建立嚙齒類酒精飲用動物模型的影響因素及研究進展

劉欣，張倩倩，王圣霞，張旺信，張漢霆

（泰山醫學院1.藥理學研究所，2.基礎醫學院醫學心理學教研室，3.腦科研究所，山東泰安271000；4.泰安市中心醫院眼科，山東泰安271000；5.Departments of Behavioral Medicine&Psychiatry and Physiology&Pharmacology，Blanchette Rockefeller Neurosciences Institute，West Virginia University Health Sciences Center，Morgantown，WV 26506，USA）

建立嚙齒類酒精飲用動物模型的影響因素及研究進展

劉欣1，2，3＊，張倩倩1，2＊，王圣霞4，張旺信2，張漢霆1，5

（泰山醫學院1.藥理學研究所，2.基礎醫學院醫學心理學教研室，3.腦科研究所，山東泰安271000；4.泰安市中心醫院眼科，山東泰安271000；5.Departments of Behavioral Medicine&Psychiatry and Physiology&Pharmacology，Blanchette Rockefeller Neurosciences Institute，West Virginia University Health Sciences Center，Morgantown，WV 26506，USA）

酒精使用障礙（AUD）是威脅人類健康乃至生命的重要因素之一。世界衛生組織數據顯示，全球每年因AUD而死亡的人數約330萬。AUD已成為一個全球性公共衛生和社會性問題，但其神經行為學機制并未完全闡明。因此，建立有效和可靠的酒精飲用動物模型對AUD機制的探討非常重要。本文從動物品系和造模方法等方面進行綜述，探討可能對造模結果 造成偏差的相關影響因素，以期對AUD的動物行為學研究有所裨益。

酒精；動物品系；飲酒模型；嚙齒類動物

酒精使用障礙（alcohol use disorder，AUD）包括酒精濫用和酒精依賴，酒精依賴又分為軀體依賴和心理依賴?；颊哂捎诜磸惋嬀?，往往出現強烈渴求攝入酒精的心理狀態，表現為酒精耐受性升高、飲酒行為的控制能力喪失及停止飲酒后出現酒精戒斷癥狀等，從而給自身及社會帶來一系列問題［1］。僅在美國，依據最新的DSM-5標準，AUD的12個月患病率達到13.9%，而終生患病率達到29.1%，造成每年約2490億美元的醫療及相關開支［2-3］。時至今日，盡管AUD已成為國際研究的熱點，但其神經生物學機制仍不明確。本文從酒精飲用動物模型的先天遺傳背景與后天建模方式等影響因素進行綜述，希望對其動物行為學研究有所啟示，從而對AUD發生機制及藥物干預研究提供有意義的參考。

1 不同品系嚙齒類動物的選擇

嚙齒類動物的品系是影響酒精攝入量及偏愛性的主要因素之一。由于嗜酒天性不同，即使在相同的實驗條件下，不同品系的動物也會產生迥異的結果 。

1.1 C57BL/6J小鼠

C57BL/6J小鼠因其高度嗜酒的天性而常被用于酒精成癮的研究。Carrara-Nascimento等［4］對該系小鼠進行連續3周雙瓶自由選擇實驗。結果 顯示，其對15%酒精消耗量每天可達20 g·kg-1，血液酒精濃度（blood ethanol concentration，BEC）可達250 mg·dL-1。Yoneyama等［5］對包含C57和C58小鼠在內的22個近交系鼠進行3%，6%和10%酒精的雙瓶自由選擇實驗。結果 顯示，各品系小鼠的酒精消耗量均隨酒精濃度的增加而升高，其中C57BL/6J小鼠酒精攝入量最高，分別達每天4，11和15 g·kg-1。這充分體現了C57BL/6J小鼠高度嗜酒的特點，使得該品系小鼠成為AUD實驗最常用的造模動物之一。

