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RIP1介導的壞死性凋亡通過NF-κB通路調節腎小管上皮細胞炎癥反應*

2020-07-06 03:55方曉旭杜春陽史永紅任韞卓段惠軍
中國病理生理雜志 2020年6期
關鍵詞:壞死性腎小管質粒

方曉旭,杜春陽,宋 珊,史永紅,任韞卓,段惠軍

(河北醫科大學病理教研室,河北石家莊050017)

慢性腎臟疾?。╟hronic kidney disease,CKD)的發生率持續升高,并且嚴重影響患者的生活質量,腎臟持續的炎癥反應與CKD的發生發展密切相關[1]。壞死性凋亡(necroptosis)是細胞程序性死亡的一種新形式[2],同時具有壞死和凋亡的特征,它是由受體相互作用蛋白(receptor-interacting protein,RIP)調控的非caspase依賴性的細胞死亡模式,其中,RIP1在壞死性凋亡信號轉導中起到了關鍵作用。在疾病等機體異常狀態下,caspase-8生成顯著增多,啟動了機體的凋亡信號通路。Z-VAD-FMK是一種泛caspase抑制劑[3],它可以完全抑制RIP1介導的procaspase-8蛋白水解活化,使機體凋亡信號通路被阻斷,進而使凋亡轉化為壞死性凋亡。不同的刺激與壞死性凋亡有關,最具特征的是腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α),TNF-α聯合Z-VAD-FMK(T/Z)是誘導壞死性凋亡的經典模型[4-5]。新近研究發現,壞死性凋亡參與了急性胰腺炎[6]、肝炎[7]及克羅恩病[8]的炎癥反應,但在腎小管上皮細胞中,壞死性凋亡與炎癥關系如何,目前尚不清楚。我們在前期研究中發現,壞死性凋亡抑制劑necrostatin-1(Nec-1)能夠減輕單側輸尿管梗阻小鼠的腎臟炎癥反應[9],提示壞死性凋亡在腎小管細胞的炎癥反應中具有關鍵調控作用,但具體的調控機制還未明確。吡咯烷二硫代氨基甲酸銨(ammonium pyrrolidinedithiocarbamate,PDTC)是一種選擇性核因子κB(nuclear factorκB,NF-κB)抑制劑和抗氧化劑[10-11],可以抑制許多細胞類型中NF-κB的活化,進而抑制NF-κB通路。本研究在前期實驗基礎上,采用T/Z刺激體外培養的腎小管上皮細胞,構建壞死性凋亡的細胞模型;進一步用Nec-1和PDTC干預細胞,深入探討壞死性凋亡對T/Z刺激的腎小管上皮細胞炎癥反應的調控機制。

材料和方法

1 細胞

人腎小管上皮HK-2細胞購自美國標準生物品收藏中心。低糖型DMEM培養基和DMEM/F12培養基1∶1配制,常規培養。分別給予HK-2細胞TNF-α(50 μg/L)、Z-VAD-FMK(50 μmol/L)、Nec-1(50 μmol/L)和PDTC(20 μmol/L)處理,于24 h后收集細胞觀察,重復細胞實驗5次。

2 主要藥品與試劑

TNF-α購自 PeproTech;Z-VAD-FMK和 Nec-1購自MCE;PDTC購自Abcam;RIP1過表達質粒由Addgene公司惠贈;鼠源抗 RIP1、NF-κB p65、p-NF-κB p65、IκB激酶(IκB kinase,IKK)、白細胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)和單核細胞趨化蛋白 1(monocyte chemoattractant protein-1,MCP-1)多克隆抗體購自Abcam;兔源多克隆抗caspase-3抗體購自Cell Signaling Technology;乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)細胞毒性檢測試劑盒購自Promega;Lipofectamine 3000轉染試劑盒和Opti-MEM培養基購自Thermo Fisher;IL-1β和MCP-1 ELISA試劑盒購自武漢六合生物公司;反轉錄試劑盒購自Promega;Real-time PCR SYBR Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒購自TaKaRa。

