明膠基高內相乳液在辣椒素負載中的應用

張櫸，杜杰，王洪霞，馮鑫，張宇昊,2*

1(西南大學 食品科學學院，重慶，400715)2(西南大學，生物學研究中心，重慶，400715)

辣椒素(capsaicin,CAP)是辣椒中呈現辣味的主要成分之一，本身不提供能量。近年來的研究證實辣椒素具有控制血壓、調節血脂、抑制脂肪堆積、鎮痛等多種功能，從而具有控制體重、改善由肥胖引起的糖耐受量受損及慢性疼痛等慢性疾病調理方面的應用前景[1]。然而辣椒素的攝入會對機體產生強烈的灼燒感，對鼻腔、食道及胃腸道黏膜造成刺激[2]，極大地限制了辣椒素在食品領域的應用。此外，辣椒素的低水溶性導致其在水介質中難以擴散，胃腸消化中生物可及性低。因此降低其對機體的刺激性、提高辣椒素的生物可及性對辣椒素的應用具有重要意義。利用O/W型乳液對脂溶性生物活性成分進行包埋是活性成分保護和提高其生物利用率的有效途徑[3]。

本課題組前期的研究表明可以通過谷氨酰胺轉氨酶(transglutaminase，TG)改性明膠制備具有高熱穩定性和良好貯存穩定性的高內相乳液(high internal phase emulsions，HIPEs)[4]。本研究在前期研究基礎上，將辣椒素溶解于大豆油中，制備負載辣椒素的明膠基HIPEs，探究負載辣椒素的明膠基HIPEs的外觀、微觀結構及流變學特性，并研究了HIPEs包埋及TG酶交聯時間對辣椒素氣味的掩蓋作用。進一步通過動態體外胃消化和靜態體外消化模擬實驗研究了辣椒素在HIPEs中的釋放特性和生物可及性等，旨在為降低辣椒素刺激性并提高其生物可及性提供理論指導，并為明膠基HIPEs的應用提供理論基礎。

1 材料與方法

1.1 原料與試劑

A型明膠(來源于豬皮)，美國Sigma-Aldrich公司；大豆油(購于重慶市永輝超市，未經純化)，九三集團；TG酶(標稱酶活200 IU)，上海Foodchem化工有限公司；胃蛋白酶(1∶10 000)，德國BioFroxx生物試劑；脂肪酶(1∶100 000)，上海Macklin生化科技有限公司；辣椒素，上海笛柏生物科技有限公司；膽鹽，上海生工生物工程股份有限公司；無水乙醇，重慶市鈦新化工有限公司；氫氧化鈉、鹽酸，成都市科隆化學品有限公司。所有試劑均為分析純。

1.2 儀器與設備

JA 3003B電子天平，上海精天電子儀器有限公司；QL 901 Vortex渦旋混合器，海門市其林貝爾儀器制造有限公司；HH-4數顯恒溫攪拌水浴鍋，上海新諾儀器設備有限公司；PE 20實驗室酸度計，上海梅特勒-托利多儀器有限公司；Heraeus Multifuge X3R臺式高速冷凍離心機，美國賽默飛世爾科技公司；BX 53 正置熒光電子顯微鏡，日本OLYMPUS公司；T 18 高速分散器，美國IKA公司；MCR 302流變儀，澳大利亞ANTON PAAR公司；KQ-100B超聲波清洗器，昆山超聲儀器有限公司；UltiMate 3000高效液相色譜儀，賽默飛世爾科技有限公司；DHSI-Ⅳ動態仿生消化儀，蘇州曉東宜健儀器設備有限公司。

1.3 實驗方法

1.3.1 負載辣椒素的HIPEs的制備

將A型豬皮明膠加入去離子水中，在25 ℃下溶脹1 h后在60 ℃下攪拌孵育30 min。冷卻至室溫后用0.5 mol/L的NaOH調節pH至6.0。將提前預熱至45 ℃的TG酶溶液(2 mg/mL)添加到明膠溶液中，TG酶與明膠的質量比為0.002∶1，使體系中明膠質量分數為2%。在45 ℃下分別水浴0、1、2、4 h后，沸水浴處理10 min滅酶。最后使用0.5 mol/L HCl將混合物的pH值調節至5.0。以溶解有辣椒素的大豆油為油相，制備負載辣椒素的明膠基HIPEs，置于4 ℃冰箱中備用。根據不同TG酶交聯時間(0～4 h)，負載辣椒素的明膠基HIPEs樣品編碼為GT0-CAP、GT1-CAP、GT2-CAP和GT4-CAP，未負載辣椒素的明膠基HIPEs樣品編碼為GT0、GT1、GT2和GT4，溶解有相同辣椒素含量的大豆油編碼為free-CAP。

