?

轉染Elf5基因的人卵巢癌干細胞增殖、侵襲能力及凋亡變化

2016-08-31 08:34仇影影謝肖磊邱玲琳閆洪超
山東醫藥 2016年19期
關鍵詞:卵巢癌空白對照質粒

仇影影,謝肖磊,邱玲琳,閆洪超

(1徐州醫學院研究生學院,江蘇徐州221002;2徐州醫學院附屬醫院)

?

·基礎研究·

轉染Elf5基因的人卵巢癌干細胞增殖、侵襲能力及凋亡變化

仇影影1,謝肖磊1,邱玲琳1,閆洪超2

(1徐州醫學院研究生學院,江蘇徐州221002;2徐州醫學院附屬醫院)

目的觀察轉染Elf5基因的人卵巢癌干細胞增殖、侵襲能力及凋亡變化。方法將目的基因Elf5+EGFP克隆到載體pcDNA3.1中,構建重組質粒pcDNA3.1-Elf5+EGFP,轉入感受態細胞,挑選陽性克隆菌落,大量抽提質粒。培養人卵巢癌干細胞并分為重組質粒組、空質粒組、空白對照組。重組質粒組轉染pcDNA3.1-Elf5+EGFP真核表達載體,空質粒組轉染pcDNA3.1-EGFP空載質粒,空白對照組不進行轉染。采用Western blotting法檢測Elf5蛋白。分別于轉染后1、2、3、4、5、6 d采用MTT法檢測細胞增殖能力;轉染24 h后采用侵襲小室檢測細胞侵襲能力并計算穿膜細胞數;轉染24 h后流式細胞術檢測不同周期細胞及凋亡細胞。結果成功構建了pcDNA3.1-Elf5+EGFP真核細胞表達載體,重組質粒組細胞中Elf5蛋白穩定表達。轉染后1、2、3、4、5、6 d重組質粒組細胞增殖能力低于空白對照組和空質粒組(P均<0.05)。重組質粒組穿膜細胞數少于空質粒組、空白對照組(P均<0.05)。重組質粒組G0/G1期細胞百分比高于空質粒組、空白對照組(P均<0.05)。重組質粒組細胞凋亡率高于空質粒組、空白對照組(P均<0.05)。結論轉染ELF5基因的人卵巢癌干細胞增殖、侵襲能力受到抑制,細胞凋亡增多。

Elf5基因;卵巢癌;腫瘤干細胞;細胞增殖;細胞凋亡

在女性生殖系統惡性腫瘤中,卵巢癌惡性程度最高,病死率居于首位[1]。卵巢癌之所以易轉移和復發,根本原因在于腫瘤干細胞[2~4]。我們前期研究篩選出具有腫瘤干細胞特征的卵巢癌干細胞(以人HO8910細胞系為實驗對象),經鑒定發現篩選出的細胞具有較強的分化、自我更新能力,并有多藥耐藥性較高的干細胞相關基因表達水平和體內成瘤特性[5]。Elf5是Ets基因家族成員之一,在腫瘤的發生、發展過程中發揮重要作用[6,7]。Elf5與卵巢癌干細胞的關系目前尚未見報道,為此,2015年1~10月,我們觀察了轉染Elf5基因的人卵巢癌干細胞增殖、侵襲能力及凋亡的變化,現報告如下。

1 材料與方法

1.1主要實驗材料DNA內切酶、DNA連接酶及DNA marker購自Fermentas公司;DNA凝膠回收試劑盒及瓊脂糖購自天根生化科技有限公司;中量抽提試劑盒購自杭州愛思進生物技術有限公司;無乙水醇、異丙醇、丙三醇及無水氯化鈣購自北京國藥集團化學試劑有限公司;人卵巢癌干細胞由本課題組保存;四甲基偶氮唑藍(MTT)購自美國Sigma公司; Liptapfector脂質體轉染試劑購自碧云天生物技術有限公司;Elf5一抗及Transwell 小室購自美國Chemicon公司;大腸桿菌DH5α為本實驗室保存。