3 主要方法

3.1 Western blot檢測蛋白水平 細胞用冰冷的PBS洗2遍,然后加入200 μL預冷的RIPA蛋白裂解緩沖液,冰浴30 min,用細胞刮均勻刮起細胞,收集到1.5 mL的EP管內,4℃、12 000 r/min離心25 min,BCA法測定上清液蛋白濃度。按每孔30 μg細胞裂解蛋白上樣,SDS-PAGE分離,將蛋白轉至PVDF膜上;5%脫脂奶粉37℃孵育1 h封閉PVDF膜,加入抗RIP1(1∶1 000)、caspase-3(1∶800)、IKK-α(1∶5 000)、NF-κB p65(1∶900)、p-NF-κB p65(1∶1 000)、IL-1β(1∶1 000)和MCP-1(1∶1 000)抗體,4℃過夜;室溫孵育1 h,洗膜后加入辣根過氧化物酶標記的山羊抗小鼠或山羊抗兔II抗(1∶5 000稀釋),37℃孵育1.5 h;洗膜后加入Pro-light HRP化學發光試劑,Odyssey Fc成像系統顯影,用UVP LabWorks 4.5分析軟件對Western blot條帶進行定量分析。

3.2 乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)細胞毒性檢測 HK-2細胞接種于96孔板,刺激24 h后,收集細胞培養基上清,250×g離心4 min,分別取50 μL上清液于新的96孔板中,在各孔中加入50 μL CytoTox 96室溫避光孵育30min后,再加入50 μL終止液,用酶標儀于490 nm波長處檢測吸光度(A)值,LDH從細胞內的釋放量用細胞壞死百分比表示。

3.3 細胞轉染 構建RIP1過表達質粒,待細胞密度60%~70%進行轉染,準備A、B兩個2 mL的EP管,A管中加入125 μL Opti-MEM培養基和5 μL Lipofectamine 3000 Reagent,B 管 中 加 入 125 μL Opti-MEM培養基、5 μL P3000 Reagent及1 μg RIP1質粒,A、B管混勻,于細胞超凈臺上放置5 min,將混合液加入細胞培養皿中,轉染6 h做后續處理。

3.4 ELISA測定 收集細胞培養基,1 000×g離心25 min,各取50 μL上清于ELISA板中,再在每孔中加入100 μL辣根過氧化物酶標記的檢測抗體,密封條件下,37℃孵育60 min。棄去孔內液體,用洗滌液重復洗5次,再向每孔中加入50 μL底物A、B,37℃避光孵育15 min。在每孔中加入50 μL終止液,在450 nm波長處測定每孔的A值。

3.5 real-time PCR TRIzol法提取細胞總RNA后按試劑盒步驟反轉錄為cDNA。實時定量PCR采用20 μL反應體系:SYBR Premix Ex Taq Ⅱ 10 μL,ROX Reference Dye 0.4 μL,cDNA 2 μL,上、下游引物各0.8 μL,ddH2O 6 μL。反應條件為:95℃ 30 s;95℃5 s,55℃ 30 s,72℃ 30 s,共40個循環。使用3個復孔的Ct值取平均值,采用公式2-ΔΔCt計算mRNA表達的相對倍數變化。

4 統計學處理

用SPSS 21.0軟件進行統計學分析,數據均采用均數±標準差(mean±SD)表示,組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),組間兩兩比較采用SNK-q檢驗,以P<0.05為差異有統計學意義。

結 果

1 T/Z條件下RIP1介導HK-2細胞壞死性凋亡

Western blot結果顯示,T組HK-2細胞壞死性凋亡相關指標RIP1和凋亡相關指標cleaved caspase-3的蛋白水平均增加,T/Z組RIP1的蛋白水平進一步增加,而cleaved caspase-3的蛋白水平降低(P<0.01),見圖1A。LDH細胞毒性實驗結果顯示,與control組相比,T組HK-2細胞壞死百分比顯著增加(P<0.05),T/Z組細胞壞死百分比進一步增加(P<0.01);與T/Z組相比,再加入Nec-1干預后(T/Z+N組)細胞壞死百分比顯著下降到(P<0.01),見圖1B。上述結果提示T/Z可以誘導HK-2細胞發生壞死性凋亡。

