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兩種半纖維素酶在畢赤酵母中的共表達

2017-06-22 09:06楊青張莉張華山熊海容
湖北農業科學 2017年10期
關鍵詞:共表達

楊青++張莉++張華山++熊海容

摘要:基于定向改造的木聚糖酶(DSB)和甘露聚糖酶(ManA),通過不同的整合位點和抗性標記實現這兩種酶在同一宿主GS115中的整合與篩選,獲得了共表達菌株GS115/DSB-ManA。其熱穩定性檢測結果表明,該共表達菌株產出的DSB與ManA均有較高的熱穩定性。重組菌株兩種酶的成功表達為復合酶制劑的研究和生產奠定了基礎。

關鍵詞:木聚糖酶(DSB);甘露聚糖酶ManA;畢赤酵母(Pichia pastoris);共表達

中圖分類號:Q19 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2017)10-1971-02

DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2017.10.043

Co-expression of Two Hemicellulases in Pichia pastoris

YANG Qing1,ZHANG Li1,ZHANG Hua-shan2,XIONG Hai-rong1

(1.College of Life Science,South-central University for Nationalities,Wuhan430074,China;2.Key Laboratory of Fermentation Engineering,Ministry of Education,Hubei University of Technology,Wuhan 430068,China)

Abstract:Based on the directional modification of xylanase(DSB) and mannan(ManA) synthase genes in our laboratory,the co-expression of these two hemicellulases was successfully achieved in a Pichia cell by different integration sites and resistance markers. And the recombinant strain GS115/DSB-ManA was obtained. The thermal stability test showed that the DSB and ManA produced by the co-expressed strain had high thermal stability. The successful expression of the two enzymes of the recombinant strain laid a foundation for the research and production of the complex enzyme preparation.

Key words:xylanase (DSB); mannanase (ManA); Pichia pastoris; co-expression

β-木聚糖酶(EC 3.2.1.8)和β-甘露聚糖酶(EC 3.2.1.78)均屬于半纖維素酶,分別水解半纖維素中的β-1,4-木糖苷鍵和β-1,4-甘露糖苷鍵。木聚糖為半纖維素中最豐富的一類[1],在木聚糖酶的作用下可被降解為國際市場上急需的低聚木糖和木糖。甘露聚糖作為半纖維素第二大組分[2],廣泛存在于木材以及植物的塊莖和種子中。

隨著對半纖維素酶的深入研究,其應用領域也在不斷的擴展,并擁有一個廣泛的工業酶應用市場,包括食品和飼料、咖啡萃取、生物乙醇生產、殺黏菌劑、制藥、紡織、洗滌、造紙、石油、天然氣工業及生物技術等領域[3,4]。工業生產中,不僅需要高活力的酶,還需要酶在酸性環境、堿性環境或高溫條件下保持穩定的酶學特性[5],同時也希望減低生產成本而提高效益。本試驗研究了木聚糖酶與甘露聚糖酶的共表達,實現了這兩種酶在畢赤酵母中的穩定共表達,使工業生產中有效地減少生產成本及相關處理環節。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

1.1.1 菌種與質粒 大腸桿菌Top10細胞、表達載體pAO815hr為中南民族大學生命科學學院實驗室保藏與構建。畢赤酵母GS115和表達載體pPICZαA為中國農業科學院飼料研究所惠贈。

1.1.2 工具酶及試劑限制性內切酶 T4 DNA連接酶等工具酶和DNA Marker購自寶生物工程(大連)有限公司;燕麥木聚糖和角豆膠購自Sigma公司;Tryptone、Yeast Extract購自于Oxoid公司;無氨基酵母氮源(YNB)、D-sorbitol、Agar購自Biosharp公司;其他試劑均為國產或進口分析純。

1.1.3 培養基和抗生素 畢赤酵母抗性選擇平板YPDSZ(含終濃度100 μg/mL Zeocin),畢赤酵母組氨酸缺陷型選擇平板MD,畢赤酵母生長/誘導培養基BMGY/BMMY,大腸桿菌生長培養基LB/LBL,畢赤酵母生長培養基YPD等培養基配方見Invitrogen公司畢赤酵母操作手冊。氨芐青霉素(Ampicillin Sodium Salt)購自Biosharp公司;博來霉素(Zeocin)購自Invitrogen公司。

1.2 方法

1.2.1 木聚糖酶DSB與甘露聚糖酶ManA重組表達質粒的構建及篩選 采用限制性內切酶EcoRⅠ和NotⅠ分別雙酶切木聚糖酶DSB基因和表達載體pAO815hr,連接后轉化,涂布于含有氨芐青霉素的LB固體平板上;同樣用EcoRⅠ和NotⅠ分別雙酶切甘露聚糖酶ManA基因和表達載體pPICZαA,連接后轉化,涂布于含有博來霉素的LB固體平板上。菌落PCR驗證后雙酶切鑒定篩選出陽性克隆菌株DSB-pAO815hr-Top10和ManA-pPICZαA-Top10。

