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SiRNA 靶向RKIP促進肝星狀細胞在細胞外基質上的黏附

2014-09-12 09:59馬俊驥姜慧卿
中國老年學雜志 2014年11期
關鍵詞:腺病毒胞外基質膠原

馬俊驥 趙 慧 姜慧卿

(河北醫科大學第二醫院消化內科 河北省消化病實驗室 河北省消化病研究所,河北 石家莊 050000)

肝纖維化慢性肝損傷發展為肝硬化的共同病理改變,表現為肝臟細胞外基質(ECM)的過度合成與異常沉積〔1〕。肝星狀細胞(HSC)是慢性肝損傷后合成ECM并參與纖維化進程最主要的細胞成分,HSC的激活是肝纖維化發生的中心環節〔2, 3〕。前期的研究發現,Raf激酶抑制蛋白(RKIP)在肝臟纖維化組織表達下降,HSC活化后RKIP表達降低,RKIP過表達可以促進HSC遷移〔4, 5〕。RKIP低表達與HSC在細胞外基質上黏附的關系目前尚不清楚。本研究采用siRNA靶向介導RKIP基因,研究RKIP低表達對HSC在細胞外基質上黏附的影響。

1 材料和方法

1.1材料 HSC細胞株人LX-2經美國Friedman教授授權由美國Mount Sinai醫科大學惠贈。RKIP-RNAi-AD為靶向RKIP基因并表達綠色熒光蛋白 (GFP)的重組腺病毒載體,攜帶的靶向序列為5′-CGAGCAGCTGTCTGGGAAGTA-3′,NC-RNAi-GFP-AD為僅表達GFP的腺病毒對照。

1.2方法

1.2.1細胞培養和病毒感染分組 將保存于液氮中的LX-2細胞株取出,立即37℃水浴復蘇,于超凈工作臺中加2 ml的DMEM培養基,1 200 r/min離心5 min,以10% FBS、100 IU/ml青霉素、100 μg/ml鏈霉素、4 mmol/L谷氨酰胺及1 mol/L HEPES的DMEM培養基稀釋成1×106/ml的濃度接種于75 cm2培養瓶中,37 ℃、5% CO2條件的培養箱中培養。當生長至致密單層時,用0.25%胰蛋白酶消化,以1∶4傳代,24 h換液1次,72 h再次培養傳代。病毒感染HSC的分組: RKIP-RNAi-AD組,在HSC內靶向敲除RKIP基因并表達GFP基因;NC-RNAi-GFP-AD對照組,在HSC內表達外源GFP基因。將LX-2細胞以每孔3 000個接種于96孔板中,但細胞生長至90%左右時,RKIP-RNAi-AD重組腺病毒或者NC-RNAi-GFP-AD腺病毒按MOI值分別為5、10、15、20干預細胞,每種MOI設10個復孔,分別于12、24、48 h于熒光顯微鏡下觀察細胞狀態,并計數熒光數。

1.2.2Western 印跡 取腺病毒干預的LX-2細胞,棄去上清,冰冷的PBS漂洗兩遍,加入1 ml PBS液,細胞刮刀將細胞刮下,移入Eppendorf管中,4℃ 3 000 r/min離心10 min。棄上清,加入150 μl改良的RIPA裂解緩沖液,微型混合器上充分振蕩,冰上靜置裂解30 min,4 ℃10 000 r/min離心10 min,取上清用Braford法測總蛋白含量。按每孔80 μg計算樣品的上樣量,將蛋白樣品與上樣緩沖液以4∶1的比例混勻,煮沸5 min加在上樣孔中,進行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE),分離膠的濃度為12%。用0.22 μm PVDF膜進行冰浴轉膜,取出膜用5%脫脂奶粉在室溫下封閉4 h。4 ℃下一抗封閉過夜。二抗室溫封閉2 h。在暗室中滴加ECL試劑反應3 min,曝光、顯影和定影。顯影條帶經香港基因公司G∶BOX凝膠成像分析儀采集后,用美國NIH ImageJ 1.38軟件進行定量分析。RKIP以GAPDH作為內參照,結果以目的條帶和內參照的光密度百分比來表示。

