?

腦缺血損傷后Ca2+超載引起神經細胞凋亡的機制

2013-02-19 23:32閆曉英姜亞磊孟天嬌綜述玲審校
吉林醫藥學院學報 2013年4期
關鍵詞:內質網神經細胞蛋白酶

閆曉英,姜亞磊,狄 烊,孟天嬌綜述,金 宏,齊 玲審校

(吉林醫藥學院:1.2010級臨床本科班,2.實驗中心,3.病理教研室,吉林 吉林 132013)

·綜 述·

腦缺血損傷后Ca2+超載引起神經細胞凋亡的機制

ThemechanismofCa2+overloadinducedneuronapoptosisaftercerebralischemiainjury

閆曉英1,姜亞磊1,狄 烊1,孟天嬌1綜述,金 宏2,齊 玲3*審校

(吉林醫藥學院:1.2010級臨床本科班,2.實驗中心,3.病理教研室,吉林 吉林 132013)

腦缺血是神經系統的常見病,缺血后會發生再灌注損傷,而神經細胞內Ca2+超載是導致細胞凋亡最主要的因素。Ca2+超載引起神經細胞凋亡的機制中線粒體途徑、內質網途徑和核酸內切酶途徑最為重要,本文就這三方面進行綜述。

腦缺血損傷;Ca2+超載;神經細胞;凋亡

在這一途徑中,bcl-2家族、活性氧(reactive oxygen species,ROS)等會影響凋亡的發生。bcl-2家族中bcl-2、bcl-xl等抑制凋亡,而bax、bad、bak、bik和bcl-xs等促進凋亡。bcl-2主要分布在線粒體外膜、細胞核及內質網[5]。bcl-2家族對線粒體的調控作用主要體現在對MPTP形成的影響。目前認為MPTP的開放是引起細胞凋亡的直接原因,因此bcl-2家族對線粒體正常生理功能的維持是十分重要的。此外,ROS也可影響線粒體。研究表明,線粒體是ROS的主要來源和促凋亡作用靶點,少量ROS可能誘導MPTP開放,促進線粒體產生ROS,所以ROS升高既是MPTP開放的原因也是結果,它們組成了一個大的環路,導致胞內Ca2+重新分布。另外,ROS通過影響電壓依賴性Ca2+通道、非特異性細胞膜Ca2+通透性變化和Na+-Ca2+交換、調節的產生從而影響Ca2+從內質網釋放入線粒體。細胞內Ca2+升高可以激活其他酶進一步增加氧自由基的水平,因此ROS可以間接產生更多的氧化物進一步促進線粒體內氧化水平升高。一些文獻表明,線粒體途徑中與神經細胞凋亡有關的因素除了Cyt c、Smac、IAP、Apaf-1及caspases之外,絲氨酸蛋白酶/線粒體絲氨酸蛋白酶抗原(High temperature requirement protein A 2,HtrA2/Omi)和核酸內切酶(endonuclease G,Endo G)也很重要[6]。HtrA2通過可以抑制IAP和增加caspases活性,或者取決于它的絲氨酸蛋白酶活性和caspases依賴[7-8]。Endo G是一種由線粒體編碼的酶,它可以配合核酸外切酶對DNA進行破壞,最終引起細胞凋亡[9]。如果將bcl-2基因導入神經細胞,可以減小梗死灶的面積[10];給藥干擾bax/bcl-2的比率也可以減輕細胞凋亡[11]。因而,維持bcl-2家族蛋白的平衡可以降低神經細胞的凋亡程度。因此,抑制這些因素會降低細胞的凋亡,繼而減輕腦缺血損傷。

綜上所述,Ca2+超載可以通過線粒體途徑引起神經細胞凋亡,但其影響因素很多,如果能研究出避免或減少這些影響因素的藥物,保護線粒體,最終可以減輕腦缺血損傷的發生。

2 Ca2+超載引起神經細胞凋亡的內質網途徑

Ca2+超載引起神經細胞凋亡的機制中除了線粒體途徑,還有內質網途徑。內質網對于維持細胞內Ca2+平衡也很重要。它主要是通過應激來調節細胞凋亡。在凋亡過程中,內質網途徑與線粒體途徑相似,也和bc1-2家族成員及caspases關系密切,但是它又有自己特殊的一面。

