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表達TGEVS基因AD片段的重組乳酸桿菌的構建及免疫研究

2015-12-23 10:34黃海楠黃海鷗楊金生程榮華劉云志銳姚新華
養殖與飼料 2015年11期
關鍵詞:雙酶靜置電泳

黃海楠黃海鷗 楊金生程榮華劉云志 任 銳姚新華*

1.吉林省畜牧獸醫科學研究院,長春 130062;2.吉林省長春市動物檢疫站,長春 130062

表達TGEVS基因AD片段的重組乳酸桿菌的構建及免疫研究

黃海楠1黃海鷗2楊金生1程榮華1劉云志1任 銳1姚新華1*

1.吉林省畜牧獸醫科學研究院,長春 130062;2.吉林省長春市動物檢疫站,長春 130062

為構建表達基因AD片段的重組乳酸桿菌,根據豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV)S蛋白的抗原決定簇AD片段的基因序列,設計引物,PCR擴增該片段,測序正確后利用穿梭質粒整合進益生乳酸菌中表達。結果顯示,經過酶切、PCR和PAGE電泳鑒定重組的基因在乳酸菌中得到了表達。所以,獲得了表達基因AD片段的重組乳酸桿菌。

豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV);抗原片段;乳酸菌

豬感染了傳染性胃腸炎病毒(TGEV)后引起的嚴重腹瀉、嘔吐和脫水并且高度接觸性傳染的傳染病就是豬傳染性胃腸炎。1946年 DOYLE和HUTCHINGS在美國首次報導發現了該病。日本和英國先后在1956年和1957年報導發現了該病,現在豬傳染性胃腸炎已經成為一種世界性的豬疫病[1-3]。我國從60年代起就曾報導有豬傳染性胃腸炎的發生,近些年來該病更有進一步擴大流行的趨勢。該病常在冬季和早春等寒冷季節的某些區域呈地方性暴發流行,給養豬業帶來極大的危害[4]。

豬傳染性胃腸炎病毒的結構蛋白有4種。其中纖突糖蛋白(S)是主要的免疫蛋白,是惟一能夠誘導機體產生中和抗體,給宿主提供免疫保護的結構蛋白,它攜帶主要的B淋巴細胞抗原決定簇,并在決定宿主細胞的親嗜性、細胞融合、致病性和血凝作用等方面起重要作用[5]。TGEV的纖突糖蛋白有4個抗原位點分別是A、B、C、D,不同毒株之間A和D抗原位點高度保守,在誘導中和抗體過程中起主要作用。A或D抗原位點的缺失可導致纖突糖蛋白喪失產生中和抗體的能力。

由于AD位點對于TGEV產生中和抗體的重要性,因此我們利用分離到的毒株研制以乳酸桿菌為載體表達基因AD抗原片段的基因工程口服疫苗。

1 材料與方法

1.1 材 料

1)毒株、細胞和菌株。病毒TGEV為本實驗室分離并保存在-80℃。豬腎傳代細胞IBRS2購自武漢中國典型培養物保藏中心。凍干的乳酸菌由本實驗室分離并保存在-80℃(付殿國研究員贈予)。JM109感受態細胞購自北京全氏金生物技術有限公司。

2)試劑。犢牛血清、胰酶、MEM培養基、谷氨酰胺、細胞培養瓶、DEPC水均購自北京鼎國生物公司。Trizol試劑購自GIBCO公司。Ex TaqDNA聚合酶、dNTP(2.5 mmoL/L與10 mmoL/L)、T4 DNA連接酶、各種限制性內切酶、pMD18T載體、DL 2000和DL 15000 Marker為TakaRa寶生物工程(大連)公司產品;RT-PCR試劑盒;DNA凝膠回收試劑盒(DNA Gel Extraction Kit)均購自TIANGEN BIOTECH公司。瓊脂糖、溴化乙錠(EB)均購自AMRESCO公司。

在大腸桿菌與乳酸菌中都能表達的穿梭載體pMG36e是由本實驗室保存。紅霉素為Sigma公司產品;其他試劑均為國產分析純。

3)儀器。SANYO MC0165型CO2培養箱;k5062184電轉化儀;HYBAID HBSP05220型PCR儀;DYY-8B型穩壓流電泳儀;KZL-1型可見紫外檢測儀;EPPENDORF MINISPIN個人微型高速離心機;HH-2型電熱恒溫水浴鍋。

