注射用丹參多酚酸通過調節Akt/mTOR通路介導的自噬對氧糖剝奪/再灌注Neuro-2a細胞凋亡的影響

張雯琪，李東娜，馬萌萌，徐楊楊，王少峽，柴麗娟, 3，郭 虹, 3*，胡利民, 3*

注射用丹參多酚酸通過調節Akt/mTOR通路介導的自噬對氧糖剝奪/再灌注Neuro-2a細胞凋亡的影響

張雯琪1，李東娜1，馬萌萌2，徐楊楊1，王少峽1，柴麗娟1, 3，郭 虹1, 3*，胡利民1, 3*

1.天津中醫藥大學省部共建組分中藥國家重點實驗室，天津 301617 2.兵器工業北京北方醫院，北京 100089 3.方劑學教育部重點實驗室天津市中藥藥理學重點實驗室，天津 301617

研究注射用丹參多酚酸（Salvianolate Lyophilized Injection，SLI）對氧糖剝奪/再灌注（oxygen-glucose deprivation/reperfusion，OGD/R）損傷小鼠腦神經瘤細胞株Neuro-2a的保護作用及機制。體外培養Neuro-2a細胞，建立OGD/R損傷模型，給予SLI（10、25、50 μg/mL）以及自噬抑制劑3-甲基腺嘌呤（3-methyladenine，3-MA）干預，檢測SLI對OGD/R損傷Neuro-2a細胞存活率、乳酸脫氫酶（lactate dehydrogenase，LDH）漏出量及細胞色素C（cytochrome C，Cyt-C）的釋放；采用流式細胞儀檢測細胞凋亡率；采用Western blotting法檢測凋亡及自噬相關蛋白的表達情況。與OGD/R組比較，SLI顯著提高OGD 4 h/R 24 h Neuro-2a細胞存活率（＜0.05、0.01），降低LDH漏出量（＜0.05、0.01），抑制細胞凋亡和細胞內Cyt-C釋放（＜0.05、0.01），調節活化的半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶-3（cleaved cystein-asparate protease，cleaved Caspase-3）、B淋巴細胞瘤2（B cell lymphoma-2，Bcl-2）蛋白表達（＜0.05、0.01）。SLI還可以增加OGD 4 h/R 6 h細胞自噬相關蛋白微管相關蛋白1輕鏈3Ⅱ（microtubule-associated protein 1 light chain 3II，LC3Ⅱ）、自噬效應蛋白（Beclin-1）表達（＜0.05、0.01），減少自噬選擇性底物p62蓄積（＜0.05、0.01）。加入自噬抑制劑，可以抵消SLI對OGD/R損傷Neuro-2a細胞的保護及凋亡抑制作用。此外，SLI可以降低磷酸化蛋白激酶B（phosphorylated protein kinase B，p-Akt）水平以及哺乳動物雷帕霉素靶蛋白（mammalian target of rapamycin，mTOR）表達（＜0.05、0.01），介導細胞自噬的發生。SLI對OGD/R損傷后的Neuro-2a細胞具有保護作用，其機制可能是通過調節Akt/mTOR信號通路介導的細胞自噬，進而發揮抑制細胞凋亡的作用。

注射用丹參多酚酸；氧糖剝奪/再灌注；Neuro-2a細胞；自噬；凋亡；蛋白激酶B/哺乳動物雷帕霉素靶蛋白通路

缺血性腦卒中是一種常見的腦血管疾病，不僅嚴重影響人們的身心健康，而且給家庭和社會帶來巨大經濟負擔。以往研究表明，缺血性腦卒中以氧化應激、炎癥反應和血管通透性增加等各種病理和生理變化為特征[1-2]。近來研究表明，細胞自噬和凋亡可同時參與缺血性腦卒中的發病機制，并且兩者之間存在相互作用[3]。

細胞自噬是一種分解代謝過程，是真核細胞中存在的重要現象。越來越多的證據表明，自噬參與了缺血性腦卒中的發生和發展，而且細胞自噬和凋亡參與相同的通路，由此形成了一個復雜的網絡。在大鼠缺血再灌注的早期過程中，激活自噬可以為腦缺血/再灌注（ischemia/reperfusion，I/R）誘導的損傷提供一定的神經保護作用[4]。在新生大鼠缺氧模型中，哺乳動物雷帕霉素靶蛋白（mammalian target of rapamycin，mTOR）抑制劑雷帕霉素治療后，可以誘導自噬并發揮對大鼠的神經保護作用[5]。自噬還可以通過抑制半胱氨酸天冬氨酸蛋白酶（cystein-asparate protease，Caspase）依賴性途徑來阻斷細胞凋亡的誘導，從而減輕細胞損傷[6]。因此，自噬的激活可能成為治療缺血性卒中的潛在方向。然而，自噬是一把“雙刃劍”。在某些特殊情況下，過度自噬可能導致細胞凋亡增加，在缺血性卒中的進展中發揮有害作用[7]。自噬可以與細胞凋亡同時發生，或自噬可能首先占主導地位，但最終會導致自噬相關的細胞發生凋亡[8]?？傊?，自噬和細胞凋亡之間的相互作用和串擾是復雜而重要的。因此，缺血性腦卒中后如何干預自噬的發展是組織修復和功能恢復的關鍵。

