產生羥自由基，當給予電子受體后，用Gress試劑顯色，形成紅色物質，其呈色與羥自由基的多少成正比關系。測定方法是將1.4.3節純化得到的菊糖用雙蒸水配制成不同質量濃度（0.5、1.0、2.0、4.0、8.0和10.0 mg/mL），按照試劑盒說明書配置好各試劑和應用液，混勻，室溫放置20 min，雙蒸水調零，于550 nm波長處測定各管吸光度A，重復3～5次，計算清除率E。以近似質量濃度VC作為對照，比較二者清除羥自由基能力的強弱。

3）超氧陰離子自由基（O2-·）清除率的測定模擬機體中黃嘌呤和黃嘌呤氧化酶反應系統，產生超氧陰離子自由基，加入電子傳遞物質及Gress顯色劑，使反應系統呈現紫紅色。測定方法是將1.4.3節純化得到的菊糖用雙蒸水配制成不同質量濃度（0.5、1.0、2.0、4.0、8.0和10.0 mg/mL），按照試劑盒說明書配置好各試劑和應用液，混勻，室溫放置10 min，雙蒸水調零，于550 nm波長處測定各管吸光度A，重復3～5次，計算清除率E。以近似質量濃度VC作為對照，比較兩者清除羥自由基能力的強弱。

1.6計算方法

菊糖質量（g）=總糖質量（g）－還原糖質量（g）

菊糖提取率（%）=溶液中菊糖質量（g）/原料中菊芋質量（g）×100%

自由基清除率（%）=（A空白管-A測定管）/A空白管× 100%

2　結果與分析

2.1不同提取方法對菊糖提取率和聚合度分布的影響

2.1.1熱水浸提對菊糖提取率的影響由熱水浸提單因素實驗結果（見表2）可知，料液質量體積比、提取溫度和提取時間對菊糖的提取率影響最大，提取次數選取1次。為了了解菊糖提取的最佳工藝條件，以料液比，提取溫度和提取時間為試驗因素，進行3因素3水平正交試驗。試驗結果和極差分析見表3。

表2　單因素試驗結果Table 2Results of single factor experiment

表3　正交實驗結果Table 3Results of orthogonal experiment

續表3

由表3極差R可知，不同因素對菊糖提取率的影響次序為：A>B>C，即料液比>提取溫度>提取時間。由K值可選出最優條件組合為A3B2C3，即菊糖熱水浸提最佳工藝條件為：料液質量體積比1 g∶20 mL，提取溫度80℃，提取時間120 min。經試驗驗證，該條件下菊糖提取率為12.84%。

2.1.2酶解輔助提取對菊糖提取率的影響酶法輔助提取主要借助酶對細胞壁結構破壞而促進多糖溶出的作用，該方式因反應條件溫和、操作時間短、成本低等優勢逐漸被應用于多糖的提取。作者選用不同質量分數果膠酶和纖維素酶，在自然pH（6.5）條件下對菊糖提取液先進行酶解作用，后進行熱水浸提。結果由圖1可知，隨著酶質量分數的升高，菊糖提取率先上升后略微下降。當酶質量分數為4%時，菊糖提取率達到最高的13.15%，較熱水浸提工藝并無顯著提高。

圖1　酶法輔助提取對菊糖提取率的影響Fig.1Enzyme-assisted extraction on extraction ratio of inulin

2.1.3超聲輔助提取對菊糖提取率的影響如圖2結果顯示，與熱水浸提相比，菊芋經超聲波處理后，菊糖得率隨處理時間的延長而明顯提高，20 min時達到最大值14.75%，這說明細胞在短時間內即可被超聲波形成一定程度的破壞，使存在于細胞間和細胞壁的多糖釋放出來。隨后延長超聲作用時間，菊糖的提取率反而降低，其原因一方面可能是長時間的超聲剪切作用導致部分多糖的降解；另一方面細胞過釋放過多的其他不溶物和黏液質進入提取液，也會影響菊糖的正常溶出。因此，選取超聲時間20 min為超聲輔助最優參數。

圖2　超聲波輔助提取對菊糖提取率的影響Fig.2Ultrasound-assisted extraction on extraction ratio of inulin

2.1.4微波輔助提取對菊糖提取率的影響從圖3可知，微波作用時間對菊糖提取率有較大影響。微波處理時間為6 min時菊糖的提取率最高，達到15.35%。在處理時間為6 min以前，菊糖提取率隨時間延長而逐漸升高，原因可能在于微波對細胞膜短時高效的破碎作用，菊糖溶出迅速而充分；但當時間超過6 min時，菊糖提取率趨于平緩甚至開始下降，可能是由于長時間微波處理造成環境溫度過高，菊糖發生降解現象，這一現象在后續的聚合度測定中也得到了驗證。因此，選取微波時間6 min為微波輔助最優參數。

