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龜板抑制破骨分化改善骨質疏松性骨折

2024-03-13 06:20張鵬陳弘林伍子賢余思瑤招文華尚奇何嘉輝陳桂鋒余富勇梁德江曉兵任輝余翔
中國骨質疏松雜志 2024年1期
關鍵詞:性骨折骨細胞靶點

張鵬 陳弘林 伍子賢 余思瑤 招文華 尚奇 何嘉輝 陳桂鋒 余富勇 梁德 江曉兵 任輝* 余翔,4*

1.廣州中醫藥大學,廣東 廣州 510405

2.廣州中醫藥大學第一附屬醫院,廣東 廣州 510405

3.廣州醫科大學第二附屬醫院,廣東 廣州 510260

4.廣東省中醫臨床研究院,廣東 廣州 510405

骨質疏松性骨折(osteoporotic fracture,OF)作為骨質疏松癥最嚴重的并發癥,其發病率逐年升高,預計2035年我國髖部、椎體以及腕部OF約有483萬例,至2050年將達599萬例[1]。臨床多使用骨吸收抑制劑來治療OF,但這些藥物的臨床運用由于其使用過程中存在的并發癥而受到限制[2]。近年來,中醫藥在治療OF上展現出良好的療效,國內外專家學者也逐漸開始關注這一領域[3-4]。

龜板(plastrum testudinis,PT)具有補腎強骨的功效,近年來對龜板抗OF的研究越來越多,但多集中在PT促進骨髓間充質干細胞(bone marrow derived mesenchymal stem cells,BMSCs)成骨分化方面,研究表明龜板提取物及含藥血清對大鼠BMSCs有促增殖作用,在臨床上有較好的實際運用和發展前景[5]。網絡藥理學能從多分子、多靶點、多途徑的角度闡述藥物干預疾病的治療原理[6]。因此,本文擬運用網絡藥理學和實驗驗證探討PT治療OF的潛在機制。

1 資料與方法

1.1 龜板化合物及靶點信息的獲取

借助BATMAN數據庫(http://bionet.ncpsb.org/batman-tcm/)尋找龜板的相關活性物質及其對應靶點,將閥值“Score cutoff”設置為10[7]。

1.2 骨質疏松性骨折靶點集及龜板治療骨質疏松性骨折的潛在靶點獲取

在GeneCards(https://www.genecards.org/)和OMIM(https://www.omim.org)數據庫檢索得到OF靶點集,并借助R軟件將其與1.1中得到的靶點交集映射獲取兩者的交集靶點。

1.3 龜板治療骨質疏松性骨折的靶點蛋白互作網絡構建

將交集靶點輸入至STRING數據庫(https://string-db.org/),去除孤立蛋白后得到蛋白互作(protein-protein interaction,PPI)信息,并將其導入到Cytoscape 3.7.2(http://www.cytoscape.org/)軟件構建PPI網絡,借助網絡拓撲學分析進一步篩選核心靶點。

1.4 龜板-活性成分-靶標-骨質疏松性骨折網絡的構建

組建“龜板-活性成分-靶標-骨質疏松性骨折”四者之間的對應信息,將其導入至Cytoscape 3.7.2 軟件進行網絡可視化。

1.5 GO生物過程富集分析

交集靶點的GO生物過程(biological process,BP)富集分析通過R軟件完成,以點狀圖的形式展示顯著性排在前20的富集條目。此外,將交集靶點導入Cytoscape 3.7.2 軟件中進行GO.BP富集分析,篩選出主要與OF相關的生物學過程(P<0.05),可視化展示上述生物學過程及其對應的交集靶點。

1.6 KEGG通路富集分析

同樣利用R軟件對交集靶點進行KEGG分析,將富集得到的信號通路(P<0.05)按照顯著性進行排序展示,并構建“通路-靶標”之間的對應關系,通過Cytoscape 3.7.2軟件進行網絡可視化展示[8]。

1.7 實驗驗證

1.7.1實驗動物:SPF級雌性SD大鼠30只,購自廣州中醫藥大學醫學實驗動物中心。所有動物實驗均經廣州中醫藥大學第一附屬醫院倫理委員會批準(No.TCMF1-2021068)。

1.7.2實驗試劑:重組人RANKL(6449-TEC)購于美國R&D Systems公司,重組人M-CSF(11792-H08Y)購于北京義翹神州科技股份有限公司,抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)染色試劑盒購于美國Sigma公司,胎牛血清(FBS)、α-MEM培養基購于賽業生物科技有限公司,CCK8試劑購于上海碧云天生物技術有限公司,龜板購于廣州中醫藥大學第一附屬醫院(批號:KG37243537)。