注射用丹參多酚酸（Salvianolate Lyophilized Injection，SLI）是從丹參中提取的水溶性物質，臨床主要用于治療輕中度缺血性腦卒中[9-11]。Chen等[12]研究表明SLI中含有的主要成分為多種丹酚酸，主要包括原兒茶醛、丹酚酸B、丹酚酸Y、丹酚酸D、丹酚酸E、精酸和迷迭香酸的非對映異構體，具有抗氧化、抗炎、抗腫瘤等藥理作用。本課題組前期研究證實，SLI對大鼠腦缺血再灌注損傷具有明顯保護作用，其可能與減輕氧化應激、抑制炎癥反應有關[13-14]。目前關于SLI如何調節自噬和凋亡以及SLI誘導的自噬和凋亡之間的相互作用的報道較少。因此，本研究旨在揭示SLI對氧糖剝奪/再灌注（oxygen-glucose deprivation/reperfusion，OGD/R）誘導小鼠腦神經瘤細胞株Neuro-2a自噬和凋亡的影響，并進一步探討細胞自噬和凋亡之間的關系。

1 材料

1.1 細胞

Neuro-2a細胞株購自北京協和醫學院。

1.2 藥品與試劑

SLI（批號20151004，0.13 g/支，含丹參多酚酸100 mg、輔料甘露醇30 mg，國藥準字Z20110011）由天津天士力之驕藥業有限公司提供；MEM培養基（批號SH30024.01）、青霉素、鏈霉素（批號SV30010）購自美國Hyclone公司；CCK-8檢測試劑盒（批號CK04）購自日本同仁化學研究所；胎牛血清（批號10099141C）、胰蛋白酶（批號25200056）、D-Hank’s（批號13150016）購自美國Gibco公司；Annexin V-FITC/碘化丙啶（PI）凋亡檢測試劑盒（批號A13199）購自美國Invitrogen公司；RIPA細胞裂解液購自北京索萊寶科技有限公司；BCA測定試劑盒（批號23227）購自美國Thermo Fisher Scientific公司；Immobilon Western 化學發光HRP底物（批號WBKLS0500）、PVDF膜（批號03010040001）購自美國Millipore公司；微管相關蛋白1輕鏈3Ⅱ（microtubule-associated protein 1 light chain 3Ⅱ，LC3Ⅱ）抗體（批號ab48394）、p62抗體（ab56416）、B淋巴細胞瘤2（B cell lymphoma-2，Bcl-2）抗體（批號ab27795）購自英國Abcam公司；自噬效應蛋白（Beclin-1）抗體（批號3738）、磷酸化蛋白激酶B（phosphorylated protein kinase B，p-Akt）抗體（批號4060）、Akt抗體（批號4685）、mTOR抗體（批號2983）、β-actin抗體（批號4970）、cleaved Caspsase-3抗體（批號9664）購自美國CST公司；HRP標記的山羊抗兔IgG抗體（批號ZB-2301）、HRP標記的山羊抗小鼠IgG抗體（批號ZB-2305）購自北京中杉金橋生物技術有限公司；CytoTox-ONETMHomogeneous Membrane Integrity Assay購自美國Promega公司；自噬抑制劑3-MA購自美國Sigma公司；細胞色素C（cytochrome C，Cyt-C）檢測試劑盒購自武漢基因美生物科技有限公司。

1.3 儀器

FORMA3111型CO2恒溫培養箱（美國Thermo Fisher Scientific公司）；64R型低溫高速離心機（美國Beckman Coulter公司）；TE200型倒置相差顯微鏡（日本Nikon公司）；Station 3型多功能讀板機（美國MolecularDivices公司）；BD FACS Calibur流式細胞儀（美國BD公司）；PowerPac? Basic電泳儀、Mini-PROTEAN?Tetra Cell Systems電泳槽、Trans-Blot?SD System半干轉儀（美國Bio-Rad公司）；Milli-Q Advantage A10，超純水系統（美國Millipore公司）。

