山楂葉不同采收期多種有效成分含量的比較

王兆華，張大軍

(吉林省中醫藥科學院，長春　130012)

?

山楂葉不同采收期多種有效成分含量的比較

王兆華，張大軍

(吉林省中醫藥科學院，長春130012)

摘要：目的探索山楂葉最佳采收期。方法HPLC條件：金絲桃苷檢測采用Shim-pack C18(150 mm×4.6 mm，5 μm)；乙腈-甲醇-四氫呋喃-5 mL·L-1醋酸溶液(1∶1∶19.4∶78.6)為流動相，檢測波長為363 nm。牡荊素鼠李糖苷檢測采用Diamonsil C18柱(250 mm×4.6 mm，5 μm)；四氫呋喃-甲醇-乙腈-乙酸-水(38∶3∶3∶4∶152)為流動相；檢測波長為330 nm?？傸S酮檢測利用可見分光光度法，以蘆丁對照品為對照，NaNO2-Al(NO3)3-NaOH體系作顯色劑，在500 nm波長處測定總黃酮含量。結果金絲桃苷進樣量在0.080 5～0.402 4 μg范圍內，質量濃度與峰面積線性關系良好(r=0.999 3)；牡荊素鼠李糖苷進樣量在0.418～2.090 μg范圍內，質量濃度與峰面積線性關系良好(r=0.999 1)。結論5月采收的山楂葉中牡荊素鼠李糖苷含量最高；8～11月采收的山楂葉中金絲桃苷及總黃酮的含量較高。

關鍵詞：金絲桃苷；牡荊素鼠李糖苷；總黃酮；山楂葉；采收期；HPLC；分光光度法；含量測定

山楂葉[1]為rataeguspinnatifidaBge.var.majorN.E.Br.CrataeguspinnatifidaBge.或Crataegus pinnatifida Bge.的干燥葉，是衛生部公布的既是食品又是藥品的中藥[2]，是健脾開胃、消食化滯、活血化瘀的良藥。山楂葉是常用中藥，具有活血化瘀、理氣通脈、化濁降脂的功效[3]?，F代藥理研究表明，山楂葉黃酮對心臟、肝臟均具有保護作用；對腦缺血亦具有保護作用，此外，還具有降脂、抗炎、活血化瘀等多種藥理活性[4]，臨床上對心絞痛等疾病具有良好療效[5]。山楂葉的主要活性成分為黃酮類成分，其代表成分有金絲桃苷、牡荊素葡萄糖苷、牡荊素鼠李糖苷、牡荊素等多種成分[6]。在實驗研究中發現，山楂葉總黃酮提取物中各種有效成分變化較大，考慮到可能是不同采收季節所致，故對不同采收季節山楂葉的多種成分進行了測定，以探求山楂葉的最佳采收期。

1儀器與試藥

1.1儀器UV-2800紫外-可見分光光度計(上海精密科學儀器有限公司)；LC-10 AT高效液相色譜儀，SPD-10A紫外檢測器(日本島津公司)；KQ-250型超聲波處理器(天津奧特賽恩斯儀器公司)；AE163電子天平(瑞士梅特勒公司)。

1.2試藥金絲桃苷對照品(批號111521-200303，供含量測定用)，牡荊素鼠李糖苷對照品(批號111668-200602，供含量測定用)，蘆丁對照品(批號100080-200707,供含量測定用)，均購自中國食品藥品檢定研究院；山楂葉樣品5，6，7，8，9，10和11月采自同一生長區，曬干，粉碎成細粉。甲醇、乙腈為色譜純；四氫呋喃、乙酸、硝酸鈉、硝酸鋁和氫氧化鈉等均為分析純。