1.2pcDNA3.1- Elf5+EGFP載體的構建及鑒定目的基因上下游引物分別加BamHⅠ、EcoRⅠ及保護堿基,由上海吉瑪制藥技術有限公司合成引物,將oligo溶解成50 μmol/L,進行兩輪PCR反應,利用Agarose電泳并切膠回收Elf5+EGFP基因片段。用BamHⅠ和EcoRⅠ分別對Elf5+EGFP基因片段和載體pcDNA3.1進行酶切,用DNA凝膠回收試劑盒回收。用T4DNA ligase連接雙酶切,得到Elf5+EGFP基因片段和線性化載體。氯化鈣法制備感受態細胞,將連接產物轉化感受態細胞,從平板上鑒定并挑選陽性克隆菌落,置于含LB培養基的試管中培養。抽提菌液質粒進行雙酶切鑒定并測序。測序結果與目的基因序列比對無誤后,將菌液接種于LB培養基,進行質粒抽提,獲得足夠的重組質粒。

1.3細胞分組與Elf5基因轉染人卵巢癌干細胞用含EGF、bFGF、Noggi、LIF的培養基培養,分為重組質粒組、空質粒組、空白對照組。重組質粒組轉染pcDNA3.1- Elf5+EGFP真核表達載體,空質粒組轉染pcDNA3.1-EGFP空載質粒,空白對照組不進行轉染。轉染結束后,用G418培養基對已轉染細胞進行篩選并傳代培養。Western blotting法檢測Elf5蛋白。

1.4細胞增殖能力觀察將三組細胞按1.5×104/孔分別接種于96孔培養板,分別于轉染后1、2、3、4、5、6 d后加入MTT工作液,繼續培養,最后加入二甲基亞砜終止反應。將96孔培養板置于BOIBASE2000全自動酶標儀上,在490 nm波長處測定吸光度值(A值),代表細胞增殖能力。

1.5細胞侵襲能力觀察轉染24 h后采用侵襲小室檢測卵巢癌干細胞的體外侵襲能力。分離并提取各組細胞懸液,以105/孔將細胞接種于侵襲膜上并培養。培養12 h后去除膜上基質膠及殘留細胞,固定并進行染色,倒置顯微鏡下觀察并計算穿膜細胞數,反映細胞侵襲能力。

1.6不同周期細胞檢測轉染24 h后胰酶消化、洗滌并離心細胞,固定細胞,加100 μL PBS并吹打細胞,制成單細胞懸液,調整細胞濃度,用流式細胞儀分析不同周期細胞分布情況。

1.7凋亡細胞檢測轉染24 h后胰酶消化、洗滌并離心細胞,固定細胞,加100 μL PBS并吹打細胞,制成單細胞懸液,按annexin V-PI細胞凋亡雙染試劑盒說明書進行染色,采用流式細胞術測算細胞凋亡率。

2 結果

2.1pcDNA3.1- Elf5+EGFP載體構建及轉染情況酶切結果顯示,在1 518 bp位置出現明顯條帶,與預計擴增片段大小相符,對照組未擴增出條帶;DNA序列分析結果顯示,目的基因序列與GenBank中基因序列完全相同,目的基因插入方向正確,證實重組質粒pcDNA3.1- Elf5+EGFP構建成功。重組質粒組轉染質粒后,細胞中Elf5蛋白表達上調,而空質粒組及空白對照組未檢測到Elf5蛋白表達。

2.2各組細胞增殖能力比較轉染后1、2、3、4、5、6 d重組質粒組A值低于空白對照組和空質粒組(P均<0.05)。見表1。

表1 各組轉染后不同時間A值比較

注:與重組質粒組相比,*P<0.05。

2.3各組細胞侵襲能力比較重組質粒組、空質粒組、空白對照組穿膜細胞數分別為(92.1±2.7)、(149.6±4.6)、(147.4±5.3)個,重組質粒組與空質粒組、空白對照組相比,P均<0.05。

2.4各組不同周期細胞分布比較重組質粒組G0/G1期細胞百分比高于空質粒組、空白對照組(P均<0.05)。見表2。

表2 各組不同周期細胞分布比較±s)