Western blot結果顯示,與control組相比,轉染RIP1過表達質粒(RIP1+)組HK-2細胞中RIP1的蛋白表達水平明顯增高,見圖1C。轉染RIP1過表達質粒后,T/Z條件下(T/Z+RIP1+組)的HK-2細胞壞死百分比進一步增加(P<0.01),見圖1D。上述結果提示RIP1介導了T/Z條件下HK-2細胞的壞死性凋亡。

2 T/Z條件下RIP1介導的壞死性凋亡對HK-2細胞IL-1β和MCP-1蛋白水平的影響

Western blot及ELISA結果顯示,與control組相比,T/Z組HK-2細胞的IL-1β和MCP-1蛋白水平增高;與T/Z組相比,Nec-1干預下調IL-1β和MCP-1的蛋白水平;反之,轉染RIP1過表達質粒明顯上調IL-1β和MCP-1的蛋白水平(P<0.01),見圖2。

3 T/Z條件下RIP1介導的壞死性凋亡對HK-2細胞NF-κB通路的影響

Western blot結果顯示,與control組相比,T/Z組HK-2細胞中NF-κB通路相關蛋白IKK-α和NF-κB p65的水平增高,同時p-NF-κB p65蛋白水平也增高,再給予Nec-1干預則上述蛋白水平降低(P<0.01);與T/Z組相比,轉染RIP1過表達質??擅黠@上調HK-2細胞中上述蛋白的水平(P<0.01),見圖3A。real-time PCR結果顯示,與control組相比,T/Z組HK-2細胞中NF-κB的mRNA表達水平增高,再給予Nec-1干預則NF-κB的mRNA表達水平下降(P<0.01);與T/Z組相比,轉染RIP1過表達質??擅黠@上調HK-2細胞中NF-κB的 mRNA表達水平(P<0.01),見圖3B。這提示在T/Z條件下,RIP1介導的HK-2細胞壞死性凋亡激活了NF-κB通路。

4 T/Z條件下NF-κB通路參與RIP1介導的HK-2細胞炎癥

Western blot結果顯示,與control組相比,T/Z組HK-2細胞中 NF-κB 通路相關蛋白 IKK-α、NF-κB p65、p-NF-κB p65及下游分子IL-1β和MCP-1的水平增高,再給予PDTC干預后(T/Z+P組),上述蛋白水平降低(P<0.01);PDTC和Nec-1聯合干預HK-2細胞后(T/Z+P/N組),上述蛋白水平降低更明顯(P<0.01),見圖4。這提示在T/Z條件下,NF-κB通路可能參與RIP1介導的HK-2細胞炎癥。

討 論

Figure 1.RIP1 mediated necroptosis of HK-2 cells under T/Z condition.A:Western blot was used to determine the protein levels of RIP1 and caspase-3;B:the release rate of LDH under T/Z and T/Z+N conditions;C:Western blot analysis of transfection of RIP1 over-expression plasmid in the HK-2 cells;D:the release rate of LDH in T/Z-treated cells with or without RIP1 over-expression.Mean±SD.n=5.*P<0.05,**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs T group;&&P<0.01 vs T/Z group.圖1 T/Z條件下RIP1介導HK-2細胞壞死性凋亡

Figure 2.The relationship between RIP1-mediated necroptosis of HK-2 cells and inflammation under T/Z condition.A:the levels of IL-1β and MCP-1 in the supernatant were measured by ELISA;B:Western blot results showed IL-1β and MCP-1 levels in cells.Mean±SD.n=5.*P<0.05,**P<0.01 vs control group;&P<0.05,&&P<0.01 vs T/Z group.圖2 T/Z條件下RIP1介導的HK-2細胞壞死性凋亡和炎癥的關系

Figure 3.The relationship between RIP1-mediated necroptosis of HK-2 cells and NF-κB pathway under T/Z conditions.A:NF-κB pathway-related proteins were determined by Western blot;B:the mRNA expression of NF-κB was detected by real-time PCR.Mean±SD.n=5.**P<0.01 vs control group;&P<0.05,&&P<0.01 vs T/Z group.圖3 T/Z條件下RIP1介導的HK-2細胞壞死性凋亡和NF-κB通路的關系

