塔里木裂腹魚尾鰭細胞系的建立及鹽堿度對其增殖的影響*

代金彩 聶竹蘭 趙年樺 任永麗 魏 杰

塔里木裂腹魚尾鰭細胞系的建立及鹽堿度對其增殖的影響*

代金彩 聶竹蘭①趙年樺 任永麗 魏 杰

(塔里木大學動物科學學院 新疆建設兵團塔里木畜牧科技重點實驗室 塔里木珍稀魚類研究中心 新疆 阿拉爾 843300)

為了建立塔里木裂腹魚()尾鰭細胞系，本研究采用組織塊法，分別用含胎牛血清(FBS)的DME/F12培養基體外培養塔里木裂腹魚尾鰭組織，初步建立了塔里木裂腹魚尾鰭細胞系(BICF1)。采用MTT法測定分析鹽度(NaCl)和堿度(NaHCO3)對其增殖的影響。結果顯示，BICF1懸浮培養傳至45代，最適培養液為DME/F12，最適FBS濃度為20%，最適溫度為25℃。第10代BICF1的群體倍增時間為28.11 h，呈“S”型生長。第6代BICF1液氮凍存180 d后復蘇，經臺盼藍染色計數，BICF1有(87.85±0.66)%的細胞具有活性，復蘇后可增殖并傳代。BICF1無細菌、真菌、支原體污染。第10代BICF1線粒體16S rRNA測序結果與GenBank基因序列進行一致性對比，結果顯示，BICF1與JQ844133.1的一致率為100%，表明BICF1來自于塔里木裂腹魚。BICF1增殖數量在鹽度為1、2、4、6時呈上升趨勢，在鹽度為6、8、10時呈下降趨勢；鹽度為6時，BICF1增殖數量最高。BICF1增殖數量在堿度為2、3、4、5、6 g/L時呈上升趨勢，在堿度為6、7、8、10 g/L時呈下降趨勢；堿度為6 g/L時，BICF1增殖數量最高。細胞增殖數量隨鹽堿度增加呈現先升高后下降的趨勢。本研究旨在為合理開發和利用塔里木裂腹魚遺傳資源以及建立和保護其種質資源提供一定的科學依據。

塔里木裂腹魚；尾鰭組織；細胞培養

國家二級保護動物塔里木裂腹魚()屬鯉形目(Cypriniformes)、鯉科(Cyprinidae)、裂腹魚亞科(Schizothpracinae)、裂腹魚屬()，俗稱“尖嘴魚”，是我國的特有物種(王德忠, 1998)。有關塔里木裂腹魚的報道主要集中在其地理分布(張人銘等, 2007)、形態特征(楊天燕等, 2018)、繁殖特性(魏杰等, 2011)、線粒體基因組DNA結構分析(楊天燕等, 2011)、遺傳標記開發(Luo, 2012)及遺傳多樣性(海薩等, 2016)等方面。

鹽堿度水平是影響硬骨魚類生存、繁殖、發育、生長和生理功能的最重要環境因素之一，會由于自然因素或人為因素而發生變化，從而對養殖魚類造成滲透調節脅迫，影響其正常生長(Resley, 2006)。水體中鹽堿度水平對魚類的存活有顯著影響，鹽堿度過高或過低都會使魚類的存活率顯著的降低(Yao, 2010)。魚類細胞系是進行病毒學、環境毒理學、分子遺傳學、基因功能分析、細胞遺傳學與種質保存等研究的材料和模型(周廣舟等, 2011)。草魚鰭細胞系可用于研究草魚源維氏氣單胞菌()對宿主細胞的毒性及致死機制(劉明珠等, 2019)；異育銀鯽()尾鰭細胞(GiCF)可用于辛硫磷對GiCF毒性研究 (趙燕楠等, 2020)；泥鰍()鰭細胞系用于研究銅、鋅對泥鰍鰭細胞DNA損傷及金屬硫蛋白表達的影響(姜姍等, 2020)。