1.7.3龜板水提液的制備:參照本課題組前期研究基礎[9]。100 g龜板粉碎后,加1 L純水,微沸1 h,獲得提取液,剩余藥渣重復操作微沸2次后獲得提取液。所有提取液0.22 μm過濾除菌,分裝并密封后放置于-80 ℃冰箱保存。

1.7.4OF大鼠模型的構建及龜板的干預:將30只雌性SD大鼠隨機分為3組:假手術組、OF組和OF+PT組,每組10只。其中假手術組僅予術口切開,生理鹽水灌胃;根據既往報道的方法[10],OF組大鼠去除雙側卵巢3個月后,于L6椎體側造一直徑為3 mm、深度為3 mm的圓形骨缺損,以模擬骨質疏松性椎體骨折后局部骨缺損狀態;OF+PT組予構建大鼠L6椎體OF模型,龜板水提液灌胃,灌胃濃度按照人和動物間體表面積折算的等效劑量比值換算為:3.15 g/(kg·d)。造模成功后,灌胃治療4周后處死各組大鼠并取材,取L6傷椎行micro-CT、HE染色評估OF模型大鼠骨缺損愈合的情況。

1.7.5實驗細胞培養:所有臨床實驗均通過本院倫理委員會的批準(No.K[2019]129)。在本研究中,從確診為OF[11-12]的男性患者(n=3)中取外周靜脈血10 mL,均經患者知情同意。根據文獻報道的方法[13],從血液樣本中提取人外周血單核細胞(human peripheral blood monocytes,HPBMs)進行培養。

1.7.6CCK8法檢測龜板對HPBMs活性的影響:取HPBMs以1×104/孔的密度接種于96孔板中,培養24 h后分為對照組和龜板干預組,對照組加入含25 ng/mL M-CSF的α-MEM培養基,龜板干預組加入含不同濃度梯度的龜板水提液和25 ng/mL M-CSF的α-MEM培養基,共設置5、10、20、30 μg/mL 4個濃度梯度,置于培養箱中繼續培養,分別于給藥后0、1、3、5、7 d取出1塊培養板,檢測HPBMs的吸光度值(OD 450 nm)。

1.7.7TRAP染色鑒定龜板對HPBMs破骨分化的影響:取HPBMs以2×105個/cm2的密度接種于24孔板中,選取CCK8法檢測得到對HPBMs無細胞毒性的龜板水提液濃度進行干預,即用含25 ng/mL M-CSF、50 ng/mL RANKL及不同濃度龜板水提液的培養液誘導培養,隔天換液。干預10 d后進行TRAP染色,將具有3個以上細胞核,且細胞質染成酒紅色的細胞定義為TRAP染色陽性(TRAP+)的成熟破骨細胞。

1.8 統計學分析

2 結果

2.1 龜板成分及作用靶點信息

通過BATMAN數據庫檢索去重后得到龜板6個活性成分,包括苯丙氨酸(Phenylalanine)、甲硫氨酸(Methionine)、蘇氨酸(Threonine)、碳酸鈣(Calcium Carbonate)、亮氨酸(Leucine)、天冬氨酸(Aspartic Acid),以及342個作用靶標。

2.2 龜板治療骨質疏松性骨折的潛在靶點獲取

共獲得OF相關靶點840個,與 342個PT靶點交集映射得到34個交集靶點。交集靶點信息見表1。

表1 龜板治療骨質疏松性骨折的潛在靶點基因

2.3 PPI網絡和龜板-活性成分-靶標-骨質疏松性骨折網絡構建

交集靶點構建的PPI網絡圖共涉及32個節點,126條邊。該網絡中有17個靶點蛋白的度值超過平均值(7.875),視其為核心靶點,詳見表2。龜板-活性成分-靶標-骨質疏松性骨折網絡圖由42個節點和79條邊組成,線條代表龜板、活性成分、作用靶點和骨質疏松性骨折之間的對應關系,網絡拓撲學分析提示度值排名前3位的核心活性成分為苯丙氨酸(Phenylalanine,度值=21)、甲硫氨酸(Methionine,度值=9)、蘇氨酸(Threonine,度值=4)。

表2 龜板治療骨質疏松性骨折的核心靶點

2.4 GO.BP富集分析

GO.BP富集分析共獲得802個結果,主要涉及破骨分化的調節、氧化應激反應、糖皮質激素反應、NF-κB信號的正向調控、雌激素反應、凋亡信號通路的調控等。此外,利用Cytoscape 3.7.2進行交集靶點的GO.BP富集分析并篩選與OF密切相關的結果,主要涉及調節炎癥反應、激素代謝及細胞周期等生物過程。