Figure 4.NF-κB pathway was involved in RIP1-mediated HK-2 cell inflammation under T/Z condition.The protein levels of NF-κB pathway-related molecules in the HK-2 cells were detected by Western blot.Mean±SD.n=5.**P<0.01 vs control group;&&P<0.01 vs T/Z group;++P<0.01 vs T/Z+P group.圖4 T/Z條件下NF-κB通路參與RIP1介導的HK-2細胞炎癥

壞死性凋亡是一種受調節的細胞死亡類型,其與壞死具有相似的形態學特征(早期包膜完整性破壞,細胞體積及胞內細胞器腫脹)[2],而壞死是一種被動的,不受管制的細胞死亡形式。在質膜透化后,一般FasL/TNF通過激活Fas/TNFR1死亡結構域,相繼形成RIP1的TNFR復合體Ⅰ和TNFR復合體Ⅱ,繼而活化caspase級聯反應而啟動常規的細胞凋亡。但在此途徑中TNFR復合體Ⅱ中的RIP1會與RIP3緊密結合并相互磷酸化,活化的RIP3進一步導致其底物混合譜系激酶結構域樣蛋白磷酸化[12],觸發細胞通透化和細胞破壞,繼而啟動壞死性凋亡。T/Z是經典的壞死性凋亡模型[4-5]。Z-VAD-FMK是一個泛caspase抑制劑,TNF-α誘導的procaspase-8蛋白水解活化被Z-VAD-FMK完全抑制,使得RIP1的裂解減少,進而使細胞發生壞死性凋亡。LDH是一種極為穩定的細胞質酶,存在于正常細胞的胞質中,正常時不能通過細胞膜,當細胞受損或死亡時可釋放到細胞外,所以細胞死亡數目與細胞培養上清中的LDH活性成正比。本研究發現單獨給予HK-2細胞TNF-α刺激,可以同時發生壞死性凋亡和凋亡,TNF-α和Z-VAD-FMK聯合刺激HK-2細胞,凋亡途徑受到抑制,壞死性凋亡途徑被激活;進一步轉染RIP1過表達質粒,T/Z+RIP1+組與T/Z組相比HK-2細胞壞死百分比顯著升高,提示T/Z條件下RIP1介導了HK-2細胞壞死性凋亡。

壞死性凋亡參與多種疾病炎癥的發生,如心力衰竭[13]、克羅恩病[8]、肝炎[7]、急性胰腺炎[6]、急性腎損傷[14]、順鉑治療小鼠的腎功能障礙[15]及糖尿病心肌病[16]等。本研究發現TNF-α和Z-VAD-FMK聯合刺激HK-2細胞后IL-1β和MCP-1的表達水平均有明顯提高,提示在T/Z條件下,RIP1介導的HK-2細胞壞死性凋亡的發生與炎癥有關,但壞死性凋亡調節炎癥的機制報道尚少。

Nec-1是一種有效的RIP1抑制劑[17-18],能夠抑制RIP1的活化,并隨后阻斷壞死體的形成,最終阻斷壞死性凋亡。本研究發現給予T/Z組HK-2細胞Nec-1干預后細胞壞死百分比顯著減少,NF-κB的mRNA表達水平下降,NF-κB通路相關蛋白IKK-α、NF-κB p65和p-NF-κB p65的蛋白水平也明顯降低,提示在T/Z條件下,RIP1介導的HK-2細胞壞死性凋亡激活了NF-κB通路。

PDTC是NF-κB的特異性抑制劑[10-11],可通過抑制NF-κB p65亞單位或IκB的降解來抑制NF-κB的激活。我們進一步給予T/Z組HK-2細胞PDTC干預,NF-κB 通路相關蛋白 IKK-α、NF-κB p65、p-NF-κB p65、IL-1β和 MCP-1的蛋白水平降低,Nec-1和PDTC聯合干預HK-2細胞,對上述指標的抑制程度更顯著。這提示在T/Z條件下,NF-κB通路可能參與RIP1介導的HK-2細胞炎癥。

綜上所述,RIP1介導的壞死性凋亡可以誘導腎小管上皮細胞發生炎癥反應;NF-κB通路可能參與這一過程,抑制NF-κB通路可以減輕RIP1介導的壞死性凋亡引發的腎小管炎癥反應。這些結果可為慢性腎臟疾病的治療提供新的思路。

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