1.3.2 辣椒素標準曲線的制備

參考GB/T 21266—2007《辣椒及辣椒制品中辣椒素類物質測定方法》及高艷[5]測定辣椒素的方法對本實驗樣品中的辣椒素含量進行測定。以峰面積為縱坐標，辣椒素標準物質濃度為橫坐標繪制標準曲線，計算得到標準曲線公式y=0.200 7x+0.005，R2=0.999 9。

辣椒素濃度的計算方法見公式(1)：

(1)

式中：W為樣品中辣椒素含量，mg/mL；C為標準曲線中查到的辣椒素含量，μg/mL；50為稀釋倍數。

1.3.3 乳液的外觀及微觀結構

觀察并拍攝乳液的外觀圖像，從宏觀相行為角度評估乳液形成好壞程度。將乳液滴在載玻片上，蓋上蓋玻片，使用正置熒光光學顯微鏡(BX53，OLYMPUS)觀察和拍攝HIPEs的微觀結構。

1.3.4 流變學行為測定

使用流變儀對乳液進行流變學測量。在所有實驗中均使用鋼板(直徑25 mm，間隙1 mm)，頻率為1 Hz，溫度為25 ℃。穩態剪切測試：固定溫度為25 ℃，在0.1～100 s-1的剪切速率下進行穩態剪切測試以獲得HIPEs的黏度變化曲線。頻率掃描測試：設置溫度恒定為25 ℃，應變值恒定為0.5%，在0.1～100 rad/s的角頻率范圍內對HIPEs進行小振幅振蕩頻率掃描測試。

1.3.5 電子鼻測定

參照李穎慧等[6]的方法，取free-CAP(7.5 mL)和辣椒素HIPEs(10 mL)于30 mL進樣瓶中，在25 ℃下平衡30 min后測試，測試流速為1 mL/min，清洗和測試時間均為60 s。每個樣品重復測定4次，使用電子鼻設備自帶的軟件enose進行數據分析，包括主成分分析(principal component analysis,PCA)和線性判別分析(linear discriminant analysis,LDA)。

1.3.6 動態體外胃消化模擬模型及相關指標的測定

參考體內消化的相關實驗數據對動態體外胃消化模擬模型參數進行設置，相關儀器運行參數如下：

實驗溫度為37 ℃。模擬胃液的配方參考靜態體外消化實驗中使用的胃模擬液，胃蛋白酶于實驗開始前加入，即配即用。消化過程中的其他參數如表1所示。消化過程中每30 min收集一次消化樣品，立即測定其pH值，記錄消化過程中胃糜樣品的pH值變化情況。同時記錄每次消化樣品的重量以得到胃排空曲線，計算消化過程中排出的樣品占用樣品初始總質量的比值，得到胃內剩余樣品的占比，計算公式見公式(2)：

表1 動態仿生消化設備運行參數Table 1 Operating parameters of dynamic bionic digestion equipment

(2)

式中：m1表示累計排出的胃糜液體的質量，g；m2表示用于動態體外消化的樣品總質量，g；V表示取樣時累計加入的消化液的體積，mL；ρ表示消化液的密度，g/mL。

參照1.3.2中的方法測定釋放至消化液中的辣椒素含量。

1.3.7 靜態體外消化模擬模型

參照WINUPRASITH等[7]的方法配制模擬胃腸液：模擬胃液(simulated gastric fluid，SGF)pH 2.0，模擬腸液(simulated intestinal fluid，SIF)pH 7.0。

胃消化階段：將4 mL辣椒素HIPEs與16 mL SGF混合在一起，將混合體系pH調節至2.0后加入胃蛋白酶(3.2 mg/mL)，在恒溫水浴搖床中以100 r/min的轉速連續旋轉2 h。腸消化階段：將胃消化后的樣品pH調至7.0結束胃消化。加入6.0 mL SIF和14 mL 膽汁鹽(5.0 mg/mL)，調節體系pH至7.0，5 min 后加入脂肪酶(1.6 mg/mL)，使用磁力攪拌以100 r/min的轉速模擬腸道蠕動。腸消化期間持續監測體系pH，每隔5 min使用0.15 mol/L的NaOH溶液調節體系pH，使pH維持在7.0，并記錄消耗的NaOH的體積持續3 h。整個胃、腸消化階段體系溫度保持在37 ℃。