2.2菊芋提取液中菊糖聚合度分布及比例

多糖的生理活性與聚合度大小有著密切的關系，相對分子質量越大，分子體積越大，越不利于跨膜障進入生物體內發揮生物學活性，相對分子質量小的多糖更容易結合活性位點，但相對分子質量過低又無法形成產生活性的聚合結構［14］。因此，除了對菊糖提取率的影響，探討不同提取方式對菊糖聚合度的影響也至關重要。作者分析不同提取方式下得到的菊糖提取液，將它們依次通過截留相對分子質量為1 000、5 000、3 000的超濾膜，然后測定每段的菊糖的含量，以初步確定菊糖的聚合度分布。其聚合度分布情況如圖4可知，與熱水浸提相比，酶法輔助作用方式溫和，聚合度分布基本沒有變化，超聲和微波輔助提取得到的聚合度30＜DP＜60的菊糖樣品由32.5%分別下降到28.6%和16.5%，聚合度DP＞60的菊糖由13.6%下降到6.8%和3.6%，而相應的低聚合度菊糖比例大幅上升，這說明作用方式相對激烈的超聲和微波輔助方式下，高聚合度菊糖發生明顯降解現象，平均聚合度降低。

圖3　微波輔助提取對菊糖提取率的影響Fig.3Microwave-assisted extraction on extraction ratio of inulin

圖4　菊糖聚合度分布及比例Fig.4Polymerization degree distribution of inulin

2.3體外抗氧化活性的研究

2.3.1清除DPPH的測定結果DPPH是一種穩定的，以氮為中心的有機自由基，乙醇溶液中呈深紫色，在517 nm處有最大吸收峰。當有自由基清除劑存在時，自由基提供一個電子與DPPH自由基孤對電子配對而使吸收峰減弱或消失，其變化程度與自由基清除程度呈線性關系，據此可定量評價清除劑的清除能力［15］。如圖5所示，不同提取方式得到的菊糖樣品均具有顯著的DPPH清除能力，在0.5～10 mg/mL的有效質量濃度范圍內呈濃度依賴趨勢；當樣品濃度＞10 mg/mL，增長趨勢趨于穩定。其中，微波輔助得到的菊糖樣品在5 mg/mL時清除率已達50%，清除能力明顯高于其他樣品。15 mg/mL時，熱水浸提、酶法、超聲和微波輔助得到的菊糖樣品清除DPPH的能力分別是63.1%、65.4%、70.1%和88.4%。對比VC可見，菊糖各樣品清除DPPH的能力低于VC。在較高質量濃度下，微波輔助得到的菊糖樣品具有與VC相當的清除效果。

圖5　菊糖清除DPPH的能力Fig.5Scavenging capacity of inulin on DPPH free radicals

2.3.2清除羥基自由基（·OH）的測定結果作為活性氧中毒性最大的自由基，·OH能夠誘導生物分子如核酸、蛋白質和脂類等物質嚴重的氧化性損傷，·OH清除率是反映藥物抗氧化作用的重要指標［16］。菊糖不同來源樣品清除·OH的能力如圖6所示。在0.5 mg/mL時，各菊糖樣品就表現出較高清除·OH的能力，且隨著濃度的增加，作用不斷增強，在7.5 mg/mL后趨于平緩。從整體上看，超聲和微波輔助提取的菊糖樣品清除·OH的能力相對較強，而熱水浸提和酶法輔助得到的菊糖樣品的清除能力相當。15 mg/mL時，熱水浸提、酶法、超聲和微波輔助得到的菊糖樣品清除·OH的能力分別是68.5%、67.1%、82.8%和88.8%，均低于同等濃度下的VC清除能力。但隨著質量濃度增大，菊糖樣品清除效果逐漸接近VC，尤其是微波輔助得到的菊糖樣品。

2.3.3清除超氧陰離子自由基（O2-·）的測定結果生物體內氧化還原反應中，有氧會產生O2-·，在人體中含量過多會導致細胞死亡，酶失活，DNA和膜的降解，適量補充外源性清除O2-·的食物，可預防這類損傷和病變的發生和發展［17］。因此，研究菊糖清除超氧陰離子的能力是研究其抗氧化功能的重要方面。圖7所示，在較低質量濃度時，菊糖對O2-·的清除能力的量效關系非常明顯，樣品質量濃度＞7.5 mg/ mL后，隨著濃度增大，清除能力不再變化。其中，超聲輔助提取得到的菊糖樣品清除O2-·能力略低于其他3種提取方式，其在2.5 mg/mL后清除能力就基本趨于平穩，不再上升。15 mg/mL時，熱水浸提、酶法、超聲和微波輔助得到的菊糖樣品清除O2-·的能力分別是45.1%、46.4%、32.9%和51.4%。VC在質量濃度為2.5 mg/mL時即可完全清除溶液中的O2-·，明顯高于此濃度下各菊糖樣品的清除能力。

圖6　菊糖清除·OH的能力Fig.6Scavenging capacity of inulin on hydroxyl free radicals

圖7　菊糖清除O2-·的能力Fig.7Scavenging capacity of inulin on superoxide anion free radicals