本研究建立了塔里木裂腹魚尾鰭組織細胞系，測定了鹽度(NaCl)和堿度(NaHCO3)對其增殖的影響。本研究旨在為合理開發和利用塔里木裂腹魚遺傳資源以及建立和保護其種質資源提供一定的科學依據。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

實驗用塔里木裂腹魚于2019年9月取自新疆克孜勒河，飼養在新疆建設兵團塔里木畜牧科技重點實驗室。取其中1條健康雌塔里木裂腹魚，體重為21.37g，全長為15.46 cm。

DME/F12、L-15、MEM、RPMI-1640、M199培養基購自Hyclone公司；胎牛血清(FBS)購自Gibco公司；磷酸緩沖液(PBS)、青霉素–鏈霉素雙抗、二甲基亞砜(DMSO)購自Solarbio公司；臺盼藍和0.25%胰酶購自Biotopped公司；MS-222購自漁夫寶公司；基因組DNA提取試劑盒購自天根生化科技有限公司；其他化學試劑均為分析純。

1.2 實驗方法

1.2.1 原代培養與傳代培養 取健康塔里木裂腹魚，加入0.1 μL/g的MS-222麻醉劑麻醉后，剪取上尾鰭。用75%的酒精對尾鰭進行消毒，置于超凈臺中。取4個培養皿，其中，1個加入75%的酒精，3個加入添加含500 IU/mL青霉素、500 μg/mL鏈霉素、12.5μg/mL兩性霉素B的PBS。尾鰭放入酒精中30 s，然后依次在另外3個培養皿中浸泡，之后將其放入2 mL無菌離心管中，并用無菌眼科剪將其剪成大約1～2 mm3的組織碎塊，向其中加入500 μL的DME/F12培養液，將組織碎塊移到25 mm2培養瓶中，正相放入25℃、5%的CO2培養箱中，觀察細胞貼壁情況。4 h后反相放置，培養2 h后，向其中加入1 mL DME/F12培養液(含20% FBS、500 IU/mL青霉素、500 μg/mL鏈霉素、12.5 μg/mL兩性霉素B)，正相放入25℃、5%的CO2培養箱中繼續培養，12 h后加入9 mL培養液，繼續正相放置培養。每天用倒置熒光顯微鏡(AMG EVOS F1)觀察組織塊遷移情況。

原代培養過程中，更換培養液的時間為2～4 d。當組織碎塊周圍遷出細胞，細胞濃度達106cells/mL時，按1∶2的比例進行傳代。直到第5代后，青霉素、鏈霉素的濃度降低到200 IU/mL和200 μg/mL，FBS濃度也降低到15%。到第8代后，使用含10% FBS和1% P/S的DME/F12培養液。

1.2.2 細胞生長曲線 將一定濃度的細胞接種到24孔細胞培養板，分成8組，每組6孔，連續7 d常規培養，用血球計數板進行計數，每天記1組，分析數據并繪制細胞生長曲線。細胞生長曲線的縱坐標為每天計數的細胞平均個數，時間為橫坐標。根據下面公式計算細胞的群體倍增時間：

=×lg/lg(N/0)

式中，N為時間后的細胞數，0接種細胞數(Nicholas, 1991)。

1.2.3 最佳培養基 檢測DME/F12、M199、L-15、MEM、RPMI-1640共5種不同培養基維持細胞生長的能力。每種培養基中均補充10% FBS和1% P/S。分別將一定濃度的細胞接種在不同的培養基中，在25℃、5%的CO2條件下培養96 h，在5個時間點，即0、24、48、72及96 h利用血球計數板進行細胞計數，繪制細胞的生長曲線。

1.2.4 最適培養溫度 檢測20℃、25℃、30℃和37℃不同溫度對細胞生長的影響。所用培養液為含10% FBS和1% P/S的DME/F12培養液。在25℃、5%的CO2條件下培養96 h，在5個時間點即0、24、48、72及96 h利用血球計數板進行細胞計數，繪制細胞的生長曲線。

