干燥方法對水蜜桃微觀結構變化的影響

袁越錦 ，韓思明，徐英英，楊佳琪，張國安，施俊文

（1.陜西科技大學機電工程學院，陜西西安 710021；2.輕工業西安機械設計研究院有限公司，陜西西安 710086）

水蜜桃肉質鮮美，香味濃甜，營養豐富，且桃肉甘酸性溫，具有生津活血、解煩止渴等功效，深受市場歡迎。但水蜜桃不易儲存，通過干燥能夠使它的水分減少，延長保存時間，增加經濟效益。

水蜜桃細胞之間存在細胞間隙，水分和營養物質能夠通過間隙輸送，以維持細胞的生長。干燥過程伴隨的高溫高壓等條件不僅會改變細胞和細胞間隙的原始形狀，還會損失水蜜桃的營養物質。干燥方法不當會嚴重影響細胞間和細胞內的傳熱傳質過程進而影響干燥效率和干燥品質。因此對于干燥過程的研究不應僅聚焦于復水、感官、色澤等方面，更應向細胞微觀結構方向深入研究。

目前，將顯微技術和圖像處理技術結合在一起能夠定量測定細胞微觀結構變化的參數。描述果蔬微觀結構變化的參數主要包括細胞截面積、截面周長、直徑、圓度、孔隙率和分形維數等。Segura等通過分析對流干燥下蘋果片的細胞面積、周長、直徑及圓度等參數，認為干燥過程能顯著改變細胞及細胞間隙的形狀且蘋果片的宏觀變化與細胞微觀變化行為相同，但是干燥過程中物料的宏觀變化與微觀變化的關系未定量描述。Wang 等利用光學顯微鏡和image-pro-plus 軟件獲得了黃桃經不同溫度熱風干燥后的細胞截面積頻率分布曲線，認為高溫會導致細胞形態難以維持。常劍等結合石蠟切片及顯微觀測技術分析了熱風干燥過程中馬鈴薯、蘋果、胡蘿卜的微觀結構并獲得三種物料不同水分比下細胞結構圖像和微觀結構參數（面積、周長、當量直徑等）的分布規律，還得到了微觀結構參數和水分比的線性關系，然而由于干燥過程中微觀結構參數的演化趨勢較為復雜，因此該線性關系無法準確描述水分比和微觀參數之間的關系。近年來，發現利用計算機模擬干燥過程在優化干燥工藝方面有極大的作用，因此許多研究者利用此方法來研究干燥過程中物料的微觀結構變化。但是建立模擬所需的微觀模型和數學模型必須獲得物料微觀結構參數，然而任意水分比下微觀結構參數的測量步驟繁瑣，因此可通過擬合得到水分比和細胞微觀結構參數的函數關系，然后通過該方程更容易獲得任意水分比下的微觀結構參數。

為了描述不同干燥方法下水蜜桃微觀結構的變化規律，結合石蠟切片制備、顯微觀測及圖像處理等技術，獲得了五種不同干燥方法對應的不同含水率下水蜜桃切片的顯微圖像和微觀結構參數分布曲線且分析了微觀結構參數的變化規律。通過多項式擬合建立了水分比與微觀結構參數的擬合方程，將水分比與該方程結合起來能夠預測干燥過程中微觀結構參數。該研究結果為探究不同干燥方式下水蜜桃微觀結構參數隨水分比的變化規律和建立水蜜桃在干燥過程中的數學模型提供重要參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

實驗用的水蜜桃 產于上海，品種為上海水蜜。其質量范圍250±10 g，最大直徑范圍7±0.5 cm，每100 g 桃肉中約含水85 g，脂肪0.1 g，蛋白質0.8 g，碳水化合物7 g，粗纖維4.1 g，還包括維生素C 及胡蘿卜素等其他營養物質總和約3 g，且要求果型圓潤、硬度適中、品質新鮮；番紅溶液（1 g 番紅溶入100 mL 50%酒精）、蒸餾水、冰醋酸、甲醛（40%）、二甲苯、石蠟、中性樹膠、固綠溶液（固綠0.1 g 溶入100 mL 95%酒精）、無水乙醇等 天津市科密歐化學試劑有限公司。