1.2 Wistar大鼠

Wistar大鼠具備繁殖快、易飼養等特點，也常用于酒精飲用動物造模研究。鄭雪梅［6］將成年Wistar大鼠分為3組，以酒精濃度梯度遞增法分別給予6%，8%和12%的酒精溶液3個月，3組大鼠的BEC依次為153.05±5.25，175.71±9.86和（187.81± 6.28）mg·dL-1。Momeni等［7］對不同來源的Wistar大鼠進行20%酒精間歇雙瓶自由選擇實驗（間歇時間為24 h，總時間6周），結果 顯示，其酒精攝入量最高達每天4.5 g·kg-1。Simms等［8］用同樣的方法考察Wistar大鼠酒精攝入量。結果 顯示，其每天酒精攝入量為（5.8±0.8）g·kg-1，而給予酒精30 min后的攝入量為（1.3±0.2）g·kg-1。因此，Wistar大鼠也是研究AUD常用的實驗對象。

1.3 Long-Evans大鼠

Long-Evans大鼠亦可用于酒精飲用動物模型的建立。Simms等［8］采用Long-Evans大鼠進行20%酒精的間歇性雙瓶自由選擇實驗（給予酒精間隔時間為24 h，酒精暴露時間為20 d），其酒精攝入量達每天（5.1±0.6）g·kg-1，酒精偏愛性為（47±5）%，給予酒精30 min后酒精攝入量為（0.87±0.14）g·kg-1。對上述Long-Evans大鼠再進行40 d酒精剝奪實驗，其酒精攝入量和偏愛性進一步增高，分別為每天（6.3±0.8）g·kg-1和（57±5）%。Morales等［9］對Long-Evans大鼠進行20%酒精濃度的間歇性雙瓶自由選擇實驗（間歇時間為24 h，總時間5周），大鼠的酒精偏愛性由25%上升至40%?？梢娫撓荡笫笠部蛇_到較穩定的酒精攝入水平。

1.4 Sprague-Dawley（SD）大鼠

SD大鼠對低、中濃度酒精溶液的攝入量非常穩定［10］。Broadwater等［11］研究表明，成年SD大鼠未經任何訓練時，對20%酒精的攝入量每30 min可達1.4 g·kg-1。Fu等［10］在20%酒精的間歇雙瓶自由選擇實驗（間歇時間為24 h，酒精暴露25 d）中發現，SD大鼠每天酒精攝入基線水平可由2.6 g·kg-1升至（4.38±0.36）g·kg-1，酒精偏愛性由15%升至32%。因此，SD大鼠也是一種價值較高的酒精模型備選動物。

1.5 Fawn（FH）/Wjd大鼠

因具有酒精攝入量大、偏愛性高、酒精攝入有明顯的晝夜節律性和酒精剝奪效應顯著的特點，該系大鼠成為建立AUD模型的理想動物之一［12］。Rezvani等［13］對它們進行雙瓶自由選擇實驗。結果 顯示，該大鼠對10%酒精的攝入量＞每天6 g·kg-1，經過24 h的酒精戒斷其酒精攝入量還可提高25%～30%。景麗等［12］以先天嗜酒的該系大鼠為研究對象，對其進行了雙瓶自由選擇實驗。結果 顯示，它們對5%酒精的攝入水平為每天（4.3±0.2）g·kg-1，酒精偏愛性為（82.9±2.0）%；對10%酒精的攝入水平為每天（6.4±0.2）g·kg-1，酒精偏愛性為（69.2±2.0）%。因此，FH/Wjd大鼠對酒精敏感性高的特點使其非常適合于AUD的動物行為學研究。

1.6 豚鼠

豚鼠亦可被用于構建酒精疾病的動物模型的研究。尤其在構建產前酒精暴露模型中，豚鼠在妊娠期因大腦發育較大鼠和小鼠更為成熟，這使其能更好的模擬人類胎兒乙醇譜系障礙（fetal alcohol spectrum disorders，FASD）的情況［14］。豚鼠一般通過口腔給藥方式給予酒精，飲酒量能達到每天3～6 g·kg-1。另外，豚鼠是唯一出生后即有毛發覆蓋的嚙齒類動物，而某些FASD生物靶標如脂肪酸乙酯可積聚于新生兒毛發，這也使其成為開展類似研究的理想動物模型［15］。但選用豚鼠制備飲酒動物模型需注意其探索天性較差的特點。所以，在很多行為學測試中豚鼠檢測結果 的敏感性較大鼠和小鼠差，這一點是研究者在實驗中需考慮的［16］。