注:與重組質粒組相比,*P<0.05。

2.5各組細胞凋亡率比較重組質粒組、空質粒組、空白對照組細胞凋亡率分別為31.4%±1.9%、9.1%±2.2%、8.7%±1.5%,重組質粒組與空質粒組、空白對照組相比,P均<0.05。

3 討論

目前研究[8,9]表明,卵巢癌發生侵襲、轉移及復發與卵巢癌干細胞的無限增殖、自我更新和多向分化能力有密切關系。Ets家族成員在正常細胞的增殖、生長、凋亡過程中發揮重要作用[10]。Elf5屬于其成員之一,位于人類染色體11q13~15,此區域與其他脆性位點一樣,易出現雜合性缺失。Elf5的完整結構域包含參與蛋白間相互作用的結構域、與蘇氨酸/半胱氨酸核心序列結合的基序及兩個共性結構域[6]。Elf5基因在胎盤滋養細胞、上皮外分泌腺和人類乳腺等器官中均有表達,但表達程度各不相同[11~15]。正常情況下,Elf5不僅可調節腺泡細胞的產生,還可影響胚胎發育[16]。有學者[17]研究表明,Elf5基因的雜合性缺失可導致乳腺成體干細胞增加,促進乳腺癌發病。近年來國外眾多學者[18~20]也認為Elf5是乳腺癌發生發展過程中的潛在抑癌基因,有望成為乳腺癌新的治療靶點。關于Elf5基因對人卵巢癌干細胞生物學行為的影響,目前報道較少。

本研究首先成功構建了重組質粒pcDNA3.1- Elf5+EGFP,并將其成功轉染人卵巢癌干細胞,然后從多方面研究了Elf5在體外的一系列生物學作用。我們發現,重組質粒組細胞增殖能力低于空質粒組及空白對照組,表明Elf5基因對卵巢癌干細胞增殖具有明顯抑制及延緩作用。重組質粒組G0/G1期細胞百分比高于空質粒組、空白對照組,提示Elf5基因可抑制G0/G1期進展到S期、G2/M期,進一步推測Elf5基因對卵巢癌干細胞的增殖抑制作用可能與干擾細胞周期有關。侵襲小室實驗結果顯示,重組質粒組的穿膜細胞數少于空質粒組及空白對照組,表明Elf5基因可限制卵巢癌干細胞的侵襲及運動能力。本研究結果還顯示,重組質粒組細胞凋亡率高于其余兩組,提示Elf5基因不僅能抑制卵巢癌干細胞增殖,還可促進其凋亡。但對于Elf5基因通過何種機制影響卵巢癌干細胞的生物學行為,目前尚處于初級研究階段。在以后的研究中,我們還將進一步探索Elf5基因的具體作用機制。

[1] Vargas-Hernández VM,Moreno-Eutimio MA,Acosta-Altamirano G,et al.Management of recurrent epithelial ovarian cancer[J].Gland Surg,2014,3(3):198-202.

[2] Zhang S,Chan M,Balch C,et al.Identification and characterization of cancer stem-like cells from human ovarian carcinomas[J].Biomass Bioenergy,2003,25(6):623-636.

[3] Bapat SA.Human ovarian cancer stem cells[J].Reprod,2010,140(1):33-41.

[4] Djordjevic B,Stojanovic S,Conic I,et al.Current approach to epithelial ovarian cancer based on the concept of cancer stem cells[J].J BUON,2012,17(4):627-636.

[5] Yan HC,Fang LS,Xu J,et al.The identification of the biological characteristics of human ovarian cancer stem cells[J].Eur Rev Med Pharmacol Sci,2014,18(22):3497-3503.

[6] Zhou J,Ng AY,Tymms MJ,et al.A novel transcription factor,ELF5,belongs to the ELF subfamily of ETS genes and maps to human chromosome 11p13-15,a region subject to LOH and rearrangement in human carcinoma cell lines[J].Oncogene,1998,17(21):2719-2732.