1.2 含有TGEV的S蛋白的抗原片段的重組質粒的制備

根據豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV)S蛋白的抗原決定簇AD片段的基因序列,利用Primer5.0軟件設計一對PCR引物S1、S2,前后分別添加了I和I兩個酶切位點。PCR用引物均是PAGE級,由TaKaRa寶生物工程(大連)公司合成。

1)質粒pMD18T-S-AD的制備。

①提取RNA:將豬傳染性胃腸炎病毒以1MOI的劑量接種長滿單層的IBRS2細胞,待90%的細胞出現病變后,收集病變的細胞。用GIBCO公司的Trizol試劑按試劑使用說明操作提取總RNA。所有離心管和槍頭都用DEPC水處理過,保證確實沒有RNA酶。

②反轉錄和PCR擴增:擴增片段全長共733 bp,位置位于S蛋白的1 102~1 812 bp,反應條件:94℃ 5 min,94℃ 90 s,65℃ 45 s,72℃45 s,共進行30個反應循環,72℃延伸 10 min,4℃保存。反應結束后電泳(1%瓊脂糖凝膠)。電泳大小正確的PCR產物,按DNA回收試劑盒說明書操作回收PCR產物。

③連接和轉化:將回收的PCR產物連接到T載體將連接產物10 μL加入至100 μL JM109感受態細胞中,冰中放置30 min。42℃水浴90 s后,再在冰中放置5 min。加入700 μL無抗性LB培養基,37℃ 220 r/min振蕩培養 60 min。3 000 r/min離心5 min,留100 μL上清混勻后涂布于LB瓊脂平板上(紅霉素抗性100 μg/mL),37℃培養過夜。

④質粒的獲得:小量提取重組質粒DNA,電泳鑒定,剩余置-20℃保存。

a.酶切鑒定:分別用雙酶切和單酶切鑒定質粒(雙酶切37℃ 4 h、單酶切37℃ 2 h)

反應結束后,電泳鑒定,對鑒定為陽性的質粒進行PCR鑒定。

b.PCR鑒定:在合成的S-AD片段兩端設計鑒定引物,以重組質粒為模板,進行PCR擴增,合成片段長度約710 bp,反應體系如下:

J1:5'ACTCTTGAAATTTCATGTTATAC 3'

J2:5'TTTTATAACAGCTGTGGCATCTA 3'

反應條件:94℃ 5 min,94℃ 90 s,50℃ 45 s,72℃ 45 s,共設30個反應循環,72℃延伸10 min,4℃保存。反應結束后電泳。

⑤測序:將鑒定正確的質粒在Takara公司測序。

2)重組質粒pMG36e-S-AD的制備。

①酶切。37℃雙酶切4 h后電泳,按DNA回收試劑盒說明書操作回收目的基因片段S-AD片段和載體pMG36e。

②連接與轉化。

將純化回收的S-AD和pMG36e進行連接,冰上操作,16℃過夜。反應體系如下:

③重組質粒的鑒定。

a.重組質粒DNA的小量提取

b.酶切鑒定:(雙酶切37℃ 4 h、單酶切37℃2 h)

反應結束后電泳,對酶切鑒定陽性的質粒進行PCR鑒定。

c.PCR鑒定:以酶切鑒定陽性的質粒為模板,以J1、J2為引物,進行PCR擴增,合成片段長度約710 bp,反應體系與條件同上。

d.重組質粒pMG36e-S-AD DNA純化

(1)將3 mL粗制重組質粒移至30 mL潔凈的離心管中,冰浴后加預冷的5 mol/L的LiCl 3 mL,顛倒混勻,12 000 r/min 4℃離心10 min。吸取上清至新的30 mL離心管中,加等體積的異丙醇,顛倒混勻,12 000 r/min室溫離心10 min。

(2)小心除去上清,倒置,用70%乙醇清洗管壁和沉淀,小心除去乙醇,保持沉淀的濕潤,用500 μL TE(pH8.0,含RnaseA)溶解沉淀,轉移至1.5 mL離心管中,室溫靜置30 min。

(3)酚氯仿和氯仿各抽提1次,1 mL滅菌水溶解沉淀,加500 μL PEG-MgCl2溶液,室溫靜置10 min后最大速度室溫離心20 min。

(4)用500 μL 70%乙醇重懸沉淀,最大速離心5 min,吸去上清,重復洗滌1次后,靜置10~20 min,用0.5 mL TE(pH8.0)溶解沉淀,分裝后-20℃保存備用。