1.2.3黏附試驗 (1) matrigel的配制:用DMEM (無Ca2+、Mg2+)稀釋為50 μg/ml備用。(2) I型膠原的配制:用無菌10×PBS、dH2O和1N NaOH稀釋成50 μg/ml。(3) 纖維連接蛋白:用DMEM (Ca2+、Mg2+)稀釋為50 μg/ml備用。(4) 包被孔板:在超凈工作臺上,取配置好的基質膠以200 μl/孔均勻平鋪于24板內,每組設3個復孔,置于4℃冰箱中過夜。之后用無菌PBS洗去多余的基質膠,每孔加入0.5% BSA 200 μl室溫孵育30 min,無菌PBS漂洗3遍備用。(5) 將RKIP-RNAi-AD腺病毒或者NC-RNAi-GFP-AD腺病毒感染的細胞從培養箱中取出,棄上清,以0.25%胰蛋白酶消化至細胞松散后,棄去消化液,加入3 ml 0%DMEM培養基,制成單細胞懸液計數后稀釋成1×105/ml的濃度。將細胞懸液接種在包被好的24孔板內,每孔接種1 ml,置于37 ℃、5% CO2培養箱中孵育1 h后取出培養板,吸去上清,無菌PBS洗去未黏附的細胞,4%多聚甲醛固定30 min,PBS漂洗后,結晶紫染色15 min,在200倍顯微鏡下隨機選取12個不同視野計數細胞數,并采集圖片。

2 結 果

2.1SiRNA靶向敲除RKIP基因后Western 印跡鑒定結果 選擇MOI值為5的RKIP-RNAi-AD感染LX-2后48 h,熒光顯微鏡下觀察含熒光的細胞數,計算細胞感染率80%~90%。與NC-RNAi-GFP-AD組相比,RKIP-RNAi-AD組目的蛋白RKIP表達明顯下降(0.29±0.06 vs 0.73±0.14,P<0.05)。 見圖1。

2.2RKIP減少致HSC在matrigel上的黏附增多 RKIP-RNAi-AD組和對照NC-RNAi-GFP-AD組相比,在matrigel上黏附的LX-2細胞數明顯增多(170±25 vs 66±12,P<0.05)。見圖2。

2.3RKIP減少致HSC在I型膠原上的黏附增多 與NC-RNAi-GFP-AD組相比,RKIP-RNAi-AD感染的LX-2細胞在I型膠原上黏附的細胞數明顯增多(200±25 vs 82±13,P<0.05)。見圖3。

2.4RKIP減少致HSC在纖維連接蛋白上的黏附增多 與NC-RNAi-GFP-AD組相比,RKIP-RNAi-AD感染的LX-2細胞在纖維連接蛋白上黏附的細胞數明顯增多(276±28 vs 96±17,P<0.05)。見圖4。

圖1 RKIP的RNAi腺病毒感染HSC后的Western 印跡結果

圖2 HSC與matrigel基質膠的黏附

圖3 HSC與I型膠原的黏附

圖4 HSC與纖維連接蛋白的黏附

3 討 論

病毒、酒精、糖尿病、肥胖、免疫性疾病、藥物和膽汁淤積等損傷都能對肝臟產生慢性刺激,導致肝臟不斷地再生進而引起實質結構和血管構成(門脈系統和肝靜脈系統)的紊亂,最后可以形成肝結節樣結構即肝硬化,血管構成紊亂可以導致門脈高壓的形成〔6〕。如果肝臟維持正常承載量,則肝硬化患者能夠保證一段時間正常肝功能(代償期);但在很多時候肝臟功能最終出現失代償,甚至需要肝臟移植才能維持生存。因此,肝纖維化作為各種慢性肝病進展過程中一個共同的病理環節,深入研究其發生機制至關重要。

我們前期利用膽總管結扎的肝纖維化動物模型發現RKIP在肝臟纖維化組織表達下降,同時伴隨Raf/MEK/ERK信號通路活化〔4〕。原代HSC的體外培養證實隨著HSC在體外活化,RKIP的表達也明顯降低,進一步研究證實RKIP抑制HSC細胞增殖,但卻促進其遷移,用RKIP抑制劑Locostatin可以抑制HSC遷移〔5〕。HSC在正常肝臟占肝臟細胞數量的5%~10%,定居在Disse間隙,病理因素刺激后HSC活化可以遷移黏附在受損傷的組織,參與損傷修復。長期的慢性刺激可以導致HSC過度活化并伴隨ECM過度沉積,導致肝纖維化、肝硬化和門脈高壓的產生。