1.2.5 最適血清濃度 確定最適合的培養液及溫度后，其他條件一致，設置不同FBS濃度(0、5%、10%和20%)，在25℃、5%的CO2條件下培養，在5個時間點，即0、24、48、72及96 h利用血球計數板進行細胞計數，繪制細胞生長曲線。

1.2.6 細胞凍存與復蘇 配制10% DMSO、20% FBS、70% DME/F-12的細胞凍存液，細胞濃度為2×106cells/mL，倒入冷凍管，液氮凍存。按細胞∶培養液=1∶5比例加入培養液使細胞懸浮，復蘇培養。

1.2.7 細胞污染鑒定 選用觀察法與PCR法檢測細胞是否被細菌、真菌、支原體污染。所用引物見表1。

1.2.8 細胞來源鑒定 利用動物組織基因組DNA提取試劑盒(DP304)提取塔里木裂腹魚尾鰭細胞的基因組DNA。通過PCR擴增提取DNA。根據塔里木裂腹魚16S rRNA設計引物，擴增引物為16SF和16SR (表1)。配制50 μL反應體系：25 μL 2×PCR MasterMix，引物各2.5 μL，5 μL模板DNA，15 μL的滅菌超純水。PCR反應條件：95℃預變性3 min；94℃變性30 s，56.8℃退火30 s，72℃延伸40 s，循環35次；72℃延伸10 min。擴增反應結束后，取1 μL PCR產物在核酸蛋白檢測儀上檢測DNA的濃度；取8 μL PCR產物在1%瓊脂糖凝膠中進行電泳檢測。PCR產物測序，比較獲得序列與已發表序列的一致率。

1.2.9 鹽堿度對塔里木裂腹魚細胞系增殖數量的影響 NaCl鹽度設置1、2、4、6、8、10共6個梯度。稱取NaCl加入DME/F12培養液溶解，溶解后再用0.22 μm過濾篩過濾。

NaHCO3堿度設置2、3、4、5、6、7、8、10 g/L共8個梯度。稱取NaHCO3加入DME/F12培養液溶解，溶解后再用0.22 μm過濾篩過濾。

細胞鋪板：將第10代對數生長期BICF1用含10%胎牛血清DME/F12培養液調整密度為1×104cells/mL的細胞懸液，鋪置于96孔細胞培養板上，每種材料鋪6孔。每孔加入100 μL細胞懸液，25℃、5% CO2培養箱培養12 h后，按分組分別加入不同濃度鹽和堿，各孔20 μL，繼續培養24、48、72 h。之后將每個液體孔加入20 μL MTT后繼續培養4 h，小心吸出各孔內液體，然后，每孔加入150 μL DMSO。搖床培養20 min，酶聯免疫檢測儀490 nm波長下測定各孔的OD值。通過計算，得出細胞相對增殖率：

表1 通用引物序列

Tab.1 Universal primer sequence

相對增殖率=OD實驗組/OD空白對照組×100%。

使用SPSS 20軟件包對數據進行統計學分析，數據以平均值±標準差(Mean±SD)表示，<0.05為差異具有顯著性。多組間比較用方差分析，兩組間比較采用檢驗。=0.05為檢驗水準。

2 結果

2.1 塔里木裂腹魚尾鰭細胞原代培養與傳代培養

觀察塔里木裂腹魚尾鰭細胞生長狀態。3 d后，細胞貼壁且組織塊周圍逐漸有細胞遷出；7 d后，細胞正常遷出；13 d后，細胞鋪滿細胞瓶70%；18 d后，細胞出現懸浮現象(圖1)；19 d后，進行原瓶傳代。細胞濃度到106cells/mL時，進行1∶2傳代，此后每隔2～4 d傳代1次。細胞懸浮生長，成功傳至45代。