1.3 乳酸菌的制備

1)復蘇培養。將凍干的乳酸菌用MRS培養基溶解后,在MRS瓊脂平板上劃線,37℃培養24 h,挑單菌落接種4 mL MRS培養基37℃靜置厭氧培養24 h復蘇。

2)乳酸菌感受態的制備。

①將過夜復蘇的乳酸菌按2%的比例接種20 mL MRS培養基中,37℃厭氧培養4 h,當細胞生長到OD600值為0.5~0.8時,8 000 r/min 0℃ 離心10 min收集沉淀。

3)重組質粒pMG36e-S-AD的乳酸菌電穿孔轉化實驗。

①取一管新制備的乳酸菌感受態冰浴5 min,加入重組質粒5~10 μL,混勻,冰浴5 min。將混合物用預冷的槍頭移至預冷的內徑0.2 cm的電穿孔杯中,設置電擊參數,進行電轉化。

②將電擊混合物移入一預冷的1.5 mL離心管中,冰浴5 min后加入0.5 mL MRS培養基,37℃靜置3~4 h。

③取50 μL培養物涂布含紅霉素的MRS固體培養皿,37℃靜置培養48 h。

4)乳酸菌重組質粒的鑒定。

①乳酸菌重組質粒的提取。

a.取10mL過液培養的乳酸菌4℃ 8 000 r/min離心 10 min,用0.1 mol/L Tris溶液(pH7.5)洗滌沉淀,加入200 μL 25%蔗糖溶菌液(含30 mg/mL溶菌酶),37℃水浴15 min。

b.加入3%的SDS和0.2 mol/L的NaOH的混合液0.4 mL,立即混勻在室溫下靜置7 min,加入預冷的醋酸鈉(pH4.8)300 μL,立即顛倒混勻,4℃5 000 r/min離心15 min。棄上清,用320 μL的去離子水溶解沉淀,加入7.5 mol/L的醋酸銨(含0.5 mg/mL的EB)200 μL和酚氯仿350 μL,立即混勻,4℃ 8 000 r/min離心5 min。

孩子早期發熱并不是因為治療不及時轉為肺炎的,發病初期就是肺炎,發熱只是肺炎早期的一種表現。但是支原體肺炎早期癥狀和體征并不典型,即使發病初期到醫院診治,醫生通過聽診、血生化檢查、X光片也不會早期發現,因此支原體肺炎又叫“原發性非典型肺炎”(此非典型肺炎不是非典時期SARS病毒引起的肺炎)。

c.將上清移至1.5 mL離心管中,加入冰無水乙醇1 mL,混勻,室溫靜置30 min,4℃ 8 000 r/min離心15 min。移去上清,用70%乙醇洗沉淀,并溶于40 μL(含RNase 0.1 mg/mL)的水中,-20℃保存備用。

③PCR鑒定:用J1和J2鑒別引物鑒定。

④SDS-PAGE鑒定。

a.將鑒定為陽性的重組菌接入5 mL MRS液體培養基(含紅霉素)中,37℃靜置過夜。取2 mL接入100 mL含紅霉素的MRS液體培養基(添加40 mmol/L DL-蘇氨酸)中,37℃靜置培養至OD600為0.6~0.8。每隔1 h取1次菌液,取至7 h。同時同法誘導含空載體pMG36e的乳酸菌作對照。

b.將7次收獲的誘導菌液的OD600均調至0.6~0.8,取1.4 mL菌液,12 000 r/min離心5 min,棄上清。沉淀中加入1×SDS上樣緩沖液50 μL(含1/10的DTT),沸水煮10 min,25℃ 12 000 r/min離心10 min,進行SDS-PAGE凝膠電泳。

2 結 果

電泳結果見圖1和圖2。圖1所示S-AD雙酶切片段為710 bp,圖2所示pMG36e雙酶切片段為3 600 bp。

圖1 I和I雙酶切質粒P1

圖2 I和I雙酶切載體質粒pMG36e

2.2 雙酶切鑒定重組質粒pMG36e-S-AD

圖3 I和I雙酶切鑒定重組質粒pMG36e-P1

2.3 PCR鑒定pMG36e-S-AD

以鑒定引物J1、J2擴增雙酶切陽性的質粒,都能擴增到約710 bp左右大小的片段,如圖4。

圖4 PCR鑒定重組質粒pMG36e-P1

2.4 雙酶切鑒定乳酸菌中的重組質粒pMG36e-S-AD

圖5 雙酶切鑒定乳酸菌中重組質粒pMG36e-P1

2.5 PCR鑒定乳酸菌中的重組質粒pMG36e-S-AD(圖6)

圖6 PCR鑒定乳酸菌中的重組質粒pMG36e-P1

2.6 SDS-PAGE結果

取誘導了7 h的含有重組質粒的乳酸菌及誘導的含空載體pMG36e的乳酸菌菌液為空白對照進行蛋白質表達分析,從圖7可見重組基因得到了表達,蛋白質的相對分子量約為34 ku,與預期一致,而空載體則未見表達。