2方法與結果

2.1總黃酮含量測定

2.1.1對照品溶液的制備精密稱取蘆丁對照品19.90 mg，置于100 mL量瓶中，加乙醇溶液溶解并定容至刻度，搖勻，即得，質量濃度為0.199 mg·mL-1。2.1.2標準曲線繪制精密吸取蘆丁對照品溶液1，2，3，4和5 mL，分別置于25 mL量瓶中，依次加水至6 mL，再分別加入質量濃度為50 g·L-1的亞硝酸鈉溶液1 mL，混勻，放置6 min，各加質量濃度為100 g·L-1的硝酸鋁溶液1 mL，混勻，放置6 min，分別加氫氧化鈉試液10 mL，最后加水定容至刻度，搖勻，放置15 min，以相應的試劑為空白，在500 nm波長處測定吸光度[1,7]。以吸光度為縱坐標、質量濃度為橫坐標繪制標準曲線，得回歸方程：Y=0.477 4X-0.018 4，r=0.999 3。

2.1.3供試品溶液的制備與測定取山楂葉細粉約1 g，精密稱定，置于索氏提取器中，加三氯甲烷適量，放置30 min后，加熱回流(約3 h)提取至回流液近無色，棄去三氯甲烷液，藥渣揮去溶劑，再置于索氏提取器中，加甲醇適量，繼續提取(約4 h)至近無色，將提取液蒸干，殘渣加稀乙醇溶解，轉移至50 mL量瓶中，稀釋至刻度，搖勻，作為供試品儲備液。取供試品儲備液，濾過，精密量取續濾液5 mL，置于25 mL量瓶中，加水稀釋至刻度，搖勻。精密量取此液2 mL，置于25 mL量瓶中，按照標準曲線制備項下的方法，自加水至6 mL起依法操作，測定吸光度，計算樣品中總黃酮含量，不同采收時間山楂葉中總黃酮含量測定結果見表1。由表1可知，總黃酮在5月時含量較低，隨著生長時間的增加，含量逐漸升高，在8～11月趨于平穩，11月又有下降的趨勢。

2.2金絲桃苷含量測定

2.2.1色譜條件色譜柱：Shim-pack C18(150 mm×4.6 mm，5 μm；流動相：乙腈-甲醇-四氫呋喃-5 mL·L-1醋酸溶液(1∶1∶19.4∶78.6)；流速：1 mL·min-1；檢測波長：363 nm；柱溫：室溫；進樣量：10 μL[3]。

2.2.2對照品溶液的制備精密稱定金絲桃苷對照品11.25 mg，置于50 mL量瓶中，加稀乙醇溶解并稀釋至刻度，搖勻。精密量取此液5.0 mL，置于50 mL量瓶中，加稀乙醇稀釋至刻度，搖勻，即得，質量濃度為22.5 μg·mL-1。

2.2.3供試品溶液的制備與測定分別精密吸取2.1.3項下山楂葉供試品溶液及上述金絲桃苷對照品溶液各10 μL，按照2.2.1項下的色譜條件進行測定，計算含量，不同采收時間山楂葉中金絲桃苷含量測定結果見表1。金絲桃苷在5月時含量較低，隨著生長時間的增加，含量逐漸升高，在8～11月趨于平穩，11月又有下降的趨勢。

2.2.4線性關系考察精密吸取2.2.2項下對照品溶液(質量濃度為22.5 μg·mL-1)4，8，12，16和20 μL，分別注入高效液相色譜儀，測定峰面積積分值，以質量濃度(C)為縱坐標，以峰面積積分值(A)為橫坐標，繪制標準曲線，得回歸方程：Y=1 105 397X-6 593，r=0.999 3，結果表明，金絲桃苷進樣量在0.080 5～0.402 4 μg范圍內，質量濃度與峰面積呈良好的線性關系。2.2.5精密度實驗準確吸取質量濃度為22.5 μg·mL-1的金絲桃苷對照品溶液10 μL，按照2.2.1項下色譜條件連續進樣6次，結果金絲桃苷峰面積的RSD為0.85%，表明儀器精密度良好。

2.2.6穩定性實驗精密吸取供試品溶液10 μL，每隔3 h進樣1次，連續考察24 h，結果金絲桃苷峰面積的RSD為0.96%，表明金絲桃苷在24 h內穩定。

2.3牡荊素鼠李糖苷含量測定

2.3.1色譜條件色譜柱：Diamonsil C18柱(250 mm×4.6 mm，5 μm)；流動相：四氫呋喃-甲醇-乙腈-乙酸-水(38∶3∶3∶4∶152)；流速：1 mL·min-1；檢測波長：330 nm；柱溫：室溫；進樣量：10 μL[8]。