1.2.2 木聚糖酶與甘露聚糖酶共表達重組菌的構建及篩選

1)GS115/pAO815hr-DSB重組菌的構建及篩選。采用SalⅠ線性化重組質粒DSB-pAO815hr,電擊轉化畢赤酵母GS115感受態細胞,挑取100個該共表達重組菌的單菌落使用BMGY/BMMY誘導產酶,使用DNS法[6]檢測酶活力,依據酶活力高低篩選出酶活力較高的重組菌株GS115/pAO815hr-DSB。

2)共表達重組菌GS115/DSB-ManA的構建及篩選。采用SacⅠ線性化重組質粒ManA-pPICZαA,電擊轉化GS115/pAO815hr-DSB感受態細胞[7],按上述方法篩選出共表達重組菌株GS115/DSB-ManA。

1.2.3 GS115/DSB-ManA產甘露聚糖酶與木聚糖酶熱穩定性的檢測 將發酵上清液在不同溫度下準確處理30 min,迅速置于冰上冷卻,分別在DSB最適溫度(75 ℃)與 pH(6.5)下與木聚糖底物反應和在ManA最適溫度(75 ℃)與 pH(6.0)下與角豆膠底物反應,使用分光光度計檢測OD540 nm,以每種酶最高酶活力為100%,計算各酶在其他溫度處理后的相對殘余酶活力,每組試驗均重復3次,取平均值作為最終結果。

1.2.4 SDS-PAGE電泳 發酵結束后,取GS115/DSB-ManA與兩種酶單一表達菌株的上清液進行SDS-PAGE電泳分析,具體操作方法參考《分子克隆實驗指南》第二版。

2 結果與分析

2.1 木聚糖酶(DSB)與甘露聚糖酶(ManA)重組表達質粒的構建

將DSB基因片段連接到pAO815hr上,獲得表達質粒pAO815hr-DSB;將ManA基因片段連接到pPICZαA上,獲得表達質粒pPICZαA-ManA,物理圖譜如圖1所示,雙酶切驗證以上重組質粒構建成功。

2.2 熱穩定性分析

如圖2所示,GS115/DSB-ManA中木聚糖酶在45~70 ℃下處理30 min能夠保持85%以上相對酶活力,但經過70 ℃以上溫度處理后,相對酶活力降低較為明顯;甘露聚糖酶在45~75 ℃下處理30 min后仍能保持90%以上相對酶活力,但經過75 ℃以上溫度處理后,相對酶活力降低較為顯著。

2.3 SDS-PAGE分析

結果(圖3)表明,GS115/DSB-ManA發酵上清液中出現兩條電泳條帶,分別與單一表達DSB和ManA發酵上清液對比。GS115/DSB-ManA能夠同時表達出兩種半纖維素酶蛋白,且產物雜、蛋白的分泌量偏低。GS115/DSB-ManA分泌木聚糖酶蛋白較分泌甘露聚糖酶蛋白量高。

3 討論

目前木聚糖酶與甘露聚糖酶已成功應用于工業農業生產的諸多領域,且通常是木聚糖酶和甘露聚糖酶聯合使用從而達到協同增效。pPIC9K和 pPICZαA質粒同屬于畢赤酵母分泌型表達質粒,本試驗通過不同的整合位點和抗性標記實現了DSB和ManA在同一宿主中的整合與篩選,成功構建了共表達菌株GS115/DSB-ManA,實現了目標酶的共同生產,同時檢測出其分泌的兩種半纖維素酶有較高的熱穩定性,為進一步工業化生產復合酶奠定了基礎。

參考文獻:

[1] 付 正,張華山,曾小英,等.嗜熱真菌木聚糖酶1YNA的表達和定點突變[J].湖北農業科學,2011,50(7):1487-1493.

[2] SCHELLER H V,ULVSKOV P. Hemicelluloses[J].Annual Review of Plant Biology,2010,61:263-289.

[3] SITTIKIJYOTHIN W,TORRES D,GON?覶ALVES M P.Modelling the rheological behaviour of galactomannan aqueous solutions[J].Carbohydrate Polymers,2005,59(3):339-350.

[4] PRAKRAM S C,NEENA P,PRINCE S,et al. Mannanases: Microbial sources, production, properties and potential biotechnological applications[J]. Applied Microbiology and Biotechnology 2012,93:1817-1830.

[5] 張建新,趙丹丹,劉起麗,等.產β-甘露聚糖酶內生菌的篩選及酶學特性分析[J].微生物學通報,2011,38(8):1172-1178.

[6] 余紅英,孫遠明,王煒軍,等.枯草芽孢桿菌SA-22 β-甘露聚糖酶的純化及其特性[J].生物工程學報,2003,19(3):327-331.

[7] WANG Y W,SHI P J,LUO H Y,et al. Over-expression and characterization of an alkali-tolerant endo-β-1,4-mannanase from Penicilliumfreii F63[J].Journal of Bioscience and Bioengineering,2012,113(6):710-714.

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