[7] Choi Y,Sinha S.Determination of the consensus DNA-binding sequence and a transcriptional activation domain for ESE-2[J].Biochem J,2006,398(3):497-507.

[8] Hu L,McArthur C,Jaffe RB.Ovarian cancer stem-like side-population cells are tumourigenic and chemoresistant[J].Br J Cancer,2010,102(8):1276-1283.

[9] Shah MM,Landen CN.Ovarian cancer stem cells: are they real and why are they important[J].Gynecol Oncol,2014,132(2):483-489.

[10] Lee HJ,Ormandy CJ.Elf5,hormones and cell fate[J].Trends Endocrinol Metab,2012,23(6):292-298.

[11] Lapinskas EJ,Palmer J,Ricardo S,et al.A major site of expression of the ets transcription factor Elf5 is epithelia of exocrine glands[J].Histochem Cell Biol,2004,122(6):521-526.

[12] Myriam H,Ramya U,Paul T,et al.ELF5-enforced transcriptional networks define an epigenetically regulated trophoblast stem cell compartment in the human placenta[J].Hum Mol Genet,2010,19(12):2456-2467.

[13] Lee HJ,David GO,Anita L,et al.Progesterone drives mammary secretory differentiation via RankL-mediated induction of Elf5 in luminal progenitor cells[J].Development,2013,140(7):1397-1401.

[14] Lapinskas EJ,Svobodova S,Davis ID,et al.The Ets Transcription Factor ELF5 Functions as a Tumor Suppressor in the Kidney[J].Twin Res Hum Genet,2011,14(4):316-322.

[15] Pearton DJ,Smith CS,Redgate E,et al.Elf5 counteracts precocious trophoblast differentiation by maintaining Sox2 and 3 and inhibiting Hand1 expression[J].Dev Biol,2014,392(2):344-357.

[16] Lee HJ,Hinshelwood RA,Bouras T,et al.Lineage specific methylation of the elf5 promoter in mammary epithelial cells[J].Stem Cells,2011,29(10):1611-1619.

[17] Rumela C,Wei Y,Rose-Anne R,et al.Elf5 regulates mammary gland stem/progenitor cell fate by influencing notch signaling[J].Stem Cells,2012,30(7):1496-1508.

[18] Rumela C,Julie H,Mario AB,et al.Elf5 inhibits the epithelial-mesenchymal transition in mammary gland development and breast cancer metastasis by transcriptionally repressing Snail2[J].Nat Cell Biol,2012,14(11):1212-1222.

[19] Kalyuga M,Gallegoortega D,Lee HJ,et al.ELF5 suppresses estrogen sensitivity and underpins the acquisition of antiestrogen resistance in luminal breast cancer[J].PLoS Biol,2012,10(12):252-253.

[20] Frend HT,Watson CJ.Elf5 - breast cancer's little helper[J].Breast Cancer Res,2013,15(2):307-307.

閆洪超(E-mail:1015058194@qq.com)

10.3969/j.issn.1002-266X.2016.19.008

R737.31

A

1002-266X(2016)19-0025-03

2015-12-04)

猜你喜歡
卵巢癌空白對照質粒
外源性透明質酸對人牙周膜細胞增殖及成牙骨質、成纖維分化的影響
miR-181a在卵巢癌細胞中對順鉑的耐藥作用
例析陰性對照與陽性對照在高中生物實驗教學中的應用
短乳桿菌天然質粒分類
過表達H3K9me3去甲基化酶對豬克隆胚胎體外發育效率的影響(內文第 96 ~ 101 頁)圖版
鏡像治療截肢后幻肢痛的隨機對照試驗
Wnt3 a和TCF4在人卵巢癌中的表達及臨床意義
重組質粒rAd-EGF構建并轉染hDPSCs對其增殖的影響
microRNA與卵巢癌轉移的研究進展
Survivin-siRNA重組質粒對人神經母細胞瘤細胞SH-SY5Y的作用
91香蕉高清国产线观看免费-97夜夜澡人人爽人人喊a-99久久久无码国产精品9-国产亚洲日韩欧美综合