2.3.2對照品溶液的制備精密稱取牡荊素鼠李糖苷對照品7.78 mg，置于50 mL量瓶中，加體積分數為60%的乙醇溶解并稀釋至刻度，搖勻，即得，質量濃度為155.6 μg·mL-1。

2.3.3供試品溶液的制備與測定分別精密吸取2.1.3項下山楂葉供試品溶液及上述牡荊素鼠李糖苷對照品溶液各10 μL，按照2.3.1項下的色譜條件進行測定，計算牡荊素鼠李糖苷含量。不同采收時間山楂葉中牡荊素鼠李糖苷含量測定結果見表1。牡荊素鼠李糖苷在5月時含量最高，隨著生長時間的增加，含量逐漸下降，在8～11月趨于平穩，11月有下降的趨勢。液相色譜圖見圖1。

表1不同采收時間山楂葉中各成分含量測定結果

Tab.1 Results of the active ingredient concentrations of Hawthorn leaves for samples of different harvests (n=3)

采收時間/月份總黃酮含量/%RSD/%金絲桃苷含量/%RSD/%牡荊素鼠李糖苷含量/%RSD/%55.140.030.0450.0031.0250.01465.960.040.0580.0010.8120.00976.050.040.0910.0020.8140.009810.250.130.1060.0020.7510.008910.340.020.1110.0020.5620.0041010.480.060.1150.0030.5420.0061110.080.110.1030.0030.5510.008

圖1HPLC圖

A.金絲桃苷對照品；B.山楂葉1；C.牡荊素鼠李糖苷對照品；D.山楂葉2；1.金絲桃苷；2.牡荊素鼠李糖苷

Fig.1 HPLC chromatogram

A.hyperin；B.hawthorn leaves 1；C.vitexin-2-O-rhamnoside；D.hawthorn leaves 2；1.hyperin；2.Cvitexin rat lee glycoside

2.3.4線性關系考察精密吸取2.3.2項下對照品溶液(155.6 μg·mL-1)4，8，12，16和20 μL，分別注入高效液相色譜儀，測定峰面積，以質量濃度(C)為縱坐標，以峰面積積分值(A)為橫坐標，繪制標準曲線，得回歸方程：Y=1 253 583X+30 884，r=0.999 1，表明牡荊素鼠李糖苷進樣量在0.418～2.090 μg范圍內，質量濃度與峰面積積分值線性關系良好。

2.3.5精密度實驗精確吸取牡荊素鼠李糖苷對照品溶液(155.6 μg·mL-1)10 μL，按照2.3.1項下色譜條件重復進樣6次，結果牡荊素鼠李糖苷的峰面積積分值的RSD為0.79%，表明精密度良好。2.3.6穩定性實驗精確吸取供試品溶液10 μL，每隔3 h 進樣1次，連續考察24 h，結果牡荊素鼠李糖苷面積的RSD為0.91%，表明牡荊素鼠李糖苷在24 h內穩定。

3討論

山楂葉的主要活性成分為黃酮類化合物，代表成分有金絲桃苷、牡荊素鼠李糖苷。山楂葉及山楂葉提取物均收載于2010年版《中國藥典》一部，山楂葉含量測定項下測定總黃酮及金絲桃苷含量；山楂葉提取物含量測量項下測定總黃酮及牡荊素鼠李糖苷含量，筆者參考《中國藥典》，分別對不同采收時間的山楂葉中3種成分進行了測定。

《中國藥典》規定山楂葉的采收季節為夏、秋兩季，對不同時間采收的山楂葉中總黃酮、金絲桃苷及牡荊素鼠李糖苷含量的測定，實驗結果發現：5月采收的山楂葉中牡荊素鼠李糖苷的含量最高；8～11月采集的山楂葉中金絲桃苷及總黃酮的含量較高。山楂葉牡荊素鼠李糖苷的含量較高時宜在5月采收；山楂葉金絲桃苷的含量及總黃酮較高時宜在8～11月采收，實驗結果與文獻報道稍有差別[9-10]，本實驗提示，依據成分及臨床需要適時采收山楂葉較適宜。

參考文獻：

[1]國家藥典委員會.中國藥典2010版[S].一部. 北京：中國醫藥科技出版社，2010：29.