2 方法

2.1 OGD/R模型的建立

OGD/R模型按照本課題組前期方法建立[15]。將處于對數生長期的Neuro-2a細胞消化并吹打成單細胞懸液，調整細胞密度至4×105個/mL接種于96孔板中。待Neuro-2a細胞生長至80%～90%融合時進行實驗，棄去培養基后以D-Hank’s溶液洗滌細胞3次，換成D-Hank’s平衡鹽溶液置于充滿95% N2、5% CO2混合氣體的缺氧小室氧糖剝奪孵育4 h，再灌注時置換為完全培養基，放置于常規細胞培養箱繼續培養0、6、12、24 h以建立OGD/R模型。

2.2 分組與給藥

根據前期實驗結果，設置對照組、OGD/R組、OGD/R＋SLI（10、25、50 μg/mL）組[16-18]及OGD/R＋3-MA＋SLI（50 μg/mL）組和OGD/R＋3-MA組。

2.2.1 對照組 將完全培養基替換為MEM培養液，于37 ℃、5% CO2培養箱中培養4 h后置換為完全培養基孵育0、6、12、24 h。

2.2.2 OGD/R組 將完全培養基替換為D-Hank’s平衡鹽溶液，置于充滿95% N2、5% CO2混合氣體的缺氧小室孵育4 h，然后置換為完全培養基孵育0、6、12、24 h。

2.2.3 OGD/R＋SLI（10、25、50 μg/mL）組 將完全培養基置換為含有不同濃度SLI的D-Hank’s溶液，置于充滿95% N2、5% CO2混合氣體的缺氧小室孵育4 h后，然后分別置換為含有不同濃度SLI的完全培養基孵育0、6、12、24 h。

2.2.4 OGD/R＋3-MA＋SLI（50 μg/mL）組 將完全培養基置換為含有2.5 mmol/L 3-MA的完全培養基提前孵育1 h，1 h時后置換為含有50 μg/mL SLI、2.5 mmol/L 3-MA的D-Hank’s溶液，置于充滿95% N2、5% CO2混合氣體的缺氧小室孵育4 h，然后置換為含有50 μg/mL SLI的完全培養基孵育24 h。

2.2.5 OGD/R＋3-MA組 將完全培養基置換為含有2.5 mmol/L 3-MA的完全培養基提前孵育1 h，1 h后置換為含有2.5 mmol/L 3-MA的D-Hank’s溶液，置于充滿95% N2、5% CO2混合氣體的缺氧小室孵育4 h，然后置換為完全培養基孵育24 h。

2.3 SLI對OGD/R誘導的Neuro-2a細胞存活率和乳酸脫氫酶（lactate dehydrogenase，LDH）漏出量的影響

2.3.1 細胞存活率的測定 Neuro-2a細胞懸液以1×106/mL接種于96孔板中，培養至細胞貼壁生長均勻，即可用于實驗。各組細胞加入藥物干預后，棄去上清液，每孔加入100 μL含有10% CCK-8的MEM培養基，37 ℃避光孵育30 min后，使用多功能酶標儀測定450 nm處的吸光度（）值。

2.3.2 LDH漏出量的測定 按“2.3.1”項下方法處理細胞，每孔收集細胞上清液25 μL，轉移至新的96孔板中，加入預先配制好的CytoTox-ONETMReagent，20 ℃孵育30 min，加入終止液50 μL，搖晃混合30 s，測定560 nm/590 nm值。

2.4 SLI對OGD/R誘導的Neuro-2a細胞凋亡的影響

按“2.3.1”項下方法處理細胞，Neuro-2a細胞經胰蛋白酶消化后，用冷的PBS洗滌，然后重懸于150 μL含有5 μL Annexin-V-FITC和1 μL PI的混合緩沖液中。37 ℃避光孵育15 min后，通過流式細胞儀定量熒光強度。正?；罴毎粫蝗旧?，凋亡細胞可被標記上Annexin V，壞死和凋亡晚期細胞可被Annexin V和PI同時染色。