1.3.8 脂質消化的測定

脂質消化測定方法參考BELLESI等[8]的方法。通過腸消化階段中所用的NaOH溶液量計算得到從乳液中釋放出的游離脂肪酸含量(free fatty acid,FFA)，計算方法見公式(3)：

(3)

式中：CNaOH為使用的NaOH溶液的摩爾濃度，mol/L；VNaOH為消耗的NaOH溶液的體積，mL；Mw為該油的平均摩爾量，880 g/mol；m為HIPEs中大豆油的總質量，g。

1.3.9 辣椒素生物可及性測定

參考古成[9]的方法測定辣椒素的生物可及性。將消化后的混合物在4 ℃下10 000 r/min離心30 min，中間的清液層為混合膠束相。一般認為經過消化后溶解于混合膠束相的辣椒素可以穿過黏液層輸送到上皮細胞，因此測定混合膠束相中的辣椒素含量可用于分析辣椒素的生物可及性，計算方法見公式(4)：

生物可及性/%

(4)

1.4 數據處理

使用統計軟件IBM SPSS 19.0進行分析數據，Origin 9.0用于繪制圖形。每次實驗至少獨立進行3次，數據以平均值±標準偏差的形式表示，同時采用Duncan檢驗結果分析數據之間的差異(P<0.05則數據間存在顯著性差異)。

2 結果與分析

2.1 負載辣椒素的明膠基HIPEs的外觀和微觀圖像分析

前期研究已經證明，2%的明膠微凝膠制備的油相為75%的HIPEs較為穩定[4]。由圖1可觀察到負載了辣椒素的明膠基HIPEs仍舊具有較高的黏度，倒置時保持在玻璃瓶底部而不流動。由光鏡圖可知，乳液的液滴尺寸分布均一，與未負載辣椒素的明膠基HIPEs對比，3 mg/mL辣椒素的荷載對HIPEs的粒徑略有降低，這可能是因為辣椒素的添加使更多的明膠在界面排布，進一步減小了液滴尺寸。還可觀察到TG酶交聯時間對乳液液滴尺寸無明顯影響。

a～c-負載;d-未負載圖1 負載與未負載辣椒素明膠基HIPEs的外觀和微觀圖像Fig.1 Appearance and microscopic images of gelatin-based HIPEs loadedand unloadedcapsaicin

2.2 負載辣椒素的明膠基HIPEs的流變學行為分析

由圖2可以看到，明膠基HIPEs的黏度隨著剪切速率的升高逐漸降低，呈現出剪切變稀的特征，屬于非牛頓流體。辣椒素的添加及TG酶交聯時間對明膠基HIPEs黏度沒有明顯影響，與宏觀觀察的結果一致，可能的原因是油相含量高(>74%)，而明膠連續相(<26%)、辣椒素(3 mg/mL)的占比相對較低，因此TG酶、辣椒素對乳液黏度的影響可以忽略不計。

a-交聯時間為0 h；b-交聯時間為1 h；c-交聯時間為2 h；d-交聯時間為4 h圖2 負載與未負載辣椒素的明膠基HIPEs的黏度變化曲線Fig.2 Viscosity of gelatin based HIPEs loaded and unloaded with capsaicin

圖3展示了HIPEs的模量隨角頻率變化的曲線，G′基本高于G″，表明HIPEs具有較強的網絡結構，體系由彈性結構主導，頻率依賴性變化較小。由圖3可知，TG酶交聯提升了乳液的模量，因為TG酶交聯增加了明膠鏈的長度，水相明膠分子鏈纏結增加，從而明顯增強了乳液網絡結構；當負載辣椒素后，辣椒素中含有羥基等活性基團，可能與明膠存在相互作用，導致吸附至界面的明膠增加，連續相中明膠含量減少，因此負載辣椒素的未交聯乳液表現出更低的模量；對比負載辣椒素的未交聯乳液模量和負載辣椒素的交聯乳液模量，可以發現隨著交聯度的增加，乳液的模量與未負載辣椒素的乳液模量逐漸接近，這可能是因為交聯可能使界面明膠由膠體軟顆粒轉變為連續的膠體層，從而限制了更多連續相中明膠向界面遷移，從而增加了負載辣椒素的交聯乳液的模量。整體上，明膠基辣椒素HIPEs仍舊表現為具有彈性主導的高黏彈性體系，GT1-CAP、GT2-CAP和GT4-CAP表現出較低的頻率依賴性。