細胞內Ca2+超載導致內質網中Ca2+失衡繼而引起內質網應激的出現,包括非折疊蛋白反應(unfoiled protein reaction,UPR)和內質網超負荷反應[12]。UPR是內質網介導細胞凋亡研究較多的兩個機制之一[13]。它的啟動在早期是自我保護作用,這使大部分蛋白質合成停滯,減輕內質網負荷;加速內質網伴侶基因、蛋白質表達,如Bip/Crp78、鈣聯蛋白(Calnexin)和Grp94等協助蛋白質折疊;發生內質網相關降解,清除不能正確折疊的蛋白質等[14-16],從而積極重建細胞內穩態。Irels、PERK和ATF6是這一過程中重要的酶類,Irels與內質網應激之后信號調整及抑制蛋白翻譯相關,PERK可以使所有的蛋白質合成下調,ATF6引起內質網應激元件基因啟動子區域激活CHOP等基因。CHOP可以編碼DNA損傷蛋白,對DNA直接造成損傷,引起細胞凋亡[17];還可以與其家族中的其他轉錄因子結合,抑制基因的轉錄活性,使細胞停滯在G1/S期,使細胞生長抑制而進入凋亡狀態。Paschen等[18]研究發現在腦缺血損傷過程中CHOP mRNA表達明顯增高。Tajivis等[19]研究也指出CHOP對腦缺血神經細胞凋亡有調控作用。從目前對CHOP的研究來看,它上游的誘導因子已經清楚,但是受其控制的下游分子、影響CHOP表達的因素及它如何參與細胞凋亡通路的調節還不是很清楚。

內質網超負荷反應以激活轉錄因子NF-κB為主要特點,啟動多種前炎性蛋白,包括誘導型一氧化氮合酶(iNOS)、環氧化酶(COX-2)、基質金屬蛋白酶9(MMP-9)和細胞粘附分子等[2--23]的轉錄表達,它們參與腦缺血后的神經損傷、血腦屏障功能的破壞及炎癥反應,由此對凋亡進行調控。NF-κB的激活可以調節細胞內的氧化還原狀態[24]。Ca2+超載與氧化應激就有密不可分的關系,由此可以猜測內質網超負荷反應和細胞內氧化應激有一定關系。

3 Ca2+超載引起神經細胞凋亡的核酸內切酶途徑

DNA斷裂是凋亡的標志,這一過程離不開Endo G。Tominaga[25]認為,缺血導致細胞內Ca2+濃度升高,升高的Ca2+首先出現在核內,從而激活核酸內切酶引起凋亡。腦缺血后神經細胞發生凋亡時,染色質DNA降解成為約180~200 bp亞單位或其倍數的DNA片段[26]。核酸內切酶降解DNA過程與基因表達有關。文獻報道,bcl-2基因家族、ced家族、p53及c-fos、c-jun等原癌基因都對凋亡過程有一定的調控作用[27-28]。上述基因編碼的細胞蛋白酶在細胞凋亡時被激活,使caspases激活,再進一步裂解脫氧核糖核酸酶(caspase-activated deoxyribonuclease,CAD)的抑制物ICAD(對應人DFF45),ICAD降解而使CAD激活,DNA斷裂,最終導致細胞凋亡[29]。Chen等[30]發現凋亡過程中的DNA降解是多個核酸內切酶共同作用的結果,所以深入研究核酸內切酶的作用機制將對控制DNA切除修復途徑而逆轉DNA的損失起到重要的作用。

4 小 結

總之,腦缺血后Ca2+超載引起神經細胞凋亡的機制是多方面的,它可以由多個信號傳導通路同時進行的,同時可能在各個通路之間會交叉,所以治療腦缺血損傷時要注意。對腦缺血機制的研究可以對臨床腦缺血的防治起到前瞻性作用,有利于腦缺血損傷的預防及腦缺血疾病的治療。

[1] Halestrap A P,Clarke S J,Javadov S A.Mitochondrial permeability transition pore opening during myocardial reperfusion—a target for cardioprotection[J].Cardiovasc Res,2004,61(3):372-385.

[2] Du Chunying,Fang Min,Li Yucheng,et al.Smac,a mitochondrial protein that promotes cytochrome c-dependent caspase activation by eliminating IAP inhibition[J].Cell,2000,102(1):33-42.

[3] Li Peng,Nijhawan D,Budihardjo I,et al.Cytochrome c and dATP-dependent formation of Apaf-1/caspase-9 complex initiates an apoptotic protease cascade[J].Cell,1997,91(4):479-489.

[4] Moldovan L,Moldovan N I.Oxygen free radicals and redox biology of organelles[J].Histochem Cell Biol,2004,122(4):395-412.