2.5 SLI對OGD/R誘導的Neuro-2a細胞Cyt-C釋放的影響

各組加入藥物干預后，收集Neuro-2a細胞并洗滌2次。使用Cyt-C檢測試劑盒測定Cyt-C釋放。

2.6 SLI對OGD/R誘導的Neuro-2a細胞凋亡及自噬相關蛋白表達的影響

Neuro-2a細胞懸液以1×106/mL接種在6孔板中，培養至細胞貼壁生長均勻，各組細胞加入藥物處理后，棄去培養基，用冷的D-Hank’s平衡緩沖鹽溶液清洗3次，每孔加入100 μL含1%蛋白酶抑制劑PMSF的細胞裂解液，于冰上孵育10 min，收集裂解液，4 ℃、12 000 r/min離心10 min，取上清液，用BCA法測定蛋白濃度，再加入Loading Buffer煮沸變性。蛋白樣品經10%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳，轉至PVDF膜，加入4%脫脂奶粉，室溫封閉1.5 h，分別加入cleaved Caspsase-3（1∶1000）、Bcl-2（1∶1000）、LC3II（1∶1000）、Beclin-1（1∶1000）、p62（1∶1000）、p-Akt（1∶2000）、Akt（1∶1000）、mTOR（1∶1000）和β-actin（1∶1000）抗體，4 ℃孵育過夜后，用TBST緩沖液洗滌5次，每次5 min；加入HRP標記的山羊抗小鼠/兔IgG抗體（1∶10 000），室溫孵育1 h，用TBST緩沖液洗滌5次，每次5 min。最后用化學發光成像系統進行顯影。采用Image J軟件分析各目的蛋白的灰度值，用于計算各目的蛋白的表達。

2.7 統計學處理

數據采用SPSS 23.0和GraphPad Prism 5.0統計軟件進行分析，數據用表示，組間比較采用單因素方差（One-Way ANOVA）中的Tukey檢驗進行分析。

3 結果

3.1 SLI對OGD/R誘導的Neuro-2a細胞形態、存活率及LDH漏出量的影響

如圖1-A所示，倒置顯微鏡下可以觀察到，對照組Neuro-2a細胞呈多邊形，貼壁生長良好，細胞密度大，胞體飽滿；OGD/R組細胞稀疏，貼壁性差，胞體明顯皺縮；OGD/R＋SLI（10 μg/mL）組細胞形態有所改善，輪廓相對融合；OGD/R＋SLI（25、50 μg/mL）組細胞形態較OGD/R組有明顯改善，輪廓融合，細胞貼壁性良好。如圖1-B、C所示，與對照組比較，OGD/R組細胞存活率明顯降低（＜0.01），細胞上清液中LDH漏出量明顯升高（＜0.01）；與OGD/R組比較，OGD/R＋SLI（25、50 μg/mL）組細胞存活率顯著升高（＜0.05、0.01），OGD/R＋SLI（10、25、50 μg/mL）組細胞上清液中LDH漏出量均顯著降低（＜0.05、0.01）。表明SLI可以改善OGD/R誘導的Neuro-2a細胞損傷，且呈劑量相關性。

與對照組比較：##P＜0.01 ###P＜0.001；與OGD/R組比較：*P＜0.05 **P＜0.01，下圖同

3.2 SLI對OGD/R誘導的Neuro-2a細胞凋亡的影響

如圖2所示，與對照組比較，OGD/R組細胞凋亡率、Cyt-C釋放量以及cleaved Caspase-3蛋白表達水平顯著升高（＜0.01、0.001），Bcl-2蛋白表達水平顯著降低（＜0.01）；與OGD/R組比較，OGD/R＋SLI（25、50 μg/mL）組細胞凋亡率、Cyt-C釋放量以及cleaved Caspase-3蛋白表達水平均顯著降低（＜0.05、0.01），Bcl-2蛋白表達水平顯著升高（＜0.05、0.01）。表明SLI在神經元OGD/R過程中具有保護作用，可減輕OGD/R損傷誘導的細胞凋亡，說明SLI具有抗細胞凋亡的特性。

A-Annexin V-FITC/PI檢測細胞凋亡 B-各組細胞凋亡率 C-各組細胞Cyt-C釋放量 D-各組細胞cleaved Caspase-3和Bcl-2蛋白表達

3.3 SLI對OGD/R誘導的Neuro-2a細胞自噬相關蛋白表達的影響

如圖3-A所示，與對照組相比，缺氧4 h后細胞LC3II蛋白表達已經出現顯著降低（＜0.05），復氧后6 h達到最低點（＜0.01）。因此，進一步評估了SLI對OGD 4 h/R 6 h自噬蛋白表達的影響。如圖3-B所示，與對照組比較，OGD/R組細胞LC3II和Beclin-1蛋白表達水平顯著降低（＜0.01），p62蛋白表達水平顯著升高（＜0.01）；與模型組比較，OGD/R＋SLI（10、25、50 μg/mL）組LC3II蛋白表達水平均可顯著升高（＜0.05、0.01），p62蛋白表達水平均可顯著降低（＜0.05、0.01）；OGD/R＋SLI（50 μg/mL）組Beclin-1蛋白表達水平顯著升高（＜0.01）。表明SLI能夠通過提高自噬水平發揮對OGD/R損傷Neuro-2a細胞的保護作用。

