尼帕病毒融合蛋白的真核表達及其特異性血清的制備

劉渝嬌，李耀輝，張冠英，范鵬飛，遲象陽，房婷，劉樹玲，陳旖，宋小紅，于長明

軍事科學院軍事醫學研究院生物工程研究所，北京100071

尼帕病毒（Nipah virus，NiV）屬于副黏病毒科 （Paramyxoviridae）亨尼帕病毒屬（Henipavirus），為單股負鏈RNA病毒，其自然宿主為果蝠，可感染豬、馬等哺乳動物以及人類，能夠引起嚴重的神經系統性疾病和呼吸系統性疾病等[1]。尼帕病毒最早出現于1998 年9 月，該次疫情持續至1999 年4 月，最終造成馬來西亞霹靂州256 人感染，105人死亡，另有116 萬頭豬死亡，并蔓延至新加坡一屠宰場，造成11 名工人感染、1 人死亡[2-3]。1999年10 月，研究人員從一名患者腦脊髓液中分離出病毒[2]。不久之后，又從馬來西亞果蝠尿液中分離出尼帕病毒，確定了尼帕病毒的自然宿主[3]。隨后，在印度、柬埔寨、泰國等國家都曾報道過尼帕疫情，近年來，尼帕病毒感染疫情多次在孟加拉國和印度發生，已造成數百人死亡，死亡率為50%～100%[4]。

NiV 基因組共編碼6 個結構蛋白（N，P，M，F，G，L），有黏附蛋白（G）和融合蛋白（F）2 個包膜糖蛋白。其中G 蛋白是以四聚體形式存在的Ⅱ型跨膜蛋白，胞外域包括一個莖狀區以及含受體結合區域的頭部區；而F 蛋白為Ⅰ型跨膜蛋白，包含546 個氨基酸殘基，相對分子質量約67×103，包括2 段七肽重復序列（heptad repeat，HR）和疏水性融合多肽（fusion peptide，Fp）[5]，其基因位于病毒基因組6370～8706 nt[6]。在F 蛋白合成過程中，首先合成為不具備活性的前體蛋白F0，F0運輸至細胞膜表面后，通過內吞作用回到細胞內部[7-8]，然后在酸性核內體中被組織蛋白酶L 或B 分解[9-10]，形成F1（C 端）和F2（N 端）2 個有活性的蛋白，F1和F2通過二硫鍵連接形成有融合功能的融合蛋白，最終在膜表面以三聚體形式存在[11]。尼帕病毒入侵宿主細胞時，通過G 蛋白識別并結合宿主細胞膜表面受體Ephrin B2 和Ephrin B3[12-13]，這一過程會激發F 蛋白發生顯著的構象重排[14]，從一個亞穩定狀態重新折疊成為較低的能量狀態，從而促進Fp 暴露并插入宿主細胞膜[15]。因此，含有受體結合區的G 蛋白與含有融合肽的F 蛋白經常被作為尼帕病毒結構、入侵機制等研究的主要對象，以及疫苗研制和抗體篩選的重要靶標。

鑒于F 蛋白在病毒入侵過程中扮演著極為重要的角色，表達純化獲得接近天然構象及生物化學性質的F 蛋白以及制備其特異性血清，對于尼帕病毒的疫苗研究、中和抗體的篩選及相關機制探討至關重要。因此，我們構建了F 蛋白的真核表達質粒，在哺乳動物細胞中表達獲得了可溶性F 蛋白（sF），并且驗證了純化得到的蛋白以三聚體的形式存在，且能在體外被胰蛋白酶消化分解為F1和F2蛋白。以該蛋白免疫小鼠，獲得了針對尼帕病毒F 蛋白的特異性血清。本研究為后續開展尼帕病毒的蛋白結構、入侵機制、疫苗及中和抗體等相關研究奠定了基礎。