圖7 SDS-PAGE電泳檢測重組的rS-AD基因表達產物

3 討 論

3.1 表達的靶基因的選擇

疫苗具有較好免疫效果的關鍵是選擇正確的重組表達的靶基因,原則上是選擇編碼主要免疫蛋白的基因序列。TGEV的纖突糖蛋白(S蛋白)攜帶主要的B淋巴細胞抗原決定簇,是惟一能夠誘導宿主產生中和抗體和提供免疫保護的結構蛋白,并在決定宿主細胞親嗜性、致病性、細胞融合、血凝作用等方面起重要作用,是其主要的免疫源。纖突糖蛋白的A和D位點高度保守,且都在誘導中和抗體過程中起主要作用。因此用S基因的AD片段就可以介導中和抗體的產生。

3.2 表達載體的選擇

乳酸菌作為人和動物機體胃腸道中的正常菌群,在維持機體正常的生理功能和疾病預防過程中起著不可替代的作用,使它成為口服疫苗最具潛力的候選者[6-7]。它能夠調節機體胃腸道內的正常菌群,在腸道上皮細胞上的黏附和定植能力能抵抗致病菌的定植和繁殖;它對一些腐敗菌、低溫細菌和腐敗產物如內毒素的產生有較好的抑制作用,可用于防治腹瀉、下痢、腸炎、便秘和由于腸道功能紊亂引起的多種疾病以及皮膚炎癥等;它可以降低血清膽固醇、制造營養物質、刺激組織發育,從而對機體的生理功能、營養狀況、藥物效應、免疫反應等有非特異性和特異性的免疫增強。它一方面由于能定植在腸道,既具有靶向的作用,又等同于天然自動免疫;另一方面能明顯激活腹膜巨噬細胞的吞噬作用,刺激巨噬細胞產生干擾素,促進細胞分裂、產生抗體及細胞免疫等增強機體的反應,提高機體的抗病能力。

豬傳染性胃腸炎是一種腸道傳染病,病毒感染具有明顯的腸嗜性,通過口服疫苗免疫,激發腸道黏膜免疫反應是預防該病較為理想的途徑。近年來,隨著免疫學和分子生物學的日漸發展,基因工程實驗技術的日漸應用,TGEV疫苗的研究也進入了迅猛發展期,并在很多領域內取得不俗的成果,為其在實際生活中的應用做好了準備,提供了更堅實可靠的依據。

[1] ENJUANESL,SANCHEZC,MENDEZA,etal.Tropism and immunoprotection in transmissible gastroenteritis coronaviruses[J]. Dev Biol Stand,1995,84:145-152.

[2]ENJUANES L,SMERDOU C,CASTILLA J,et al.Development of protection against coronavirus induced diseases[J].A Review Adv Exp Med Biol,1995,380:197-211.

[3] LAUDE H,RASSCHAERT D,DELMAS B,etal.Molecular biology of transmissible gastroenteritis virus[J].Vet Microbiol,1990,23:147-154.

[4] 陳煥春.豬傳染性胃腸炎[J].甘孟侯,楊漢春.中國豬病學[M].北京:中國農業出版社,2005:183-185.

[5] WALMSLEY A M,AMTZEN C J.Plants for delivery of edible caccines[J].Curr Opin Biotechnol,2000,11(2):126-129.

[6] BERMUDEZ H L G,LANGELLA P,CORTES P N G,et al. Intranasalimmunization with recombinantsecreting murine interleukin-12 enhances antigen-specific Th1 cytokine production[J].Infect Immun,2003,71(4):1887-1896.

[7]史達,宋巖,李一經.乳酸乳球菌作為黏膜免疫活載體疫苗傳遞抗原的研究進展[J].微生物學報,2006,46(4):680-683.

2014-12-15

吉林省科技發展計劃項目(20140101030JC)

*通訊作者

黃海楠,女,1981年生,博士,副研究員。

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