3.4 SLI通過激活自噬抑制OGD/R誘導的Neuro-2a細胞凋亡

如圖4所示，與對照組比較，OGD/R組細胞存活率顯著降低（＜0.01），LDH漏出量、細胞凋亡率以及Cyt-C釋放量均明顯升高（＜0.01）；與OGD/R組比較，OGD/R＋SLI（50 μg/mL）組細胞存活率顯著升高（＜0.01），LDH漏出量、細胞凋亡率和Cyt-C釋放量均顯著降低（＜0.01）。但加入自噬抑制劑3-MA后，與模型組相比，細胞存活率、LDH漏出量、細胞凋亡率和Cyt-C釋放量沒有明顯變化，但與OGD/R＋SLI（50 μg/mL）組比較有顯著性差異（＜0.01）。說明加入自噬抑制劑3-MA后，藥物未能對凋亡細胞發揮保護作用，從而表明自噬的激活可能在SLI介導的凋亡抑制中發揮關鍵作用。

A-缺氧4 h后，復氧0、6、12、24 h細胞LC3II蛋白表達情況 B-缺氧4 h后，復氧6 h各組細胞LC3II、Beclin和p62蛋白表達情況

A-各組細胞存活率 B-各組細胞LDH漏出量 C-Annexin V-FITC/PI檢測細胞凋亡 D-各組細胞凋亡率 E-各組細胞Cyt-C釋放量 與SLI 50 μg·mL?1組比較：&&P＜0.01

3.5 SLI通過調控Akt/mTOR信號通路抑制OGD/R誘導的Neuro-2a細胞凋亡

隨后又檢測了細胞內Akt的磷酸化水平及mTOR的表達。如圖5所示，與對照組比較，OGD/R組細胞Akt磷酸化水平及mTOR蛋白表達水平均顯著升高（＜0.01、0.001）；與模型組比較，OGD/R＋SLI（10、25、50 μg/mL）組Akt磷酸化水平均顯著降低（＜0.05、0.01），OGD/R＋SLI（25、50 μg/mL）組mTOR蛋白表達水平顯著降低（＜0.05）。提示SLI可能通過抑制Akt/mTOR活性提高自噬水平，從而發揮對OGD/R損傷Neuro-2a細胞的保護作用。

圖5 SLI通過調控Akt/mTOR信號通路抑制OGD/R誘導的Neuro-2a細胞凋亡(, n = 3)

4 討論

缺血性腦卒中是一種嚴重的腦血管疾病，是指腦血管狹窄或閉塞，最終導致腦組織缺氧甚至壞死[19]。中醫認為缺血性中風屬于血瘀證范疇，“活血化瘀”是最常用的治療方法，而丹參是“活血化瘀”最常用的藥物之一，且丹參類制劑對心腦血管系統有較好作用[20]。SLI是利用冷凍干燥法從丹參水溶性提取物中分離得到，在我國臨床上已廣泛用于治療急性缺血性腦卒中。本課題組前期研究顯示，SLI可以促進腦缺血/再灌注（middle cerebral artery occlusion/ reperfusion，MCAO/R）損傷或糖尿病模型中風后大鼠神經功能的恢復，其機制可能與減少氧化應激、抑制炎癥反應和增強血腦屏障功能有關[21-23]。然而，其潛在的作用機制尚不完全清楚，需要進一步研究。因此，本研究在Neuro-2a細胞中建立OGD/R模型探索了SLI的保護機制，并且證明了SLI對OGD/R誘導的Neuro-2a細胞損傷具有一定的神經保護作用，其可以通過激活Akt/mTOR依賴的自噬途徑減少神經元凋亡。

細胞凋亡是繼發性損傷的重要機制，并且在腦I/R損傷期間顯著加重[24]。在凋亡過程中，Cyt-C從線粒體膜間隙釋放到胞質中，隨后招募并導致Caspase級聯反應。最終，Caspase-3被活化，導致細胞凋亡[25]。Bcl-2家族主要參與線粒體介導的凋亡途徑[26]，是一種主要的抗凋亡蛋白。本研究通過流式細胞術檢測發現SLI明顯降低了OGD/R誘導Neuro-2a細胞的凋亡率，抑制了Cyt-C的釋放，降低了cleaved Caspase-3的表達，并上調了Bcl-2蛋白表達水平，證明SLI在體外具有抗凋亡作用。

越來越多的證據支持自噬的調節是腦I/R損傷的一種機制。Luo等[27]發現，通過激活磷脂酰肌醇3-激酶（phosphatidylinositol-3-kinase，PI3K）/Akt途徑抑制自噬有助于防止缺血損傷引起的神經元死亡。相反，Yu等[28]提出適度激活自噬可以通過調節mTOR增加海馬神經元的自噬，減少再灌注損傷，保護神經元。關于自噬在缺血性卒中中的作用存在相互矛盾的報道，這可能與損傷程度和時間有關。因此，自噬在缺血性腦卒中是有益還是有害仍有待進一步討論。本研究發現自噬水平隨著復氧時間的延長先降低后升高，并在復氧24 h后恢復到正常水平。也就是說，自噬在腦缺血早期被激活，這與之前的報道一致[29]。本研究發現SLI可以激活OGD/R誘導的Neuro-2a細胞自噬，增加LC3Ⅱ和Beclin-1的表達，減少p62的積累，并最終提高細胞存活率?？傊?，SLI在體外表現出明顯的自噬保護作用。