2 常用嚙齒類酒精飲用動物模型的造模方法

除品系對建立酒精飲用動物模型有顯著影響以外，不同造模方法也會引起實驗結果 的明顯差異。以下對目前常用的嚙齒類酒精飲用動物模型及其優缺點進行簡要分析。

2.1 酒精流質食物暴露模型

酒精流質食物暴露模型是最早被廣泛應用的嚙齒類酒精飲用動物模型。在該方法中，往往把包含一定酒精成分的流質飼料作為動物的唯一食物。最常用的此類飼料其酒精成分所提供的熱量占整體食物熱量的35%，即相當于6.61%（V/V）的酒精濃度［14］。該法可造成較好的酒精攝入水平，如Gil-Mohapel等［17］指出，在不同大鼠中采用酒精流質食物可使之平均每天酒精攝入量達到12 g·kg-1；在BEC方面，該模型可以使大鼠達到低至中度的BEC水平［16］。該模型優點是操作簡單，流質飼料既可自主飲用又可灌胃，缺點是不能保證動物達到醉酒狀態且BEC難以維持穩定［18］。

2.2 酒精灌胃模型

嚙齒類飲酒動物模型亦可以通過灌胃或胃內插管的方式建立。研究者可用灌胃針或玻璃導管通過食管將酒精灌入模型動物胃中，同時給對照組動物灌胃同等熱量的麥芽糖或蔗糖溶液來排除應激和營養等方面的干擾［13］。該模型中，每日灌胃次數、酒精濃度、灌胃劑量和實驗時間是影響結果 的重要因素［18］。Fidler等［19］以C57BL/6J和DBA/2J小鼠為研究對象，探索建立2個品系小鼠酒精灌胃模型的最佳條件，認為給予酒精劑量以4 g·kg-1為起點，每日遞增0.5 g·kg-1，每天3次，可明顯提高2個品系的酒精攝入量，最終2個品系小鼠的酒精攝入量可達到每天22和12 g·kg-1。該模型優點是可以精確控制給予動物的酒精劑量和達到的BEC，缺點是構建方法屬于侵入性，且打破了動物飲酒的自主時間規律。此外同時灌胃產生的并發癥，如誤吸、感染和死亡等會影響實驗結果 的準確性［18-20］

2.3 單瓶強制飲酒實驗模型

單瓶強制飲酒實驗是僅允許動物飲用單一酒精溶液，旨在通過禁水而促進動物對酒精的攝入。Broadwater等［11］以間歇單瓶飲酒方法，強制未成年SD大鼠飲10%酒精+0.125%糖精+3%蔗糖溶液8 d，其酒精攝入量每30 min可達1.2 g·kg-1。鄭雪梅［6］對Wistar大鼠進行連續單瓶飲酒實驗。結果 顯示，大鼠對6%，8%和12%酒精的攝入量分別為3.70± 0.64，4.69±0.83和（5.70±0.48）g·d-1。這些結果 說明，單瓶強制飲酒實驗可使動物酒精消耗量達到較高的水平。該模型在酒精對外周組織（如肝和腎等）造成損傷的相關研究中被廣泛采用，但因其不能模擬人類飲酒的自主選擇性，制約了其在酒精成癮及相關中樞機制研究中的應用［6］。

2.4 雙瓶自由選擇實驗模型

雙瓶自由選擇實驗是目前國際最常用的自主酒精飲用動物模型［21-22］，實驗中同時給予動物酒精溶液和水。與單瓶強制飲酒實驗相比，雙瓶自由選擇實驗能更好地模擬人類飲酒習慣［23］?；诮o予酒精時間安排的不同，該實驗又可分為持續性和間歇性雙瓶自由選擇實驗，前者一般持續給予酒精24 h，而后者則一般隔日給予。兩者結果 存在差異，持續實驗可建立較穩定的動物酒精攝入量［24］；間歇實驗則由于限制動物獲得酒精的時間而可能誘發酒精剝奪效應，從而促使其飲用更大量的酒精［25］。如Morales等［9］研究顯示，間歇實驗（間歇時間24 h，總時間5周）期間，Long-Evans大鼠對20%酒精攝入量達到每天5～6 g·kg-1。此外，間歇實驗更適合考察動物飲酒量和BEC之間的相關性，這是研究者在選擇不同酒精飲用模型時應注意的［26-27］。