a-交聯時間為0 h；b-交聯時間為1 h；c-交聯時間為2 h；d-交聯時間為4 h圖3 負載與未負載辣椒素的明膠基HIPEs的模量隨角頻率(0.1～100 rad/s)的變化曲線(G′為實心符號曲線，G″為空心符號曲線)Fig.3 The modulus of gelatin based HIPEs loaded and unloaded with capsaicin varies with angular frequency (0.1-100 rad/s)

2.3 電子鼻分析

電子鼻是一種快速檢測樣品中揮發性成分的新型人鼻模擬仿生氣味掃描儀，具有快速、客觀、重現性好、便捷等優點，現已廣泛用于食品的分析檢測[10]。圖4展示了分別使用PCA和LDA分析的結果，第一主成分和第二主成分的累積貢獻率大于92%，基本可以代表樣品的主要氣味信息。圖4中每個三角形分別代表不同樣品的數據采集點，三角形在圖中的距離遠近代表樣品間的氣味差異大小[11]。由圖4-a可知，GT0-CAP和GT1-CAP存在部分重疊，說明這2組樣品間氣味相似，同樣的情況也出現在GT2-CAP和GT4-CAP之間，但乳液組與溶解有辣椒素的游離大豆油組(free-CAP)相互獨立，說明使用明膠基HIPEs包埋后的辣椒素氣味與溶解在大豆油中的游離辣椒素有明顯差異。由圖4-b可知，與PCA相比，LDA得到的結果更加集中，對不同的樣品分類更明顯，這樣的現象在先前的研究中也有出現[6]。由于第一主成分的貢獻率大于99%，樣品間的差異主要體現在橫軸方向上的距離大小[12]。值得注意的是，隨著TG酶交聯時間的延長，辣椒素HIPEs的氣味與游離辣椒素的氣味之間的差別逐漸增大，GT4-CAP與free-CAP的差距最大。這可能是因為TG酶催化的靶向共價交聯導致連續相結構更緊密，對內部油滴中荷載的辣椒素氣味的封閉效果更好。通過比較樣品間的距離可發現，HIPEs包埋對辣椒素的氣味有明顯的掩蓋作用，且交聯時間的延長有利于形成更緊密的連續相結構，從而對辣椒素的氣味進行更好地掩蓋，這為辣椒素的應用模式提供了依據。

a-PCA圖;b-LDA圖圖4 溶解在大豆油中的游離辣椒素(free-CAP)和具有不同TG酶交聯時間(0～4 h)的明膠基辣椒素HIPEs的電子鼻分析Fig.4 Electronic nose analysis of free capsaicin (free-CAP) and capsaicin-loaded HIPEs stabilized by gelatin with different TG crosslinking time (0～4 h)

2.4 辣椒素的動態胃消化分析

辣椒素對胃的灼傷作用限制了其在醫療、食品等方向的應用，降低和減緩辣椒素在胃中的釋放有利于保護胃黏膜免受辣椒素的灼傷。已有研究表明，微膠囊和乳液等包埋手段可以有效減緩辣椒素的釋放，減輕辣椒素對小鼠胃黏膜的刺激作用[13-14]。為進一步探究明膠基辣椒素HIPEs在胃消化過程中其微觀結構的變化情況及其對辣椒素的緩釋作用，采用動態仿生胃消化儀器進行了動態體外胃消化研究，設備具體示意圖如圖5-a所示。

消化過程中胃內食糜的pH值根據所攝取食物的量和食物本身的緩沖能力而變化[15]，胃排空和胃液分泌將有助于消化過程中胃內食糜pH值的持續降低[16]。如圖5-b所示，食物的攝入導致前期(0～30 min)胃中的pH值從2.0上升至3.5左右，這與攝入食物的稀釋作用有關。隨著胃排空作用和胃液的持續分泌，胃中pH值逐漸下降，到消化終止時恢復至禁食狀態(pH 2.0左右)，與先前的研究結果基本一致[17]。