1 材料和方法

1.1 材料

4～6 周雌性BALB/c 小鼠購自北京維通利華實驗動物技術有限公司；Expi293F 細胞、尼帕病毒G蛋白、抗埃博拉病毒GP 蛋白單克隆抗體由本實驗室保存；限制性內切酶XbaⅠ、AgeⅠ，胰蛋白酶購自NEB 公司；去內毒素大提試劑盒購自天根生化有限公司；Expi293 細胞培養基及轉染試劑購自ThermoFisher 公司；Strep Trap HP 預裝柱購自GE Healthcare 公司；Western 化學發光顯色液、30k 15 mL 超濾管購自Millipore 公司；蛋白酶抑制劑購自Promega 公司；山羊抗鼠IgG 二抗（HRP）購自Abcam 公司；抗Strep（HRP）抗體購自Merck Millipore 公司；TMB 單組分顯色液、ELISA 終止液購自索萊寶有限公司。

1.2 表達質粒構建

尼帕病毒融合蛋白F 基因（GenBank：NC_002728.1）刪除跨膜區和細胞質尾區，僅保留胞外域基因，C 端加上Strep 標簽，序列設計完成后由金斯瑞有限公司進行密碼子優化并合成，酶切位點為XbaⅠ和AgeⅠ，連接至表達載體pcDNA3.4，得到表達質粒pcDNA-sF。將菌液送至生工生物工程有限公司測序，序列比對確認無誤后，振蕩培養提質粒pcDNA-sF，在37℃經XbaⅠ/AgeⅠ雙酶切1 h 后核酸電泳鑒定。

1.3 融合蛋白F 在哺乳動物細胞中的表達

轉染前1 d，接種2×106細胞到30 mL Expi293 表達培養基中，在5% CO2、37℃、120 r/min條件下懸浮培養；轉染當天，檢測細胞密度達3×106/mL 時，取 80 μL ExpiFectamine293 轉染試劑加入1.5 mL MEM 培養基中，取30 μg 表達載體pcDNA-sF 加入1.5 mL MEM 培養基中，分別混勻，室溫孵育5 min 后將二者混合，室溫孵育25 min 后加入細胞培養瓶中。轉染12 h 后，加入150 μL 轉染增強劑1 和1.5 mL 轉染增強劑2；繼續培養84 h，將細胞培養物800 r/min 離心15 min 后再以3000 r/min 離心15 min，收集上清。

1.4 Strep Trap 柱親和層析純化蛋白

用0.45 μm 濾膜過濾收集的細胞表達上清，Strep Trap 親和柱用0.5 mol/L NaOH 再生后，用平衡緩沖液（100 mmol/L Tris-HCl，150 mmol/L NaCl，1 mmol/L EDTA·2Na）平衡后上樣，上樣結束后再平衡，然后用洗脫液（1 L 平衡液，2.5 mmol/L 脫硫生物素）洗脫，收集洗脫峰。用30k 超濾管對洗脫峰進行超濾濃縮，同時用PBS 溶液進行換液。

1.5 Western 印跡檢測蛋白表達及血清特異性

取純化后的樣品，加入含DTT 的4×SDS 上樣緩沖液，煮沸10 min，電泳結束后用金斯瑞轉膜儀電轉移蛋白到PVDF 膜上；轉膜后用5%的脫脂奶粉室溫封閉1 h，加入抗Strep（HRP）抗體（1∶5000）或免疫小鼠血清（1∶2500）室溫孵育1 h；用TBST 洗膜后加入羊抗鼠IgG 二抗（HRP）室溫孵育1 h；洗膜后滴加化學發光試劑，在化學發光成像系統中曝光。

1.6 F 蛋白的體外酶解實驗

在反應體系中加入1 μg 純化的sF 蛋白、100 ng 胰蛋白酶，用1×緩沖液補至總體積為10 μL，4℃孵育過夜；次日加入1 μL 10×蛋白酶抑制劑終止反應，取10 μL 消化產物加入4×SDS 上樣緩沖液，煮沸10 min，通過Western 印跡分析消化產物成分，一抗為抗Strep（HRP）抗體（1∶5000稀釋）。