與雙瓶自由選擇實驗類似的還有3瓶自由選擇實驗和4瓶自由選擇實驗，其原理都是給動物提供了可同時選擇飲用不同溶液的機會，區別之處是除水外，實驗還同時為動物提供了不同濃度的酒精溶液，可更加細致而高效地考察動物對特定濃度酒精溶液的攝取和偏好［28］。

2.5 操作性飲酒實驗模型

操作性飲酒實驗能模擬人類的飲酒習慣，但需訓練動物學會通過壓桿獲得酒精強化。Doherty等［29］用成年雄性Long-Evans大鼠進行10%酒精+ 10%蔗糖溶液的單瓶強制操作性飲酒實驗。結果 顯示，大鼠在前35 min的酒精消耗量可達1.3 g·kg-1。Wang等［30］以雄性Long-Evans大鼠為研究對象，進行壓桿后強制性飲20%酒精實驗發現，大鼠前30 min酒精消耗量可達0.8，甚至＞1 g·kg-1。但亦有研究者采用該模型未取得理想的效果［31］，認為主要由于一些動物因對酒精產生厭惡而不再壓桿所致。操作性飲酒實驗與間歇雙瓶自由選擇實驗相比更能體現動物飲酒的自主性，并將動物對酒精的尋求與攝入2個過程分離［32］。其不足之處在于，實驗中經常出現動物酒精攝入量低，甚至不能自主攝入酒精的情況；另外，壓桿后給予酒精的劑量、濃度以及壓桿次數與給予酒精次數的比例也不易控制［30-32］。

2.6 酒精剝奪模型

酒精成癮動物的一個重要特征就是在經歷短期（＜24 h）或長期（＞1周）酒精剝奪階段后，會出現明顯的戒斷癥狀和之后飲酒量的反彈［33］。因此，研究者在給予選擇飲酒動物一定階段的酒精刺激后，予以酒精剝奪一段時間，之后再次給予酒精，可觀察到動物飲酒量較之前有所提升。如Heyser等［34］給予Wistar大鼠每天30 min的操作性飲酒實驗，之后酒精剝奪14～28 d，結果 其BEC從基線水平的31.45±4.56明顯上升至（86.56±5.87）mg%。因此，長期酒精剝奪實驗可被用作研究酒癮復發及其藥物干預的有效動物模型［35］。

2.7 黑暗環境飲酒模型

黑暗環境飲酒（drinking-in-dark，DID）模型是近年來研究豪飲（binge-drink）行為的典型動物模型。其原理是嚙齒類動物飲酒量在黑暗環境下會顯著升高。該模型模式主要由4 d實驗組成，研究者往往將動物置于黑暗環境下3 h，然后用一個盛有20%酒精溶液的瓶子替換掉飲水瓶。在前3 d實驗中讓動物自主飲用20%酒精溶液2 h，檢測其飲酒量；在第4天則讓動物自主飲用20%酒精溶液4 h，并在2 h和4 h時間點分別檢測其飲酒量［36］。利用該模型可顯著促進動物的飲酒行為，并達到穩定的高BEC水平，如C57BL/6J小鼠BEC一般可＞100 mg·dL-1，甚至表現出明顯的酒精中毒行為［37］。因此，該模型可作為模擬酒精成癮者短時間內大量飲酒的良好動物模型。有研究指出，經典的4 d實驗模式往往會出現第1天酒精攝入結果 與之后幾天的結果 不相關的情況，認為這是因為動物第1天不適應所致。因此，在正式實驗前預先給予至少1～2 d的預實驗過程，結果 可能會更加穩定［37］。