[2]衛生部.關于進一步規范保健食品原料管理的通知[Z].衛法監發[2002]51號.

[3]國家藥典委員會.中國藥典2010版[S]. 一部. 北京：中國醫藥科技出版社，2010：30.

[4]于棟華，包順茹，于純淼，等.山楂葉總黃酮藥理作用研究進展[J].遼寧中醫藥大學學報，2013，15(3)：174-177.

[5]李慧，魯衛星.山楂葉提取物在心血管疾病中的研究進展[J].世界中西醫結合雜志，2014，9(8)：881-884.

[6]王領弟，李艷榮，潘海峰，等.山楂葉的研究近況[J].承德醫學院學報，2011，28(3)：313-315.

[7]汪遠江，汪洪武，都俊輝，等.分光光度法測定玉蘭總黃酮含量[J].西北藥學雜志，2008，26(6)：356-358.

[8]國家藥典委員會. 中國藥典2010版[S]. 一部. 北京：中國醫藥科技出版社，2010：372.

[9]王肖，杜義龍，趙勝男，等.承德產山楂葉中總黃酮和5種黃酮類成分含量的動態分析 [J]. 中國實驗方劑學雜志，2013，19(17)：171-175.

[10]高光躍，馮毓秀.山楂果實和葉中成分積累動態的研究[J].西北藥學雜志，1993，8(4)：157-159.

基金項目：國家重大新藥創制項目(編號：2012X09103201-25)；國家科技重大專項項目(編號：2013ZX09103002-022)；吉林省科技發展計劃專項項目(編號：20140311014YY)

doi:10.3969/j.issn.1004-2407.2016.04.007

中圖分類號：R927.2

文獻標志碼：A

文章編號：1004-2407(2016)04-0350-04

(收稿日期：2015-09-23)

Comparison of the active ingredient contents in hawthorn leaves samples of different harvests

WANG Zhaohua，ZHANG Dajun

(Academy of Chinese Medical Sciences of Jilin Province，Changchun 130012，China)

Abstract:ObjectiveTo explore the suitable time to harvest hawthorn leaves.MethodsHPLC was used and the conditions were as follows:Shim-pack C18(150 mm×4.6 mm，5 μm) column with the mobile phase consisted of acetonitrile-methanol-tetrahydrofuran -5 mL·L-1acetic acid(1∶1∶19.4∶78.6) in the separation of hyperin，and the detection wavelength was set at 363 nm. The separation of vitexin-2-O-rhamnoside was performed on the Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm，5 μm) column with the mobile phase consisted of tetrahydrofuran，acetonitrile， methanol， acetic acid and water(in a ratio of 38∶3∶3∶4∶152). The detection wavelength was set at 330 nm . The content of total flavone in hawthorn leaves was determined by spectrophotometry.To compare with the rutin reference substance，NaNO2-Al(NO3)3-NaOH was used as the color development reagent. The detection wavelength was set at 500 nm. ResultsThe linear relationship between area and amount was noted for hyperin with the amount of 0.080 5-0.402 4 μg(r=0.999 3)； The linear relationship between area and amount was noted for vitexin-2-O-rhamnoside with the amount of 0.418-2.090 μg(r=0.999 1).ConclusionThe content of vitexin-2-O-rhamnoside in hawthorn leaves which were harvested in May was the highest；The contents of hyperin and total flavone in hawthorn leaves which were harvested from August to November were relatively high. Key words: hyperin；vitexin-2-O-rhamnoside; total flavone；hawthorn leaves；harvest； HPLC； spectrophotometry；content determination