1.7 HPLC 分析條件

HPLC 分析儀為Waters 2695-2487，凝膠色譜柱為TSKgel G3000SWXL；標準液、樣品液上樣量均為30 μL，流速1 μL/min，上樣時間30 min，柱溫25℃，流動相為PBS 緩沖液。

1.8 小鼠免疫

將純化得到的F 蛋白與弗氏佐劑均勻混合，在每只小鼠腹股溝皮下多點注射20 μg（共6只），在第0、14 和28 d 分別免疫，共免疫3 次；第42 d 時取小鼠尾靜脈血，常溫靜置4 h 后8000 r/min 離心10 min，收集上清。

1.9 ELISA 檢測抗血清的特異性結合活性

以1 μg/mL 的濃度包被純化的sF 蛋白，4℃孵育過夜；用PBST 洗板4 次后用ELISA 封閉液于37℃封閉1 h；再次洗板后首孔加入150 μL 稀釋比為1∶100 的小鼠血清，其余孔加入100 μL 稀釋液，1∶3 稀釋，37℃孵育1 h；洗滌后加入1∶10 000的山羊抗鼠IgG 二抗（HRP），37℃孵育1 h；洗滌后每孔加入100 μL TMB 單組分顯色液顯色6 min，每孔加入50 μL 終止液終止顯色，讀取D450nm/D630nm值。

2 結果

2.1 F 蛋白表達質粒的鑒定

pcDNA-sF 質粒設計及鑒定結果見圖1。表達質粒pcDNA-sF 經XbaⅠ/AgeⅠ雙酶切后得到約6000 bp 的pcDNA3.4 載體條帶和約1600 bp 的目的基因條帶，說明質粒pcDNA-sF 表達質粒含有目的基因?；驕y序結果與原序列一致，沒有堿基缺失與突變，表明得到了序列正確并成功克隆的表達質粒。

圖1 重組質粒pcDNA-sF 的質粒圖譜（A）及酶切鑒定（B）

2.2 融合蛋白F 的表達、純化及鑒定

2.2.1 純化產物的SDS-PAGE 鑒定 將濃縮換液后的蛋白進行SDS-PAGE 和Western 印跡分析（圖2）。SDS-PAGE 結果顯示所純化蛋白相對分子質量約為70×103，稍大于F 蛋白胞外區相對分子質量的理論值61×103，推測是由于F 蛋白上含有5個N 糖基化位點（Asn64、Asn67、Asn99、Asn414、Asn464），使得蛋白質遷移速率減慢；并且結果顯示所純化的蛋白純度在95%以上。用抗Strep 抗體進行Western 印跡，結果與SDS-PAGE 結果一致，表明表達蛋白含有Strep 標簽，說明純化的蛋白為本研究所設計的蛋白。

2.2.2 胰蛋白酶切鑒定 在sF 蛋白的體外酶解實驗中，經胰蛋白酶消化后的sF 蛋白經SDSPAGE 分析分離出2 條大小不一的條帶（圖3A），與文獻報道的F0蛋白經胰蛋白酶消化形成F1和F2蛋白的理論相對分子質量（分別為51×103和19×103）基本一致。進一步用抗Strep 抗體進行Western 印跡，在70×103、51×103左右有明顯條帶，應為含有Strep 標簽的F 蛋白和位于F 蛋白C 端的F1（圖3B）。

