鴨肝炎病毒的分離與檢測

楊海山

（湛江市動物疫病預防控制中心，廣東　湛江　524037）

鴨肝炎病毒的分離與檢測

楊海山

（湛江市動物疫病預防控制中心，廣東湛江524037）

在某養鴨場的雛鴨群當中出現了傳染性疾病，其主要的臨床特征表現為肝臟出血以及角弓反張，初步判斷為鴨肝炎病毒感染癥狀。針對送行檢測的病料采用無鴨肝炎病毒母源抗體的鴨胚實行病毒分離及檢測。檢測結果表明，接種病料的鴨胚均致死，且死亡鴨胚均出現了水腫、全身性出血等癥狀；采取解剖檢驗能夠明顯的觀察到鴨內臟有明顯的充血情況。在所采取的PCR擴增檢測中得到了和預期大小相一致的440bp目的片段?；驕y序的結果表明擴增出的基因部分和鴨肝炎病毒的同源性達到了98.5%，據此表明這一鴨群確認感染了鴨肝炎病毒。

鴨肝炎病毒；分離；檢測；PCR

鴨肝炎病毒具有十分迅速的傳播速度，能夠在短時間之內便致使雛鴨死亡，是一種常見于雛鴨群的惡性傳染病毒［1］。這一傳染病毒現已成為了威脅養鴨行業的主要疾病之一。在目前的鴨肝炎病毒類型當中，主要包括I型、II型、III型三種類型，其中尤其是以I型的傳播范圍最廣，傳染性最強。本次研究以某養鴨場雛鴨群為研究對象，此雛鴨群在發病初期病鴨主要表現為精神萎靡、食欲降低或抵制進食，同時還存在有部分雛鴨出現了“角弓反張”的情況；對其進行病理性解剖觀察，發現其肝臟大多已經出現出血性壞死，為了更進一步予以確診，針對所有的送檢病料均采用無母源抗體鴨胚實施病毒分離，同時采用PCR方法予以檢測。

1　材料與方法

1.1檢驗材料

1.1.1病料及鴨胚

本次研究所采用病料均為某養鴨場疑似感染鴨肝炎病毒，而致死的7～9日齡雛鴨肝臟。而鴨胚選取某未注射鴨肝炎病毒疫苗的健康母鴨種蛋。

1.1.2毒株

對于鴨肝炎病毒強毒株采用實驗室分離及檢測后予以妥善儲存［2］。

1.1.3檢測試劑

Taq DNA聚合酶、dNTPs、DNA Mar ker、Agarose Gel、DNA Extraction Kit以及蛋白酶K為寶生物工程有限公司生產，而RNA提取試劑Trizol reagent則由Invitrogen公司所生產；DEPC則由Amresco公司所生產；其余檢測試劑均為國產分析純［3］。

1.2檢測方法

1.2.1病料處理

將所收集到的疑似出現鴨肝炎病毒的鴨肝臟病灶放入滅菌研磨設備當中，同時添加5被含有抗生素物質PBS液體研成粉末狀，使之呈現出混濁懸浮液之后持續凍融三次以上，采用8 000 r/min離心設備進行10 min以上的離心處理，在提取到上層離清液之后增加以雙抗，同時采用密度為0.22 μm濾網膜進行細菌過濾，將其保存于環境溫度為-20 ℃的條件下。

1.2.2病毒分離

將處理完成的病料濾除液體依據0.2 mL/個的接種數量進行接種，而后將接種完成的鴨胚繼續放置于37 ℃的環境之下予以繼續孵化，而后照胚3次/d，將病死鴨胚放置于3 ℃的冰箱3.5 h左右使其血管發生收縮反應，從而得到尿囊液。

1.2.3PCR擴增

PCR擴增過程依據相關的標準流程予以操作，將其通過擴增所生成的物質借助于濃度比例為1%的瓊脂糖凝膠電泳予以測定。

1.2.4基因測序

依據PCR擴增所取得特異性物質，對其予以純化回收而送至相關的生物公司予以基因測序，并通過基因測序所得到的結果利用DNA Star軟件予以比對分析。

2　結果

2.1病毒分離

在對鴨胚進行鴨肝炎病毒接種之后的95 h之內發生死亡情況，在對死亡鴨胚進行解剖檢驗時可明顯發現其胚體存在嚴重的充血及出血情況，且與正常的鴨胚相比還存在明顯的發育不良情況。詳見下圖1。

圖1　死亡胚體充血和出血（中間為正常胚體）

2.2PCR擴增結果

經電泳檢測結果表明，采用專門針對I型鴨肝炎病毒的P1、P2引物由待檢樣品以及標準I型鴨肝炎病毒的核算模板之中均擴增出了440bp的特異性條帶狀物質，而由正常的鴨胚尿囊液核酸模板之中則未擴增出相關的特異性條帶狀物質；采用其他引物也未能夠在待檢樣本當中擴增出任何的條帶狀物質。