許多應激途徑依次引發神經細胞內的自噬和凋亡，它們之間的相互作用復雜但意義重大。Luo等[30]證實自噬可能通過減少凋亡相關分子表達而表現為抗凋亡機制。然而，He等[31]研究表明，凋亡激活通常與自噬增加有關。在許多情況下，自噬先于凋亡。Sirois等[32]觀察到自噬早于細胞凋亡的發展，并在細胞凋亡被激活時持續發生。在本研究中，自噬抑制在復氧6 h時處于最低點，然后逐漸升高，復氧24 h細胞凋亡率明顯高于對照組。這表明自噬先于凋亡發生，與文獻中的報道一致。本研究的局限性在于沒有對凋亡進行時間相關性分析，并且對自噬檢測僅持續到復氧24 h，自噬是否會繼續上升并導致過度自噬尚不清楚。但SLI能夠明顯逆轉OGD/R誘導的自噬抑制和凋亡的發生，而且SLI激活自噬的時間早于抑制凋亡的時間。此外，當自噬抑制劑3-MA抑制自噬時，SLI提高細胞存活率、減少細胞凋亡和Cyt-C釋放的能力減弱，表明SLI可以通過上調自噬抑制細胞凋亡。

PI3K/Akt/mTOR信號通路是經典的自噬通路。mTOR是自噬的主要負調節因子，位于PI3K/Akt通路的下游。研究顯示，神經營養因子的神經保護作用是通過皮層神經元中的PI3K/Akt/mTOR通路由自噬介導的[33]。同時，PI3K/Akt/mTOR通路是細胞內關鍵的信號轉導通路，可促進細胞生長并抑制細胞凋亡[34]?；谠撏緩?，體外觀察了OGD/R處理后，給予SLI的Neuro-2a細胞中p-Akt和mTOR的表達。結果表明，SLI可以下調p-Akt和mTOR的表達，從而促進自噬。這表明SLI對缺血性卒中的神經保護作用可以通過Akt/mTOR通路調節自噬活性。但是，Akt/mTOR信號通路并不是調節自噬的唯一通路，為了進一步闡明SLI是否可以調節Akt通路，可以使用Akt磷酸化抑制劑Ly294002在后續研究中進行驗證。

本研究主要探索了OGD/R誘導Neuro-2a細胞后自噬與凋亡的關系，并研究了Akt/mTOR信號通路在調控Neuro-2a細胞中的作用。發現SLI通過誘導自噬和抑制細胞凋亡來改善OGD/R誘導的損傷，并通過Akt/mTOR依賴性途徑發揮神經保護作用。

利益沖突 所有作者均聲明不存在利益沖突

[1] Yang Q W, Huang Q Y, Hu Z P,.Potential neuroprotective treatment of stroke: Targeting excitotoxicity, oxidative stress, and inflammation [J]., 2019, 13: 1036.

[2] Yang C J, Hawkins K E, Doré S,.Neuroinflammatory mechanisms of blood-brain barrier damage in ischemic stroke [J]., 2019, 316(2): C135-C153.

[3] Chen S D, Wu C L, Hwang W C,.More insight into BDNF against neurodegeneration: Anti-apoptosis, anti-oxidation, and suppression of autophagy [J]., 2017, 18(3): 545.

[4] Sun Y M, Zhang T, Zhang Y,.Ischemic postconditioning alleviates cerebral ischemia-reperfusion injury through activating autophagy during early reperfusion in rats [J]., 2018, 43(9): 1826-1840.

[5] Huang L F, Chen C W, Zhang X,.Neuroprotective effect of curcumin against cerebral ischemia-reperfusion via mediating autophagy and inflammation [J]., 2018, 64(1): 129-139.

[6] Li Z R, Ma T, Guo Y J,.Sanggenon O induced apoptosis of A549 cells is counterbalanced by protective autophagy [J]., 2019, 87: 688-698.

[7] Mo Y, Sun Y Y, Liu K Y.Autophagy and inflammation in ischemic stroke [J]., 2020, 15(8): 1388-1396.

[8] Lange C, Lehmann C, Mahler M,.Comparison of cellular death pathways after mTHPC-mediated photodynamic therapy (PDT) in five human cancer cell lines [J]., 2019, 11(5): 702.