圖2 純化產物的SDS-PAGE 分析（A）與Western 印跡鑒定（B）

圖3 sF 蛋白酶解產物的SDS-PAGE（A）與Western 印跡（B）

2.2.3 HPLC 分析 以已知相對分子質量的尼帕病毒G 蛋白（四聚體，約240×103）、抗埃博拉病毒GP 蛋白單克隆抗體（150×103）為對照，HPLC 分析結果顯示本實驗表達純化的F 蛋白保留時間（9.722 min）在G 蛋白（8.610 min）和單克隆抗體（11.094 min）之間，說明重組表達的F 蛋白相對分子質量介于150×103和240×103之間。而單體F蛋白胞外區的理論相對分子質量約61×103，提示本實驗表達純化的F 蛋白以三聚體（190×103）形式存在，其結合方式有待于進一步研究。

2.3 融合蛋白F 的特異性血清驗證及其結合活性檢測

取小鼠血清，通過Western 印跡驗證血清對F蛋白的特異性識別能力（圖5A），對照抗原為尼帕病毒G 蛋白。結果顯示在F 蛋白泳道上有一條相對分子質量約70×103的條帶，而對照抗原處沒有條帶，表明所制備的鼠抗血清能特異性識別尼帕病毒sF 蛋白。通過ELISA 測定小鼠血清中抗F 蛋白的抗體滴度（圖5B），結果顯示小鼠血清中抗F抗體的滴度在104以上，表明重組表達的sF 有效地激發了小鼠體液免疫反應，制備的血清結合活性良好，可用于后續研究。

圖4 HPLC 分析sF 蛋白的相對分子質量

圖5 鼠抗F 蛋白特異血清與F 蛋白的特異性結合（A）及其抗體滴度檢測（B）

3 討論

NiV 是一種烈性病原體，對病原的操作必須在生物安全4 級實驗室進行，目前尚無獲批的疫苗或抗體治療藥物[4]。F 蛋白在病毒入侵過程中至關重要，并且通過其構象重排促進病毒與宿主細胞的膜融合[11]，而在免疫系統中體液免疫所產生的主要中和性抗體也依賴于F 蛋白的構象。有研究顯示，大多數人源呼吸道合胞病毒（RSV）中和抗體都識別融合前狀態也就是未發生構象改變的F 蛋白[16]；Stewart-Jones 等的研究證明穩定地處于融合前狀態的F 蛋白在小鼠和恒河猴體內能更好地激發體液免疫反應[17]。因此在關于F 蛋白的大多數研究中，都是以前體蛋白F0為主要研究對象，例如Chan 等制備了尼帕病毒可溶性的以三聚體形式存在的F0蛋白，并鑒定了其生物化學性質、構象及免疫原性都接近于天然F 蛋白[18]；Dang等則以F0為免疫原免疫小鼠后篩選得到具備廣譜中和活性的抗F 蛋白的單克隆抗體，該單抗通過抑制F 蛋白的構象改變而發揮中和作用[4]。制備以三聚體形式存在的F 蛋白用于免疫動物篩選尼帕病毒中和性單抗也是本研究的目的之一。

在蛋白表達系統中，對比原核表達系統，哺乳動物細胞能夠準確地完成糖基化、磷酸化及蛋白水解等多種翻譯后加工功能，因而表達產物在分子結構、理化特性和生物學功能等方面更接近天然蛋白[19]。而分泌表達相較于胞質內表達，經歷了蛋白翻譯后加工的整個過程，具有簡化蛋白產物的檢測與純化、降低生物處理工藝的復雜性、提高蛋白產物的產量與質量等優勢[20]。

本研究在哺乳動物細胞中對NiV 融合蛋白F進行了重組表達，獲得了可溶性F 蛋白。該蛋白在自然狀態下以三聚體形式存在，與天然狀態下F 蛋白的存在方式一致，且能在體外被胰蛋白酶消化分解為F1、F2蛋白，具有與天然F 蛋白相似的生物化學性質；將sF 蛋白免疫小鼠后獲得了高效價的特異性血清。這些結果為NiV 入侵機制、疫苗設計、中和抗體篩選及作用機制等后續研究奠定了堅實的基礎。