ECM主要包括膠原、非膠原糖蛋白和蛋白多糖。肝纖維化的病理改變即是肝臟內ECM異常沉積〔7〕。在肝纖維化形成過程中,膠原成分中最密切的是I型的沉積,隨著肝纖維化的發生,I型膠原從基因表達和蛋白水平上都明顯增加〔8〕。已發現非膠原糖蛋白如纖維連接蛋白、層黏連蛋白、腱生蛋白、分層蛋白、巢蛋白和透明質酸表達增加。肝竇狀腺內皮細胞和HSCs擁有共同的胚胎起源,由肝竇狀腺內皮細胞生成的纖維連接蛋白薄片早期變化能夠激活HSCs〔9〕。一些蛋白多糖成分如肝素、皮膚素、硫酸軟骨素、基底膜蛋白多糖、核心蛋白多糖等也過度沉積。

本研究結果顯示RKIP低表達可以明顯增加HSC在細胞外基質matrigel基質膠上黏附的細胞數,同時也可以增加HSC在Ⅰ型膠原和纖維連接蛋白上的黏附。反映了在病理狀態下RKIP在HSC中的降低與其黏附功能的改變密切相關,這可以保證HSC對損傷肝臟的修復,但同時會導致肝臟纖維過程的進展。RKIP低表達與肝纖維化的關系可能是其促進了HSC在I型膠原和纖維連接蛋白上的黏附,進而增加HSC在ECM上的黏附。結合前期的研究也有可能是因為RKIP低表達更促進了Raf-1/MEK/ERK1和NF-κB等信號通路的活化。RKIP的分子量為23 kDa,具有與磷脂酰乙醇胺結合的特性,RKIP可以干擾Raf-1的激活,進而負向調節Raf/MEK/ERK信號通路,還可以通過G蛋白耦聯受體(GPCR)介導的信號通路及NF-κB信號通路發揮其調節作用〔5~10〕。

綜上所述,在肝纖維化形成過程中,HSC活化后RKIP表達下降可以促進HSC在細胞外基質上的黏附功能,此與肝臟組織的修復功能有關,但卻加重了肝纖維化的進程。

4 參考文獻

1Friedman SL. Mechanisms of hepatic fibrogenesis〔J〕.Gastroenterology,2008;134(6):1655-69.

2馬俊驥, 時軍利, 趙 慧, 等. 大鼠原代肝星狀細胞的分離方法研究〔J〕. 河北醫科大學學報,2012; 33(1): 1-3, 封3.

3Olsen AL, Bloomer SA,Chan EP,etal.Hepatic stellate cells require a stiff environment for myofibroblastic differentiation〔J〕.Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2011;301(1): G110-8.

4馬俊驥, 姜慧卿, 李芳芳, 等. RKIP在膽總管結扎肝纖維化大鼠肝臟組織的表達〔J〕. 中國老年學雜志,2008; 28(20): 1998-2000.

5Ma J,Li F,Liu L,etal. Raf kinase inhibitor protein inhibits cell proliferation but promotes cell migration in rat hepatic stellate cells〔J〕.Liver Int,2009; 29(4): 567-74.

6Wells RG. The role of matrix stiffness in regulating cell behavior〔J〕.Hepatology,2008;47(4): 1394-400.

7Tarrats N,Moles A,Morales A,etal. Critical role of tumor necrosis factor receptor 1,but not 2,in hepatic stellate cell proliferation,extracellular matrix remodeling,and liver fibrogenesis〔J〕.Hepatology,2011;54(1): 319-27.

8Dooley S,Ten Dijke P. TGF-β in progression of liver disease〔J〕.Cell Tissue Res,2012;347(1): 245-56.

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10Klysik J,Theroux SJ,Sedivy JM,etal. Signaling crossroads: The function of Raf kinase inhibitory protein in cancer,the central nervous system and reproduction〔J〕.Cell Signal,2008;20(1):1-9.

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