2.5 KEGG分析

使用R軟件對34個靶點基因進行KEGG分析,共得到67個結果,主要涉及與破骨分化、炎癥反應、激素代謝密切相關的通路。篩選得到相關信號通路共有22條,詳見表3。

表3 富集的信號通路

2.6 Micro-CT及HE染色檢測龜板對OF模型大鼠骨缺損愈合的影響

如圖1所示,micro-CT結果提示龜板可有效治療大鼠骨質疏松性椎體骨折骨缺損,HE染色結果顯示龜板干預4周后可有更多骨形成,促進OF大鼠椎體骨折骨缺損愈合。

圖1 龜板干預4周后micro-CT和HE染色結果

2.7 CCK8檢測龜板對HPBMs增殖的影響

通過CCK8法檢測發現,龜板水提液濃度在不超過10 μg/mL的情況下對HPBMs無細胞毒性,見圖2。

圖2 CCK8 檢測結果

2.8 TRAP染色鑒定龜板對HPBMs破骨分化的影響

在不影響HPBMs增殖的相應濃度龜板水提液干預下,發現隨著龜板水提液濃度的增加,成熟破骨細胞的數量明顯減少(圖3),差異具有明顯的統計學意義(P<0.000 1),這證明龜板能夠抑制RANKL誘導的HPBMs破骨分化。

圖3 TRAP染色分析及量化

3 討論

3.1 活性成分、靶標與PPI網絡分析

通過對龜板-活性成分-靶標-骨質疏松性骨折網絡圖進行分析,發現龜板6個活性成分分別調控34個靶點影響其對骨質疏松性骨折的治療機制。如血漿苯丙氨酸(Phenylalanine)濃度升高可能會對骨骼狀況有不利影響,降低骨強度,增加骨折的風險[14]。蘇氨酸(Threonine)是AKT(絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶)的蛋白底物,活化的AKT磷酸化蘇氨酸等多種底物參與調節成骨、破骨細胞信號轉導中發揮重要作用的PI3K/AKT通路,影響成骨、破骨細胞的增殖、分化及凋亡,進而影響骨密度[15]。碳酸鈣等礦物元素是機體骨代謝平衡的重要底物,可增加骨鈣含量和骨密度,對OF有較好的防治作用[16]。

經PPI網絡篩選后得到度值位列前三的作用靶點為FOS、TNF、BDNF,推測它們可能在龜板治療OF過程中起到關鍵作用。FOS是c-fos基因轉錄產物編碼的蛋白,在調控細胞分裂、增殖、分化、凋亡等方面具有重要作用[17]。FOS與破骨細胞關系密切,FOS表達受抑制時破骨細胞數量隨之減少[18]。此外,FOS可通過影響RANKL-RANK介導的破骨細胞生成信號傳導途徑,抑制破骨細胞生成[19]。因此,FOS對調節骨折愈合骨形成和骨吸收起著重要作用[20]。TNF與炎癥反應密切相關,可誘導M-CSF的表達,NF-κB因子可被其激活進而啟動RANKL誘導的破骨細胞形成過程,增強骨吸收[21]。BDNF(腦源性神經營養因子)與骨的發育有著密切的聯系,BDNF能促進破骨細胞增殖分化[22]。另外,BDNF和IGF-1具有協同作用,它們共同調節ERK/p38 MAPK通路活性,促進軟骨細胞增殖和分化[23]。同時,有研究顯示BDNF基因可能通過MAPK通路調控成骨分化[24]。

3.2 GO和KEGG分析

GO分析結果所反映的內容類似于PPI網絡規律,多涉及炎癥反應、激素代謝和細胞周期(如破骨細胞分化)的調節。而KEGG分析結果反映的內容也印證了PPI網絡拓撲學分析及GO分析結果所展現的規律。例如,TNF信號通路的相關研究表明,炎性因子TNF-α可促進RANKL表達,誘導破骨細胞形成[21]。MAPK信號通路可通過促進骨保護素(OPG)表達[25],進而與RANK競爭性結合RANKL,最終導致破骨細胞的凋亡[26];Estrogen(雌激素)信號通路可以協同Wnt等多條信號通路共同調控成骨細胞和破骨細胞的增殖、分化和凋亡[27]。

3.3 體內外實驗分析

近年來對龜板抗OF的研究越來越多,針對其起效機制的研究也主要集中于促進BMSCs成骨分化方面[5],對于龜板影響破骨分化的機制鮮有報道。而本文通過網絡藥理學研究結果發現,對破骨分化的調節可能是龜板抗骨質疏松性骨折的重要機制。為了驗證網絡藥理學研究結果的可靠性,本研究開展了動物實驗,證實龜板可有效治療OF模型大鼠的骨缺損,并且通過體外實驗首次探究了龜板干預下的OF患者HPBMs表型,發現龜板能顯著抑制HPBMs破骨分化。

綜上所述,本研究結果提示龜板可能通過多種化合物、靶點和通路調節炎癥反應、激素代謝及細胞周期來治療OF,其中抑制破骨分化可能是龜板抗OF的重要機制。

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