2.8 建立嚙齒類嗜酒動物模型的標準

雖然嚙齒類酒精飲用動物模型的構建方法不同，其效果表現出一定差異，但建立成功的動物模型仍有其統一標準。McBride等［35］提出嚙齒類嗜酒動物模型必須滿足以下條件：①動物應自主飲用酒精；②酒精攝入量應超過其代謝量，BEC應達到藥理學升高水平；③動物攝取的主要目的為酒精的藥理學作用，而非單純因酒精所含的熱量、味道或氣味等因素；④酒精的攝取應是正強化的過程，動物對飲酒的渴求會不斷增加，甚至愿意克服障礙以獲取酒精；⑤動物在長期飲酒過程后應能產生酒精耐受性；⑥長期飲酒過程后給予酒精剝奪，會導致動物出現酒精戒斷反應。

3 模型構建中的其他影響因素

在AUD模型動物的行為學研究中，由于動物品系和遺傳背景不同，以及實驗方法的區別，有時會造成結果 差異較大，影響實驗的可信度，并妨礙不同研究結果 間的比較和分析。為此，本文對常見的差異之處進行總結和討論，以期對研究者更好地選擇和建立酒精飲用動物模型有所裨益。

3.1 動物的遺傳背景與篩選

如前所述，不同品系動物的飲酒特點明顯不同。因此，研究者在建立酒精飲用動物模型時，需首先考慮這一點。如C57BL/6J小鼠是一種先天嗜酒程度較高的小鼠，而DBA/2J小鼠則嗜酒程度很低，所以兩系小鼠可納入同一實驗中相互對照進行研究［5］。

此外，在研究中尤需注意的是，即使同一品系動物，因為其來源不同，也可能在飲酒量方面存在差異。Momeni等［7］對3家供應商提供的Wistar大鼠進行20%酒精間歇雙瓶自由選擇實驗（間歇時間為24 h，實驗時間6周）顯示，不同供應商提供的大鼠的酒精消耗量及偏愛性均存在差異，這可能是基因型的不同所致。而在飲酒動物模型中廣泛使用的C57BL/6J小鼠，亦是如此［38-39］。如Blednov等［39］對敲除基因的C57BL/6J小鼠進行雙瓶自由選擇實驗發現，Gnat3基因編碼的G蛋白參與味覺傳遞；Tas1r3基因與酒精依賴易感基因（1p13-35）毗鄰的1p36有保守同線性；Trpm5基因編碼的蛋白可以接收和傳遞味覺信號。所以Gnat3，Tas1r3和Trpm5 3個基因任何一個改變都會降低C57BL/6J小鼠的酒精攝入量和偏愛性。這就要求研究者在預實驗中對動物酒精攝入偏好性進行初篩［27］，以保證被試動物的一致性，避免基因突變帶來行為學結果 的誤差。

3.2 動物的性別和年齡

Ceylan-Isik等［40］發現，大量飲酒時，女性產生的相關癥狀較男性更為嚴重。但由于臨床上女性AUD患病率低于男性［2-3，40］，所以大多數研究僅采用雄性動物進行實驗。然而，Broadwater等［11］研究表明，雌性SD大鼠酒精攝入量明顯高于雄性。因此，不同性別因素對動物酒精攝入量所造成的影響也是AUD研究中一個需注意的方面。

在年齡方面，有研究表明，在連續雙瓶自由選擇實驗中，未成年C57BL/6J小鼠對15%酒精攝入量與成年小鼠存在差異，實驗3周時兩者的酒精偏愛性分別為70%和78%［4］。Vendruscolo等［41］也指出，不同年齡Wistar大鼠酒精消耗量不同。因此，在實驗過程中不同年齡動物也會對結果 帶來差異。

3.3 操作細節對實驗結果 的影響

操作過程中的液體丟失及動物的位置偏愛性等細節亦較易對結果 帶來誤差。有研究表明，雙瓶自由選擇實驗與操作性飲酒實驗的酒精攝入量和BEC結果 均應呈明顯正相關，但水瓶取放過程中造成液體丟失可使該相關性不明顯［42］。有鑒于此，可放置1只不包含動物的空籠盒，其水瓶的操作和其他籠子完全一致，這樣計算其前后結果 的變化作為校正數據的標準，以減小實驗誤差［22，26］。此外，實驗過程中動物可能會對瓶子或其位置產生偏好，即在整個實驗中，動物僅使用某只瓶子或攝入某個位置的液體。位置偏愛性及瓶子偏愛性目前仍然主要依靠每24 h更換1次瓶子位置進行平衡。另有研究者采用單瓶強制飲用法，即在正式實驗前，對嗜酒動物和嗜水動物分別進行7 d單瓶強制飲水、飲酒實驗［43］。這種強制動物攝入非偏愛溶液的方法亦可減小偏愛性對實驗結果 的影響。