[5] 項永生,徐 昆.凋亡與腦缺血損傷[J].暨南大學學報:自然科學與醫學版,2000,21(2):126-130.

[6] Ravagnan L,Roumier T,Kroemer G.Mitochondria,the Killer Organelles and their Weapons[J].J Cell Physiol,2002,192(2):131-137.

[7] Heqde R,Srinivasula S M,Zhang ZhiJia,et al.Identification of Omi/HtrA2 as a mitochondrial apoptotic serine protease that disrupts inhibitor of apoptosis protein-caspase interaction[J].Biol Chem,2002,277(1):432-438.

[8] Suzuki Y,Imai Y,Nakayama H,et al.A serine protease,HtrA2,is released from the mitochondria and interacts with XIAP,inducing cell death[J].Mol Cell,2001,8(3):613-621.

[9] Widlak P,Li L Y,Wang Xiaodong,et al.Action of recombinant human apoptotic endonuclease G on naked DNA and chromatin substrates:cooperation with exonuclease and DNase I[J].Biol Chem,2001,276(51):48404-48409.

[10] Linnik M D,Zanhos P,Geschwind M D,et al.Expression of bcl-2 from a defective herpes simplex virus-1 vector limits neuronal death in focal cerebral ischemia[J].Stoke,1995,26(9):1670-1674.

[11] Niwa M,Hara A,Iwai T,et al.Expression of Bax and Bcl-2 protein in the gerbil hippocampus following transient forebrain ischemia and its modification by phencyclidine[J].Neurol Res,1997,19(6):629-633.

[12] 楊 田.淺析內質網與細胞凋亡[J].高等函授學報:自然科學版,2007,20(1):40-42.

[13] Milhavet O,Martindale J L,Camandolas,et al.Involvement of Gadd153 in the pathogenic action of presenilin-1 mutations[J].J Neurochem,2002,83(3):673-681.

[14] Ma Yanjun,Hendershot L M.Herp is dually regulated by both the endoplasmic reticulum stress-specific branch of the unfolded protein response and a branch that is shared with other cellular stress pathways[J].J Biol Chem,2004,279(14):13792-13799.

[15] Zong Weixing,LI Chi,Hatzivassiliou G,et al.Bax and Bak can localize to the endoplasmic reticulum to initiate apoptosis[J].J Cell Biol,2003,162(1):59-69.

[16] Vázquez-Martínez O,Caedo-Merino R,Díaz-Muoz M,et al.Biochemical characterization,distribution and phylogenetic analysis of Drosophila melanogaster ryanodine and IP3 receptors,and thapsigargin-sensitive Ca2+ATPase[J].J Cell Sci,2003,116(12):2483-2494.

[17] Jousse C,Bruhat A,Carraro V,et al.Inhibition of CHOP translation by a peptide encoded by an open reading frame localized in the chop 5′UTR[J].Nucleic Acids Res,2001,29(21):4341-4351.

[18] Tajiri S,Oyadomari S,Yano S,et al.Ischemia-induced neuronal Cell death is mediated by the endoplasmic reticulum stress pathway involving CHOP[J].Cell Death Differ,2004,11(4):403-415.

[19] Hayashi T,SaitoA,Okuno S,et al.Damage to the endoplasmic reticulum and activation of apoptotic machinery by oxidative stress in ischemic neurons[J].Cereb Blood Flow Metab,2005,25(1):41-53.

[20] Nagayama M,Niwa K,Nagayema T,et al.The cyclooxygenase-2 inhibitor NS-398 ameliorates ischemic brain injury in wild-type mice but not in mice with deletion of the inducible nitric oxide synthase gene[J].J Cereb Blood Flow Metab,1999,19(11):1231-1239.

[21] Koistinaho J,Koponen S,Chan P H.Expression of cyclooxygenase-2 mRNA after global ischemia is regulated by AMPA receptors and glucocorticoids[J].Stroke,1999,30(9):1900-1906.

[22] Gasche Y,Fujimura M,Morita-Fujimura Y,et al.Early appearance of activated matrix metalloproteinase-9 after focal cerebral ischemia in mice:a possible role in blood-brain barrier dysfunction[J].J Cereb Blood Flow Metab,1999,19(9):1020-1028.

[23] Morita-fujimure Y,Morita-fujimure M,Gasche Y,et al.Overexpression of copper and zinc superoxide dismutase in transgenic mice prevents the induction and activation of matrix metalloproteinases after cold injury-induced brain trauma[J].J Cereb Blood Flow Metab,2000,20(1):130-138.