動態胃消化過程胃內剩余樣品質量隨時間的變化曲線如圖5-c所示。各組樣品均在消化60 min內完成半數排空，胃消化的前30 min，大豆油的排空速度最快，隨著消化的進行，各組樣品的排空速率逐漸降低，總體排空趨勢相似。在消化終止時，胃內剩余量均低于20%，基本符合先前報道的體內排空曲線[18]。胃內食糜pH變化曲線和胃內剩余量變化曲線符合已報道的體內變化規律，說明在本實驗設置的運動參數下，DHSI-IV動態仿生胃系統能夠較為準確地模擬動態胃消化過程。

a-動態仿生胃設備示意圖;b-動態胃消化過程中胃內食糜pH值隨時間的變化曲線;c-動態胃消化過程中胃內剩余量曲線圖5 動態仿生胃設備示意圖、動態胃消化過程中胃內食糜pH值隨時間的變化曲線和動態胃消化過程中胃內剩余量曲線Fig.5 Schematic diagram of dynamic bionic stomach equipment,variation curve of pH value of gastric chyme with time during dynamic gastric digestion and gastric retention curve during dynamic gastric digestion

由圖6-a可以看到，直接溶解于大豆油中的辣椒素在胃消化前期大量釋放，而包埋于明膠基HIPEs中的辣椒素在胃消化過程中的釋放率顯著降低，這可能是因為直接溶于大豆油中的辣椒素缺乏乳液結構中外層蛋白的保護，從而在動態胃消化過程中的模擬胃蠕動下更易釋放至消化液中；同時HIPEs的高黏度也限制了胃蛋白酶的擴散和液滴中辣椒素的擴散速率。另外，TG酶交聯后的明膠穩定的辣椒素HIPEs對辣椒素的緩釋作用顯著優于未交聯明膠穩定的HIPEs，這避免了辣椒素在胃中的突釋，對保護胃黏膜免受辣椒素刺激、促進辣椒素的應用有重要意義，與GUO等[19]的研究結果一致。

胃消化過程中，由于部分界面蛋白被胃蛋白酶水解，內部油滴泄露，在仿生胃的蠕動下液滴碰撞，泄露的油滴聚結在一起形成大的油滴[20]，從而導致乳液的失穩。動態體外消化過程中不同時間下樣品的外觀和微觀結構圖像如圖6-b所示?？梢园l現，胃消化30 min后，各組樣品的微觀和外觀無明顯變化，僅GT0-CAP的液滴間距離增大，這可能與連續相蛋白被部分降解及消化液的稀釋作用有關。主要的差異體現在胃消化60 min后，各組樣品均出現了不同程度的液滴聚結，同時伴有大油滴的產生，GT0-CAP液滴聚結程度最高。辣椒素的釋放曲線也顯示胃消化60 min后，GT0-CAP的釋放率明顯高于其余3組。從排出的食糜外觀照片可以看到，在消化后期(90～120 min)，由于胃排空作用，大部分乳液被排出，胃內剩余的乳液較少，排出的食糜大部分為消化液。因此在光學顯微鏡下觀察到的液滴較少，GT4-CAP的液滴仍保持相對較小的狀態。這可能是因為TG酶交聯通過催化明膠中的靶向共價交聯促進了緊密明膠共價骨架網絡的形成，在胃消化過程中其穩定結構形成的空間位阻和更大的黏度阻礙了胃蛋白酶在界面的吸附，從而有效保護乳液液滴不被胃蛋白酶破壞，進一步阻礙了辣椒素在胃中的釋放。