[9] Zhou L M, Zuo Z, Chow M S S.Danshen: An overview of its chemistry, pharmacology, pharmacokinetics, and clinical use [J]., 2005, 45(12): 1345-1359.

[10] 蘇小琴, 張磊, 李海燕, 等.基于Q-marker的中藥注射劑質量控制研究思路——以注射用丹參多酚酸為例[J].中草藥, 2019, 50(19): 4663-4672.

[11] 辛浩琳, 崔英, 周官恩.注射用丹參多酚酸鹽聯合長春西汀注射液治療腔隙性腦梗死的臨床研究[J].現代藥物與臨床, 2020, 35(3): 450-454.

[12] Chen X L, Guo Y J, Hu Y J,.Quantitative analysis of highly similar salvianolic acids with1H qNMR for quality control of traditional Chinese medicinal preparation Salvianolate Lyophilized Injection [J]., 2016, 124: 281-287.

[13] Wang F J, Wang S X, Chai L J,.Xueshuantong Injection (lyophilized) combined with Salvianolate Lyophilized Injection protects against focal cerebral ischemia/reperfusion injury in rats through attenuation of oxidative stress [J]., 2018, 39(6): 998-1011.

[14] Yang C S, Xu Y Y, Zhang W Q,.Salvianolate Lyophilized Injection regulates the autophagy-lysosomal pathway in cerebral ischaemia/reperfusion rats [J]., 2021, 271: 113898.

[15] Chai L J, Guo H, Li H,.Scutellarin and caffeic acid ester fraction, active components of Dengzhanxixin Injection, upregulate neurotrophins synthesis and release in hypoxia/reoxygenation rat astrocytes [J]., 2013, 150(1): 100-107.

[16] 劉文杰, 袁慶, 張彤, 等.注射用丹參多酚酸對周細胞增殖與遷移和凋亡的影響 [J].中國臨床藥理學雜志, 2021, 37(1): 27-30.

[17] 袁慶, 胡利民, 王少峽, 等.注射用丹參多酚酸對膠質細胞神經營養因子及神經元的保護作用 [J].中國臨床藥理學雜志, 2017, 33(10): 893-896.

[18] 徐耀, 殷孟蘭, 趙磊, 等.丹參和三七有效組分對氧糖剝奪損傷的大鼠星形膠質細胞谷氨酸攝取的影響 [J].中國臨床藥理學雜志, 2021, 37(1): 59-62.

[19] Hankey G J.Stroke [J]., 2017, 389(10069): 641-654.

[20] 陳璐, 聶永偉, 張燕欣, 等.丹參單體化合物及丹參類制劑對心腦血管系統信號通路影響的研究進展[J].藥物評價研究, 2021, 44(11): 2333-2342.

[21] He Q S, Wang S X, Liu X L,.Salvianolate Lyophilized Injection promotes post-stroke functional recovery via the activation of VEGF and BDNF-TrkB-CREB signaling pathway [J]., 2015, 8(1): 108-122.

[22] Wang F J, He Q S, Wang J X,.Neuroprotective effect of Salvianolate Lyophilized Injection against cerebral ischemia in type 1 diabetic rats [J]., 2017, 17(1): 258.

[23] Zhao C, Li X L, Li X J,.Salvianolate Lyophilized Injection (SLI) strengthens blood-brain barrier function related to ERK1/2 and Akt signaling pathways [J]., 2019, 1720: 146295.

[24] Tian Z H, Tang C Y, Wang Z G.Neuroprotective effect of ginkgetin in experimental cerebral ischemia/reperfusion via apoptosis inhibition and PI3K/Akt/mTOR signaling pathway activation [J]., 2019, 120(10): 18487-18495.

[25] Guo Y J, Zhao Y, Zhou Y X,.LZ-101, a novel derivative of danofloxacin, induces mitochondrial apoptosis by stabilizing FOXO3a via blocking autophagy flux in NSCLC cells [J]., 2019, 10(7): 484.

[26] Belzacq A S, Vieira H L A, Kroemer G,.The adenine nucleotide translocator in apoptosis [J]., 2002, 84(2/3): 167-176.

[27] Luo T F, Liu G Y, Ma H X,.Inhibition of autophagy via activation of PI3K/Akt pathway contributes to the protection of ginsenoside Rb1against neuronal death caused by ischemic insults [J]., 2014, 15(9): 15426-15442.

[28] Yu B, Ruan M, Liang T,.The synergic effect of tetramethylpyrazine phosphate and borneol for protecting against ischemia injury in cortex and hippocampus regions by modulating apoptosis and autophagy [J]., 2017, 63(1): 70-83.