[24] Dalton T P,Shertzer H G,Puga A.Regulation of gene expression by reaction oxygen[J].Annu Rev Pharmacol Toxicol,1999,39:67-101.

[25] Tominaga T,Kure S,Narisawa k,et al.Endonuclease activation following focal ischemic injury in the rat brain[J].Brain Res,1993,608(1):21-26.

[26] 孫運娟.腦缺血與神經細胞凋亡[J].臨床薈萃,1999,14(3):138-140.

[27] Adams J M,Cory S.The Bcl-2 protein family:arbiters of cell survival[J].Science,1998,281(5381):1322-1326.

[28] Beijersberqen R L,Bernards R.Cell cycle regulation by the retinoblastoma family of growth inhibitory proteins[J].Biochim Biophys Acta,1996,1287(2/3):103-120.

[29] 畢曉瑩,丁素菊.腦缺血后核酸內切酶對細胞凋亡的作用[J].國外醫學:腦血管疾病分冊,2000,8(2):73-74.

[30] Chen Jun,Jin Kunlin,Chen Minzhi,et al.Early detection of DNA strand breaks in the brain after transient focal ischemia:implications for the role of DNA damage in apoptosis and neuronal cell death[J].Neuro chem,1997,69(1):232-245.

1673-2995(2013)04-0277-03

R363.1

A

1Ca2+超載引起神經細胞凋亡的線粒體途徑

吉林省教育廳項目(2012330);吉林醫藥學院大學生科研基金項目(201206).

閆曉英(1991-),女(漢族),在讀本科.

齊 玲(1974-),女(漢族),副教授,博士.

2013-05-06)

腦缺血損傷是指腦缺血再恢復血流后所引起的腦組織損傷,即腦缺血-再灌注損傷。缺血-再灌注損傷所導致的神經細胞Ca2+超載是引起神經細胞凋亡的最主要因素。腦缺血后Ca2+進入細胞內增多,清除減少,細胞內出現Ca2+超載,繼而觸發了一系列反應從而導致細胞發生凋亡。Ca2+超載引起神經細胞凋亡主要通過線粒體途徑、內質網途徑和核酸內切酶途徑。

神經細胞凋亡的機制十分復雜,Ca2+超載通過線粒體途徑使凋亡因子釋放到胞質中進而啟動細胞凋亡。當細胞內Ca2+超載時,線粒體膜的通透性會隨之改變,使得線粒體通透孔(mitochondrion permeability transition pore,MPTP)開放[1]。MPTP的開放允許大分子物質通過,這樣就導致前凋亡蛋白如細胞色素c(cytochrome C,Cyt c)、黃素蛋白凋亡誘導因子、核酸內切酶及Smac(the second mitochondrial-derived activator of caspase)蛋白等一起釋放到細胞質中。Smac是一種可以通過與凋亡抑制蛋白(inhibitors of apoptosis protein,IAP)結合解除其抑制作用,并協助凋亡促進因子(apoptosis protease activating factor-1,Apaf1)促進半胱氨酸蛋白酶(cysteine containing aspirate specific protease,caspase)激活的蛋白質[2]。因此,一方面Cytc與胞質中Apaf-1和caspase-9相互作用形成凋亡小體,激活caspase-9,活化的caspase-9進一步激活caspases,引起凋亡;另一方面,釋放到胞質中的Smac通過解除IAP的凋亡抑制促進caspases的級聯效應,導致細胞凋亡[3-4]。

猜你喜歡
內質網神經細胞蛋白酶
沉默RND3表達對氧糖缺失/復氧復糖損傷海馬神經細胞炎癥反應和細胞凋亡的影響
右美托咪定抑制大鼠創傷性腦損傷后神經細胞凋亡
憤怒誘導大鼠肝損傷中內質網應激相關蛋白的表達
公告
關于麥芽中蛋白酶的分解研究
思鄉與蛋白酶
纖維素酶及其與蛋白酶和脂肪酶的復配在洗滌劑中的應用研究
長鏈非編碼RNA母系印跡基因3(MEG3)通過p53促進缺血缺氧神經細胞損傷
莫諾苷抑制過氧化氫誘導的SH-SY5Y神經細胞凋亡
菠蘿蛋白酶酶解小麥降低過敏性
91香蕉高清国产线观看免费-97夜夜澡人人爽人人喊a-99久久久无码国产精品9-国产亚洲日韩欧美综合