2.5 明膠基辣椒素HPIEs體外脂質消化分析

為進一步研究辣椒素在腸道內的消化吸收情況，通過靜態體外消化模擬實驗對明膠基辣椒素HIPEs的脂質消化過程進行分析。脂質在腸道中被脂肪酶水解為FFA，因此常采用FFA的釋放描述脂質的消化情況，圖6-c展示了樣品在消化過程中的FFA釋放曲線。由圖6-c可以看到，FFA釋放發生在腸消化的整個階段，且隨著消化時間的延長，FFA釋放量逐漸增加。經過3 h的腸階段模擬消化后，含有辣椒素的游離大豆油的FFA釋放速率和釋放量最高(40.4%)，乳液樣品中GT0-CAP的FFA釋放量最高，為29.12%，并且隨著TG酶交聯時間的延長，FFA釋放速率降低，最終釋放量也逐漸降低。原因可能是游離大豆油缺乏外層蛋白的保護，在膽鹽的乳化作用下更易與脂肪酶接觸，從而表現出更高的FFA釋放率。而在乳液體系中膽鹽需要先取代界面蛋白，脂肪酶才能進一步與內部的油滴接觸，在界面蛋白的保護下，內部的油滴更難被水解，從而表現出比游離大豆油更低的FFA釋放率[8]。TG酶催化的靶向共價交聯促進了HIPEs連續相形成更致密的三維網絡結構，延緩了膽鹽取代界面蛋白的速率，阻礙了內部油滴與脂肪酶的接觸，從而降低了HIPEs中FFA的釋放速率和釋放量[21]。此外，從整體分析，無論是HIPEs還是游離的大豆油，其脂質消化程度都較低，這與大豆油中較高的長鏈脂肪酸含量有關，類似的結果在其他長鏈油(如玉米油)的脂質消化實驗中也有報道[22]。

2.6 辣椒素生物可及性分析

先前的研究已證實，與直接將活性成分溶解在游離的油中相比，使用乳液荷載可更有效地提高活性成分的生物可及性[23]。如圖6-d所示，直接溶解在大豆油中的辣椒素的生物可及性最低(30.48%)，包埋在乳液體系中的辣椒素的生物可及性顯著升高(P<0.05)。一般認為，活性成分從油相中的釋放與脂肪的水解密切相關，然而具有最高FFA釋放率的游離大豆油在生物可及性測定中卻表現出最低的生物可及性。同時乳液體系中，FFA釋放率隨TG酶交聯時間的延長而降低，但是其負載的辣椒素生物可及性卻并未如預期一樣逐漸降低，反而是GT0-CAP表現出最低的生物可及性。這可能歸因于TG酶交聯形成的高彈性乳液具有緊密的網絡結構，減少了釋放油滴在消化過程中的聚集，從而增加了辣椒素在膠束相的保留量[24]，但是該改善作用與TG酶交聯時間無相關性。馮鑫[24]在由明膠納米顆粒穩定的乳液對β-胡蘿卜素的包埋釋放研究中也發現了類似的生物可及性與FFA釋放率不一致的現象。TAN等[25]認為生物可及性與FFA釋放率的不一致的原因可能是殘留在體系中的明膠在膠束化過程中作為乳化劑促進了活性成分的膠束化，從而提高其生物可及性。

a-辣椒素的釋放率;b-乳液外觀和微觀圖像;c-FFA釋放曲線;d-生物可及性圖6 動態胃消化過程中辣椒素的釋放率、乳液外觀和微觀圖像、負載辣椒素的大豆油與具有不同TG酶交聯時間的明膠基辣椒素HIPEs的FFA釋放曲線和辣椒素的生物可及性Fig.6 Release rate of capsaicin and the appearance and microscopic images of the emulsion during dynamic stomach digestion,FFA release curve of capsaicin-loaded soybean oil and capsaicin-loaded HIPEs stabilized by gelatin with different TG crosslinking time and bioavailability of capsaicin 注：圖6-d中不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)

3 結論

(1)明膠基HIPEs在負載辣椒素后乳液外觀、液滴分布和尺寸沒有明顯變化；辣椒素的負載輕微降低了明膠基HIPEs的模量，但對黏度及頻率依賴性沒有明顯影響，明膠基HIPEs仍表現為具有高黏度和較低頻率依賴性的彈性結構主導體系。

(2)明膠基HIPEs包埋對辣椒素的氣味有明顯的掩蓋作用而且可顯著降低辣椒素在胃中的釋放量，TG酶交聯增強了HIPEs對辣椒素氣味的掩蓋作用，且可更好地防止辣椒素在胃中的突釋。

(3)與未交聯明膠穩定的HIPEs相比，TG酶交聯明膠穩定的HIPEs具有更致密的三維網絡結構，降低了膽鹽對界面蛋白的取代速率，阻礙了脂肪酶與油滴的接觸，從而降低了乳液體系中大豆油的脂質消化率。另一方面，更強的凝膠結構和更穩定的三維網絡結構減緩了液滴聚結，增加了辣椒素在膠束相中的保留率，從而使得辣椒素的生物利用率提高。