2.3基因測序及分析

在通過基因測序所得到的440bp，以及和PCR特異性擴增片段大小完全一樣。將之與現已明確的I型鴨肝炎病毒基因開展BLAST對比分析。其分析結果證實，此次研究所分離出的病毒主體基因同核苷酸序列以及參考注的同源性達到了95.2%～98.5%之間，并且與C80株體之間的相似性最為接近，達到了98.5%。

綜合以上研究結果證實，明確了本次研究所檢測的鴨肝炎病毒為I型鴨肝炎病毒。

3　討論

I型鴨肝炎病毒最初是一種從屬于RNA病毒科的腸病毒屬成員。在之后的研究當中發現鴨肝炎病毒與小RNA病毒科的9項已知屬23類病毒間的衣殼蛋白與保守的2C及3D蛋白氨基酸序列間的同源性均低于40%，因此其從屬于小RNA病毒科當中的一項新屬內容，因此國際病毒分類委員會便將小RNA病毒命名為禽肝病毒屬。此種類型病毒的大小一般為30 nm左右，沒有囊膜，同時相應的基因組共被劃分為單分子線狀正鏈RNA，其中包含有VP1、VP2以及VP3三類完全不同的蛋白結構［4］。在此當中VP1存在有多項免疫輔助優勢特性，其中T細胞的抗原位點和抗原的決定簇所共同構成了T、B淋巴細胞抗原為，并進一步誘導機體產生中和抗體，同時其同病毒基因型以及血清型之間存在有密切的相關性。因而，VP1較常會被應用于病毒遺傳變異分子的主要參考依據。鴨肝炎病毒對于乙醚、胰蛋白酶以及一些常用的消毒劑具備有一定的耐藥性，其能夠在酸性值為3.0的環境下正常生存，并且結尾穩定。I型鴨肝炎病毒無法凝集任何動物或是人體的紅細胞，但是其會在鴨、雞、鵝等幼體胚胎的絨毛尿囊腔當中產生繁殖。鴨肝炎病毒是目前對養鴨業造成最大威脅的傳染病癥。因為這一病癥所主要傳染致死的主要是幼齡雛鴨，并且其傳播速度十分迅速，具有高病發率、高致死率的顯著特點，對于廣大的養殖戶而言由此所導致的經濟損失十分巨大。通常而言，依據流行病學、臨床特征以及相關的解剖檢驗特征，可針對雛鴨所感染的傳染病癥作出初步的判斷。然而，近些年來在我國主要的鴨養殖地區已經出現了不少的新型鴨肝炎病毒時間，同時新型的鴨肝炎病毒癥狀亦可引起相似的臨床表征及病理性改變。對此，就實施以相關的病毒性鴨肝炎研究工作便具有極其重要的作用與價值。

當前臨床上應用在I型鴨肝炎病毒的抗原檢測方法較為多樣，例如較為常用的例如病毒中和試驗、免疫電鏡檢查、酶聯免疫吸附試驗以及瓊脂擴散試驗等。在此之中應用最為普遍也是最為簡便的即為中和試驗，正是基于在鴨肝炎病毒檢驗工作當中的簡便性，促使其被經常性的應用在了雛鴨病毒型肝炎以及相關的血清檢驗當中，然而這一方法同時也存在有明顯的缺陷與不足，即為在對病原體進行分離之時需要進行長時間的離心分離，時間耗費較長，因而難以應用在大批量次的樣品測定工作當中，同時再加之對于無母源抗體鴨胚應用也存在有一定的困難性，因而這一檢測方式無法難以滿足于臨床上的快速診治需求。

本次試驗所選用的PCR擴增方法成功擴增出了和預期大小相等的440bp目的片段，借助于對擴增片段所開展的測序工作以及相應的BLAST分析工作，明確了該養鴨場所送檢的病料為I型鴨肝炎病毒感染，因而采用PCR測定方法進行雛鴨肝炎病毒的檢測工作是一種較為快速、有效的實驗室檢測方法。PCR診斷方法的運用對于鴨肝炎病毒發病區域的診治工作具有十分明顯的指導意義，能夠為開展積極有效的防治措施提供以必要的參考依據，并將廣大養鴨戶的經濟損失降低最低，具有十分明顯的現實意義。

［1］蘇敬良，黃瑜，賀榮蓮，等.新型鴨肝炎病毒的分離及初步鑒定［J］.中國獸醫科技，2014，（32）：15-16.

［2］劉偉，崔國杰，陳少鶯，等.新型鴨呼腸孤病毒和鴨肝炎病毒混合感染的診斷及病原分離［J］.畜牧與獸醫，2014，（46）：92-95.

［3］王永娟，李碧春，沈明君，等.抗Ⅰ型鴨肝炎病毒RdRp蛋白噬菌體單鏈抗體庫構建及單鏈抗體的淘選［J］.中國預防獸醫學報，2015，（37）：334-338.

［4］董井泉，張蕾，馬波，等.Ⅰ型鴨肝炎病毒VP1蛋白優勢抗原區的鑒定及抗體檢測ELISA方法的建立［J］.中國預防獸醫學報，2014，（36）：542-546.

（編輯：尹 云）

S852.65

B

1006-799X（2016）14-0091-02

楊海山（1973-），男，廣東湛江人，助理獸醫師，主要研究方向為獸醫治療。