3　討論

提取率低下和脫色負擔重是菊芋生產的技術瓶頸。作者對新鮮的菊芋進行去皮蒸煮預處理，既可有效防止菊芋褐變，減輕后續純化負擔，又有助于菊糖得率的提高，適合工業化生產需求；采用熱水浸提法生產菊糖，通過單因素和正交試驗確定了最佳提取條件：料液質量體積比1 g∶20 mL，提取溫度80℃，提取時間120 min，菊糖得率最高為12.84%，在此最佳工藝前分別輔助酶法、超聲和微波處理，菊糖得率可分別提高到13.15%、14.75%和15.35%。由此可見，在熱水浸提工藝之前選用微波間歇式輔助處理，菊糖提取效率最高。

多糖具有清除多種活性氧（Reactive oxygen species，ROS）的抗氧化作用，其可能的抗氧化機理有多種解釋，包括直接作用于ROS本身，作用于抗氧化酶，絡合產生ROS需要的金屬離子以及促進超氧化物歧化酶從細胞表面釋放等［19］，其中體外抗氧化機理主要是多糖直接作用于ROS達到清除效果。當前，多糖抗氧化作用的研究僅停留在表面階段，有關抗氧化作用與多糖結構的關系至今仍不清楚，相關領域缺乏科學的依據和結論，導致尋找高活性的多糖具有較大的盲目性?，F初步認為多糖生物活性與多糖的相對分子量密切相關，相對分子質量大小適當的多糖，其活性最高。菊糖是由多個果糖基以相同的糖苷鍵連接，且末端為一個葡萄糖殘基的高聚合物。每個果糖基中都含有數目不等的活性羥基提供活潑氫。在氧化反應過程中，菊糖中每一個果糖基的活性羥基與羥自由基（·OH）的活潑氫結合生成穩定的化合物水；另一方面，多糖中的活潑氫與活潑的超氧陰離子自由基（O2-·）反應，生成穩定的化合物水；此外，菊糖還通過電子轉移直接給出電子而清除自由基，如DPPH的清除，從而起到抗自由基氧化的作用［20-21］。微波輔助熱水浸提提取得到的菊糖樣品均聚合度最低，說明菊糖發生明顯降解，由長鏈降解為短鏈或單分子的果糖，但其對自由基清除能力卻最為顯著，可能的原因就是低聚合度的菊糖分子鏈短，相對分子質量大小適中，分子間力小，更易結合活性位點，同時暴露出來更多的具有抗氧化活性的物質或基團如活性氨基和羥基，因而具有更強的抗氧化能力［22-24］。

另外，實驗中提取得到的菊芋菊糖是不同聚合度果聚糖的混合物，有關不同相對分子質量（聚合度）菊糖純品抗氧化活性的研究還未見報道，為了明確它們之間具體的構效關系，有關此方面的工作正在進一步展開。

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Extraction and Polymerization Degree Distribution of Inulin from Jerusalem artichoke and Anti-Oxidation Activity Study

ZHANG Hongzhi1，MA Yanhong*1，HUANG Kaihong1，LI Yahui1，HUANG Yuling2
（1.Institute of Farm Product Processing，Jiangsu Academy of Agricultural Sciences，Nanjing 210014，China；2. Saline Land Agricultural Science and Technology Limited Company，Dafeng 224145，China）

To compare the extraction rates，polymerization degree distribution and antioxidant properties，inulin was extracted from fresh Jerusalem artichoke via hot water，enzyme-assisted，ultrasound-assisted and microwave-assisted hot water respectively.Polymerization degree analysis of different the inulin extracts were assessed by Milipore with different molecular weight cut，and their own antioxidant activity were evaluated in vitro by radical scavenging assay such as DPPH、·OH and O2-·.The results of the experiment showed that the optimal process conditions were 1 g∶20 mL ofJerusalem artichoke and the microwave at 800 W for 6 min，before water at 80℃for 120 min，and the highest extract ratio of inulin was 15.35%in these conditions.The average degrees of inulin extracted by ultrasound-assisted and microwave-assisted technology are lower than that extracted by the traditional hot water and enzyme-assisted technology.Specifically，the polymerization degrees from 30 to 60 had decreased from 32.5%to 28.6%and 16.5%，and the polymerization degrees above 60 had decreased from 13.6%to 6.8%and 3.6%.Experimental results suggested that inulin had some antioxidant ability in vitro and there is dose-effect relation.Especially it is important to note that the antioxidant capacity of inulin varies with different extraction techniques，and the inulin sample extracted by microwave-assisted technology had relatively strong scavenging capability to reactive oxygen species.

Jerusalem artichoke，inulin，extraction，degree，anti-oxidation

TS 201.1

A

1673—1689（2015）10—1069—09

2014-10-29

江蘇省農業科技自主創新資金自由探索項目（CX（14）5059）；江蘇省農業科技自主創新資金產業技術體系類項目（CX（12）1005）；江蘇省科技支撐計劃（農業）（BE2014347）。

張宏志（1985—），男，山西汾陽人，工學博士，助理研究員，主要從事功能性低聚糖和多糖的研究。E-mail:zhz0731@sina.cn

馬艷弘（1972—），女，山西中陽人，工學博士，副研究員，主要從事生物技術與功能食品研究。E-mail:ma_yhhyy@126.com