2.2 塔里木裂腹魚尾鰭細胞生長曲線

塔里木裂腹魚尾鰭細胞系第10代細胞的生長曲線呈“S”型，0～1 d為潛伏期，1～4 d為指數生長期，4～5 d為平臺期，5 d之后為衰退期(圖2)。第10代塔里木裂腹魚尾鰭細胞的群體倍增時間為28.11 h，細胞分裂旺盛。

圖1 塔里木裂腹魚尾鰭細胞原代培養的不同階段

2.3 塔里木裂腹魚尾鰭細胞最佳培養基

塔里木裂腹魚尾鰭細胞在DME/F12、M199、L-15、MEM、RPMI-1640不同培養基中維持細胞生長的能力如圖3所示，在這些培養基中均能生長，但在DME/F12培養基中細胞生長最好。因此，DME/F12為最佳培養基(<0.05)。

2.4 塔里木裂腹魚尾鰭細胞最適培養溫度

塔里木裂腹魚尾鰭細胞在30℃生長最慢，25℃生長最快，20℃生長較快，在20℃～25℃范圍內，皆能良性生長(圖4)，生長的最適溫度為25℃(<0.05)。

2.5 塔里木裂腹魚尾鰭細胞最適血清濃度

塔里木裂腹魚尾鰭細胞在未加血清的培養基中生長明顯低于添加血清的細胞生長，隨著血清濃度5%、10%、20%依次增大，細胞生長依次加快，當FBS濃度為20%時，塔里木裂腹魚尾鰭細胞生長明顯最快(<0.05)(圖5)。

2.6 塔里木裂腹魚尾鰭細胞凍存與復蘇

對塔里木裂腹魚第6代尾鰭細胞系進行液氮冷凍，保存40、90及180 d后復蘇，經臺盼藍染色并計數統計，40 d存活率為(91.49±0.69)%，90 d存活率為(88.41±0.80)%，180 d存活率為(87.85±0.66)%，90和180 d存活率差異不顯著(>0.05)(表2)。細胞具有活性，且復蘇后增殖速度快(圖6)，可正常傳代(圖7)。

圖2 塔里木裂腹魚尾鰭細胞生長曲線

標有不同字母者表示組間差異顯著(<0.05)。下同。

Means with different letters are significantly different (<0.05). The same as below.

圖3 塔里木裂腹魚尾鰭細胞最佳培養基

小寫字母表示同一時間下BICF1多重比較。下同。

Indicated with lowercase letters for BICF1 multiple comparisons at the same time. The same as below.

圖4 塔里木裂腹魚尾鰭細胞最適培養溫度

圖5 塔里木裂腹魚尾鰭細胞最適血清濃度

表2 凍存后復蘇存活率

Tab.2 Survival rate of recovery after freezing

圖6 MTT法測定復蘇細胞增殖

2.7 塔里木裂腹魚尾鰭細胞污染與檢測鑒定

塔里木裂腹魚尾鰭細胞中提取細菌、真菌和支原體，經過PCR法鑒定細菌、真菌、支原體污染，樣品均無與陽性對照組一致的條帶，樣品中無細菌、真菌、支原體，塔里木裂腹魚尾鰭細胞未被污染。

2.8 塔里木裂腹魚尾鰭細胞來源鑒定

用基因組DNA試劑盒提取塔里木裂腹魚尾鰭細胞DNA，經PCR擴增，在瓊脂糖凝膠中電泳檢測，PCR產物目的條帶大小符合16S rRNA的大小。經測序后的序列片段與數據庫中的GenBank進行Blast比對。塔里木裂腹魚尾鰭細胞同源性與GenBank中發布的來源于塔里木裂腹魚線粒體基因(JQ844133.1)的序列達到100%；證明尾鰭細胞來自于塔里木裂腹魚。