3.4 酒精溶液中加甜味劑對實驗結果 的影響

甜味對嚙齒類動物飲酒量和偏好性有明顯影響。因此，在酒精中添加甜味劑成為很多研究者建立穩定的動物飲酒基線的有效手段。Fidler等［44］用5%蔗糖溶液、5%酒精溶液、5%蔗糖+5%酒精溶液和水分別對幼年Wistar大鼠進行連續16 d（出生后30～46 d）雙瓶自由選擇實驗。結果 顯示，蔗糖能促進大鼠攝入酒精。另外，實驗動物接觸甜味劑時所處的年齡階段也會影響實驗結果 。Broadwater等［11］在研究酒精溶液中加糖對SD大鼠偏愛性和酒精攝入量的影響時發現，幼年大鼠暴露于10%酒精+0.125%糖精+3%蔗糖溶液，會使其成年后對該溶液的消耗量增加，這可能與激活幼年時已建立的獎賞回路有關。

3.5 實驗設計中不同模型的聯合應用

目前很多研究的實驗設計都傾向于聯合采用2種以上的實驗方法進行綜合的飲酒動物模型構建，以此彌補單一模型的不足和局限，從而對靶行為和AUD中樞神經生物學機制進行更全面的考察［45］。一個典型的例子就是慢性酒精給藥和酒精剝奪實驗模型的結合，如Rhodes等［46］聯合采用酒精蒸氣吸入模型和DID模型，取得較好的效果。另外，持續性和間歇性雙瓶自由選擇實驗也常常在時間上先后應用，以建立動物較高而穩定的BEC，更利于考察藥物對AUD的作用［47］。

4 結語

近年來，隨著國內外AUD患者的不斷增多，對酒精成癮機制的研究和新藥開發的需求愈加迫切。在這樣的形勢之下，嚙齒類酒精飲用動物模型的不斷完善和發展，會對AUD機制的闡明及相關干預手段的發展產生巨大推動作用。但是，由于酒精飲用動物模型構建涉及到品系、操作方法、性別和年齡等諸多因素，如何去選擇、改進，甚至進一步建立全新的、能更好模擬人類飲酒特點的動物模型是一個非常重要的問題。在未來酒精飲用動物模型的發展中，有幾個方向值得關注。

首先，基因研究會對篩選和完善動物模型產生愈加明顯的促進作用。目前，國內外對AUD相關的神經傳導遞質、神經免疫、離子通道和神經肽信號通路等上百種靶基因位點進行探索，利用基因編輯技術探索特定基因對嚙齒類動物飲酒行為的影響，取得了豐碩成果［48］。在這一過程中，這些動物研究成果若能與人類酒精飲用相關基因靶點的研究進行結合，從而相互參照，相信會進一步促進嚙齒類酒精飲用動物模型的發展，并給人類AUD遺傳機制的探索帶來啟示［14，25，46，48］。

其次，在動物模型中如何更好地模擬人類酒精飲用的社會因素，亦是一個值得關注的方面。人類AUD的產生除有基因方面的原因外，與壓力、家庭、教育和環境影響等社會因素息息相關［2-3，40］?，F在已有諸多關于產前酒精暴露、孤養和其他應激因素等對AUD影響的動物行為學研究［4，14，49］，這些成果都為進一步理解飲酒行為提供了啟示。未來研究者若能參照動物品系特點，進行合理設計，從而更全面地模擬人類飲酒的種種社會性影響因素，必會進一步提升實驗的現實意義。