[29] Wang P, Guan Y F, Du H,.Induction of autophagy contributes to the neuroprotection of nicotinamide phosphoribosyltransferase in cerebral ischemia [J]., 2012, 8(1): 77-87.

[30] Luo S Q, Rubinsztein D C.BCL2L11/BIM: A novel molecular link between autophagy and apoptosis [J]., 2013, 9(1): 104-105.

[31] He G Q, Xu W M, Tong L Y,.Gadd45b prevents autophagy and apoptosis against rat cerebral neuron oxygen-glucose deprivation/reperfusion injury [J]., 2016, 21(4): 390-403.

[32] Sirois I, Groleau J, Pallet N,.Caspase activation regulates the extracellular export of autophagic vacuoles [J]., 2012, 8(6): 927-937.

[33] Bak D H, Zhang E J, Yi M H,.High ω3-polyunsaturated fatty acids in fat-1 mice prevent streptozotocin-induced Purkinje cell degeneration through BDNF-mediated autophagy [J]., 2015, 5: 15465.

[34] Sun D Y, Lei W, Hou X D,.PUF60 accelerates the progression of breast cancer through downregulation of PTEN expression [J]., 2019, 11: 821-830.

Salvianolate Lyophilized Injection induced autophagy against neuronal apoptosis through Akt/mTOR pathway in Neuro-2a cells

ZHANG Wen-qi1, LI Dong-na1, MA Meng-meng2, XU Yang-yang1, WANG Shao-xia1, CHAI Li-juan1, 3, GUO Hong1, 3, HU Li-min1, 3

1.State Key Laboratory of Component-based Chinese Medicine, Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China 2.Beijing Northern Hospital of Weaponry Industry, Beijing 100089, China 3.Key Laboratory of Pharmacology of Traditional Chinese Medical Formulae, Ministry of Education, Tianjin University of Traditional Chinese Medicine, Tianjin 301617, China

To study the protective effect and mechanism of Salvianolate Lyophilized Injection (注射用丹參多酚酸, SLI) on oxygen-glucose deprivation/reperfusion (OGD/R)-injured mouse brain neuroma cell line Neuro-2a.Neuro-2a cells were cultured, OGD/R injury model was established, SLI (10, 25, 50 μg/mL) and autophagy inhibitor 3-methyladenine (3-MA) ??were administered for intervention.Effects of SLI on survival rate, lactate dehydrogenase (LDH) leakage and cytochrome C (Cyt-C) release of OGD/R-injured Neuro-2a cells were detected; Apoptosis was detected by flow cytometry; Expressions of apoptosis and autophagy-related proteins were detected by Western blotting.Compared with OGD/R group, SLI significantly increased the survival rate of Neuro-2a cells induced by OGD 4 h/R 24 h (< 0.05, 0.01), decreased the leakage of LDH (< 0.05, 0.01), inhibited cell apoptosis and Cyt-C release (< 0.05, 0.01), regulated cleaved cystein-asparate protease (cleaved Caspase-3) and B lymphoma-2 (Bcl-2) protein expressions (< 0.05, 0.01).SLI increased the expressions of autophagy-associated protein microtubule-associated protein 1 light chain 3II (LC3II) and autophagy effector protein (Beclin-1) in cells induced by OGD 4 h/R 6 h (< 0.05, 0.01), reduced the accumulation of autophagy-selective substrate p62 (< 0.05, 0.01).The addition of an autophagy inhibitor could counteract the protective and apoptosis inhibitory effects of SLI on OGD/R-injured Neuro-2a cells.In addition, SLI could reduce the level of phosphorylated protein kinase B (p-Akt) and expression of mammalian target of rapamycin (mTOR) (< 0.05, 0.01) to mediate autophagy.SLI has a protective effect on Neuro-2a cells after OGD/R injury, its mechanism may be regulating the autophagy mediated by Akt/mTOR signaling pathway, thereby inhibiting apoptosis.

Salvianolate Lyophilized Injection; oxygen-glucose deprivation/reperfusion; Neuro-2a cells; apoptosis; autophagy; protein kinase B/mammalian target of rapamycin pathway

R285.5

A

0253 - 2670(2022)09 - 2706 - 09

10.7501/j.issn.0253-2670.2022.09.013

2022-01-18

國家自然科學基金資助項目（81573644）；國家重點科技攻關項目（2012ZX09101202）

張雯琪（1996—），女，碩士研究生，主要從事中藥藥理學相關研究。E-mail: 17622738901@163.com

通信作者：郭 虹（1983—），博士生導師，主要從事中藥腦血管及神經藥理研究。E-mail: cacti1983@163.com

胡利民（1966—），博士生導師，主要從事腦血管藥理研究。E-mail: huliminth@126.com

[責任編輯 李亞楠]