圖7 塔里木裂腹魚尾鰭細胞復蘇培養

2.9 MTT法檢測各組鹽堿度的細胞增殖數量

2.9.1 鹽度對塔里木裂腹魚尾鰭細胞增殖數量的影響 在鹽度一定的情況下，BICF1的增殖數量隨時間延長而下降，鹽度對BICF1的相對增殖數量的抑制可隨時間延長而增強。BICF1增殖數量在鹽度為1、2、4、6時呈上升趨勢，在鹽度為6、8、10呈下降趨勢，鹽度為6時，BICF1增殖數量最高。BICF1增殖數量隨鹽度增加呈先升高后下降的趨勢(表3和圖8)。

2.9.2 堿度對塔里木裂腹魚尾鰭細胞增殖數量的影響 在堿度一定時，BICF1的增殖數量隨時間(24、48、72 h)延長而下降，堿度對BICF1的相對增殖數量的抑制隨時間延長而增強。在同一時間點上，BICF1增殖數量在堿度2、3、4、5、6 g/L時呈上升趨勢，在堿度為6、7、8、10 g/L時呈下降趨勢，堿度為6 g/L時，BICF1增殖數量最高。BICF1增殖數量隨NaHCO3堿度增加呈先升高后下降的趨勢(表4和圖8)。

3 討論

本研究以塔里木裂腹魚尾鰭組織為材料，采用組織塊移植法成功進行了塔里木裂腹魚尾鰭組織細胞原代培養，命名為BICFI。BICFI在10% FBS的DME/F12培養液中生長良好。細胞培養常用的培養液有L-15、MEM和M199，但不同的魚類對環境要求不盡相同，因此，不同魚類的最適培養基亦不同。青魚()尾鰭細胞系(BC-Fin)的最佳培養液為L-15(張雪萍等, 2016)；麥穗魚()鰭細胞系的最佳培養液為MEM(楊坤等, 2013)；匙吻鱘()鰭細胞系(PF-Fin)的最佳培養液為M199(肖藝等, 2010)；紅鰭東方鲀()鰭細胞系的最佳培養液為DMEM/F12(王縉云等, 2018)，本研究中篩選了DME/F12、L-15、MEM、RPMI-1640和M199培養基，得出DME/F12為最佳培養液。魚類組織細胞生長溫度范圍和哺乳類組織細胞比較，范圍比較廣。BICFI在20℃～25℃均能正常生長。研究表明，牙鲆()與鱸()鰭細胞系為廣溫性(童裳亮等, 1997)，本研究與已報道的魚類細胞的溫度適應范圍是一致的(Wang, 2010)，這與魚類是變溫動物有很大關系。在0、5%、10%、20%的FBS中生長時，未加FBS的生長速度明顯低于添加FBS的生長速度，在FBS為20%時生長最快，FBS濃度對細胞生長有明顯的影響，與已報道的研究相似(王縉云等, 2018)。本研究測定的第10代BICF1生長曲線呈“S”型生長曲線，1 d為指數生長期。紅鰭東方鲀鰭細胞系在2～4 d為指數生長期，4～5 d為平穩期(王縉云等, 2018)，5 d之后為衰退期。與紅鰭東方鲀鰭細胞相比，BICF1進入指數生長期更快。

表3 鹽度對BICF1增殖的影響(Mean±SD)

Tab.3 Effects of salinity on BICF1 cell proliferation

注：標有不同字母表示組間有顯著差異(<0.05)，其中，大寫字母為不同鹽度同一時間下BICF1多重比較，小寫字母為同一鹽度不同時間下BICF1多重比較。下同。

Note: The means with different letters are significantly different (<0.05). The capital letters are BICF1 multiple comparisons at the same time with different salinity, and the small letters are BICF1 multiple comparisons at the same time with the same salinity. The same as below.