最后，如何在技術層面改良甚至建立新的嚙齒類酒精飲用動物模型也是促進AUD研究的必要途徑。在改良現有的酒精飲用動物模型方面，可將不同實驗設計的有效影響因素相結合，從而進一步挖掘潛力。如經典DID模型一般是讓動物單瓶飲用酒精，而MacFadyen等［50］采用改良的方式，在黑暗環境下給動物提供了3瓶不同溶液供其自主飲用（分別為0.05%糖精溶液、0.05%糖精+10%酒精溶液和0.05%糖精+15%酒精溶液）取得較好的效果；另外，近年來也有研究者利用傳感器和無線信號芯片等技術手段建立了新的動物模型，如Smutek等［51］建立的群居小鼠自主飲酒模型（model of voluntary alcohol drinking by group-housed mice），該模型采用IntelliCage系統，給C57BL6J小鼠植入信號發射芯片，研究者通過鼠籠上的傳感器不僅可考察個體動物的飲酒行為，還可考察群體環境對飲酒的影響。因此，動物造模技術層面的改進無疑可開拓思路，深化對AUD的行為學研究。

綜上所述，在建立嚙齒類酒精飲用動物模型的發展過程中，從強制飲酒到自主飲酒，從單純注重動物的酒精攝入量到注重酒精偏愛性，不同類型的酒精飲用動物模型不斷得到完善和發展，從而進一步促進了對AUD的行為學及其神經藥理學的研究。目前，對AUD的中樞神經作用機制亟待闡明，臨床能治療AUD的一線藥物也極為有限，這都對完善和改進嚙齒類酒精飲用動物模型提出新的要求。行為學研究取得的進展必將對AUD的基礎、臨床前和臨床治療研究發揮越來越大的作用。

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Factors affecting establishment of rodent alcohol drinking models and recent advances

LIU Xin1,2,3＊,ZHANG Qian-qian1,2＊,WANG Sheng-xia4,ZHANG Wang-xin2,ZHANG Han-ting1,5
(1.Institute of Pharmacology,2.Department of Medical Psychology,School of Basic Medical Sciences, 3.Key Lab of Cerebral Microcirculation in Universities of Shandong,Taishan Medical College, Tai′an 271000,China;4.Department of Ophthalmology,Tai′an Central Hospital,Tai′an 271000, China;5.Departments of Behavioral Medicine&Psychiatry and Physiology&Pharmacology, Blanchette Rockefeller Neurosciences Institute,West Virginia University Health Sciences Center,Morgantown,WV 26506,USA)

Alcohol use disorder(AUD)is one of the main factors that threaten human health and life.WHO data show that about 3.3 million people die each year worldwide due to AUD.AUD has become a global public health concern,but its neurobiological and behavioral mechanisms remain unclear.Therefore,it is particularly urgent to develop valid and reliable animal models to investigate the underlying mechanisms of AUD.This review summarizes the animal species and modeling methods of AUD in order to explore the potential influence on the deviation of modeling in alcohol intake and provide helpful inputs to behavioral research of AUD.

alcohol;animal strains;alcohol drinking models;rodent

The project supported by Foundation of Overseas Distinguished Taishan Scholars of Shandong Province; Natural Scientific Foundation of Shandong Province(ZR2014CL011);High-Level Project Cultivating Grants of Taishan Medical College(2013GCC08);High-School Scientific Research Development Program of Shandong Province(2016J16LL57); and Scientific Foundation of Students of Taishan Medical College

ZHANG Han-ting,E-mail:hzhang@hsc.wvu.edu，Tel:(0538)6231386

R965.1

A

1000-3002-（2017）06-0607-08

10.3867/j.issn.1000-3002.2017.06.016

2017-03-03接受日期：2017-06-15）

（本文編輯：趙楠）

山東省政府“泰山學者海外特聘專家”專項基金；山東省自然基金（ZR2014CL011）；山東省高等學?？蒲杏媱潱?016J16LL57）；泰山醫學院高層次課題孵育計劃（2013GCC08）；泰山醫學院大學生科研基金

劉欣，男，碩士，講師，主要從事動物成癮行為和神經藥理學研究；張倩倩，女，泰山醫學院臨床醫學專業學生，主要從事動物成癮行為和神經生物學研究。

張漢霆，E-mail：hzhang@hsc.wvu.edu，Tel：（0538）6231386

＊共同第一作者。

＊Co-first author.