表4 NaHCO3堿度對BICF1增殖的影響

Tab.4 Effect of NaHCO3 alkalinity on BICF1 cell proliferation (Mean±SD)

圖8 不同濃度NaCl/NaHCO3對BICFI細胞增殖數量的影響

本研究塔里木裂腹魚BICF1呈懸浮生長。貼壁培養型的細胞，細胞膜表面含有大量黏附因子。這些黏附因子可激活不同的信號通路調節貼壁細胞的活性和增殖，如整合素(integrins)活化黏著斑激酶(focal adhesion kinase)激活信號通路抑制細胞內源性的凋亡(Zhong, 2012; Hofmann, 2007)。懸浮培養的細胞一般為淋巴細胞等血液系統來源的細胞，細胞體積小，缺乏粘附分子的表達(姬廣超等, 2020; 徐偉等, 2020)。在塔里木裂腹魚BICF1染色體的制備中發現，用0.075 mol/L的KCl低滲時間達90 min。有研究報道，棕點石斑魚(♀)×鞍帶石斑魚(♂) F1染色體制備中低滲時間為25 min (劉莉等, 2016)；鯉()染色體標本的制備中低滲的時間控制在35 min (耿波等, 2003)；黃顙魚()染色體標本的制備中低滲的時間控制在40 min (宋立民等, 2010)；灰海馬()染色體標本的制備中低滲的時間為50 min (劉鑫等, 2020)；報道的研究中低滲的時間在25～50 min。因此，推測塔里木裂腹魚BICF1細胞膜不易破裂，與BICF1細胞膜的堅韌程度有關。用物理方法進行貼壁型細胞的懸浮馴化時，使細胞發生失巢凋亡(anoikis)(王朋朋等, 2021)，無血清與生物反應器馴化使貼壁細胞產生失巢凋亡的拮抗。目前，MDCK(吳培培等, 2016)、BHK-21(趙彩紅等, 2019)、Hi5-SF(馬偉等, 2017)、PK15(劉天倫等, 2019)等被馴化。塔里木裂腹魚BICF1培養中可能產生類似于失巢凋亡的調節。塔里木裂腹魚腎細胞呈懸浮生長的狀態，可能與其體積和細胞膜表面粘附分子的表達及細胞膜堅韌程度有關，可能與類似于失巢凋亡的調節有關，具體原因有待于進一步研究。

細胞來源的鑒定通常采用16S rRNA、12S rRNA和Cytb等基因片段，本研究選擇16S rRNA進行鑒定，BICF1序列分析結果與塔里木裂腹魚基因序列一致性為100%，證明細胞系來自于塔里木裂腹魚。

塔里木裂腹魚曾是新疆博斯騰湖主要經濟魚類，由于開荒造田，農田鹽堿水大量排入湖水，鹽堿度逐年升高(劉立彭, 1983)。水體中鹽堿度水平對魚類存活有顯著影響，鹽堿度過高或過低都會顯著降低魚類的存活率(張雅芝等, 2009; 秦志清等, 2010)。在尼羅羅非魚()鹽堿度的耐受性研究中發現，鹽度為20時，僅少數個體能存活96 h；NaHCO3堿度為12 g/L時，96 h全部死亡(趙麗慧等, 2014)；對縊蟶()急性低鹽脅迫，并檢測當鹽度由2到0時，其存活率隨鹽度的下降而降低(李智等, 2020)；當碳酸鹽堿度為0～44.58 mmol/L、pH為9.0～10.0時，隨著碳酸鹽堿度濃度的上升，縊蟶的存活率明顯下降(葉博等, 2019)。本研究中，鹽度為1～6時，BICF1增殖數量上升；鹽度為6～10時，BICF1增殖數量下降；鹽度為6時，BICF1增殖數量最高。NaHCO3堿度為2～6 g/L時，BICF1增殖數量上升；堿度為6～10 g/L時，BICF1增殖數量下降；堿度為6 g/L時，BICF1增殖最高。本研究中，鹽堿度過高或過低都會使塔里木裂腹魚尾鰭細胞的存活率降低。紅鯽(red)鰭細胞系被建立被用于抗藥性和抗病性的研究，細胞系可用于毒性篩選和病毒分離的材料(Xiao, 2018)。草魚鰭細胞系用于研究草魚源維氏氣單胞菌對宿主細胞的毒性致死機制(劉明珠等, 2019)；異育銀鯽()尾鰭細胞(GiCF)用于辛硫磷對GiCF毒性研究，表明GiCF可作為農藥的細胞毒性研究材料(趙燕楠等, 2020)。本研究中，塔里木裂腹魚尾鰭細胞系可作為研究鹽堿度對塔里木裂腹魚的影響的材料，可為其選擇育種和功能基因研究提供良好的載體。

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Establishment and the Effect of Salinity of Cell Lines Derived from Tail Fin of

DAI Jincai, NIE Zhulan①, ZHAO Nianhua, REN Yongli, WEI Jie

(College of Animal Science, Tarim University; Key Laboratory of Tarim Animal Husbandry Science and Technology,Xinjiang Production and Construction, Alar, Xinjiang 843300, China)

To establish the caudal fin cell line of, this study employed the tissue block method with fetal bovine serum (FBS) DME/F12 medium forcultivation of the tail fin, using previously established tail-fin cell lines (BICF1) ofIn this study, the effect of NaCl salinity and NaHCO3alkalinity on the proliferation of tail fin cells was investigated using the MTT method. The main results are as follows: the BICF1 suspension culture was propagated to 45 generations. The optimum medium was DME/F12. The optimal FBS concentration was determined to be 20%. The optimum temperature was 25℃. The population doubling time of the 10th generation BICF1 was 28.11 h, showing an "S" type growth. The 6th generation BICF1 in liquid nitrogen was recovered after freezing for 180 days. Trypan blue staining showed that after recovery, (87.85±0.66)% of BICF1 cells were active, and the cells could proliferate and pass to next generation. The BICF1 cell line is free of contamination by bacteria, fungi, and mycoplasma. The sequencing results of mitochondrial 16S rRNA of the 10th generation BICF1 were consistent with the GenBank gene sequence, and the consistency rate of BICF1 and JQ844133.1 was 100%, proving that BICF1 was fromBICF1 cell proliferation increased with salinity of 1, 2, 4, and 6, but decreased with salinity of 6, 8, and 10; BICF1 cell proliferation was the highest at 6. The NaHCO3alkalinity of BICF1 increased at 2, 3, 4, 5, and 6 g/L, whereas the proliferation of BICF1 cells decreased at 6, 7, 8, and 10 g/L, respectively. BICF1 cell proliferation was the highest at 6 g/L. Cell proliferation first increased and then decreased with increasing salinity and alkalinity. This study aimed to provide a scientific basis for the rational development and utilization of genetic resources of,includingthe establishment and protection of the germplasm.

; Tail fin; Cell culture

NIE Zhulan, E-mail: niezhl2004@163.com

10.19663/j.issn2095-9869.20210412003

Q952

A

2095-9869(2022)04-0070-11

*國家自然科學基金(31560721; 31860729)、自治區研究生科研創新項目(TDGRI201918)、國家大學生創新創業訓練計劃項目(202010757007)、中國海洋大學塔里木大學科研合作聯合基金項目(ZHYLH201902)和華中農業大學塔里木大學科研合作聯合基金項目(TDHNLH201702; 2662017PY118)共同資助 [This work was supported by National Natural Science Foundation of China (31560721; 31860729), Research and Innovation Program for Graduate Students of Autonomous Region (TDGRI201918), Undergraduate Innovation and Entrepreneurship Training Program (202010757007), Joint Research Fund between Ocean University of China and Tarim University (ZHYLH201902), and Huazhong Agricultural University and Tarim University Research Cooperation Joint Fund Project (TDHNLH201702; 2662017PY118)].

代金彩，E-mail: 1477496028@qq.com

聶竹蘭，教授，E-mail: niezhl2004@163.com

2021-04-12,

2021-05-22

http://www.yykxjz.cn/

代金彩, 聶竹蘭, 趙年樺, 任永麗, 魏杰. 塔里木裂腹魚尾鰭細胞系的建立及鹽堿度對其增殖的影響. 漁業科學進展, 2022, 43(4): 70–80

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(編輯 馮小花)