DZF-6090 型真空干燥箱 上海一恒科學儀器有限公司；SFY-60 型紅外線水分測定儀 深圳市冠亞電子科技有限公司；JY104FC 型捷宇高拍儀 福建捷宇電腦科技有限公司；DHG 型熱風干燥箱 上海一恒儀器有限公司；HH-3 型水浴鍋 常州天瑞儀器有限公司；TF-LFD-1 型冷凍干燥箱 上海田楓實業有限公司；E100 型顯微鏡 尼康。

1.2 實驗方法

1.2.1 水蜜桃干燥工藝 以水蜜桃為物料，選擇HAD（60 ℃、風速1 m/s）、VD（60 ℃、0.08 MPa）、FD（預凍時間3 h、預凍溫度-30 ℃）、HA-VD（熱風/真空干燥條件同上、轉換點含水率50%）及FHAD（冷凍/熱風干燥條件同上、轉換點含水率50%）五種不同的干燥方法進行實驗。將同批次的新鮮水蜜桃處理干凈后進行厚度為5 mm 的切片處理，然后在水蜜桃表皮下的相同位置（皮下2～7 mm 區域）進行取樣（切為長10 mm、寬10 mm、厚5 mm的小塊）。

對樣品小塊分別進行HAD、VD、FD、HA-VD和F-HAD 處理，實驗時將樣品小塊分成兩組先后進行以上五種工況下的干燥實驗。第一組樣本小塊在同一個工況下進行5 次實驗，然后在5 次實驗過程中的同一干燥時間計算的5 個水分比求平均值，將該平均值作為樣本小塊在該時間的水分比。每次干燥過程中每隔5 min 對樣品小塊稱重5 次，然后求得平均質量并記錄；稱重后將樣本繼續干燥且前后稱重兩次獲得的平均質量差值小于0.001 g 則認為干燥結束（此時樣本的質量為絕干質量），以此來計算每次實驗中不同干燥時間的含水率和水分比。通過減小稱重時間間隔，多次稱重及增加同一工況下的實驗次數能夠更準確地獲得干燥過程中樣本小塊的水分比到達0.8、0.6、0.4、0.2 時所需的干燥時間。第二組樣本小塊在干燥時根據第一組實驗結果（即對應的水分比到達0.8、0.6、0.4、0.2 的干燥時間）再進行取樣，由于干燥過程中物料收縮不均勻，因此不同干燥方式對應的每個水分比下取5 個顯微觀測樣本。最后，將第二組取得的所有樣品制作成顯微觀測所需的石蠟切片。

1.2.2 水蜜桃組織石蠟切片制備及顯微圖像處理 為了能夠清晰地在顯微鏡下觀察干燥后的水蜜桃組織的微觀結構，采用石蠟切片法將第二組不同水分比下的樣本制成石蠟切片標本（具體流程如圖1 所示）。首先，將第二組干燥實驗中取得的所有顯微觀測樣品浸入甲醛（40%，5 mL）—冰醋酸（5 mL）—酒精（70%，90 mL）固定液至少24 h，接著將樣本浸入不同質量分數的酒精（35%酒精中1.5 h—75%酒精中4 h—85%酒精中2 h—90%酒精中2 h—95%酒精中1 h—無水乙醇中1 h）中脫水；然后使用二甲苯對樣品進行透明處理，接著將樣品放入60 ℃融化石蠟（1 h，重復3 次）中浸蠟。其次，在熱風溫度為60 ℃的干燥箱中進行包埋，包埋之后將樣品放入切片機切片，厚度為5 μm 左右；再將切片在60 ℃烘箱內烘干后依次浸入二甲苯（20 min，重復3 次）、無水乙醇（5 min，重復2 次）、75%酒精（5 min）和蒸餾水中脫蠟；將脫蠟后的切片先浸入番紅染液染色后，再浸入不同濃度的酒精溶液（50%酒精中5 s—70%酒精中5 s—80%酒精中5 s—90%酒精中5 s）脫色；接下來使用固綠染液染色60 s，再利用醇苯（5 min）、二甲苯（5 min，重復2 次）對切片進行透明。最后，將透明后的切片放置于載玻片上，在30 ℃烘箱內烘干后蓋上蓋玻片，并用中性樹膠封片。通過顯微鏡放大100 倍進行觀察和拍照，然后利用Matlab 和Photoshop 軟件捕捉細胞結構的原始圖像。

圖1 石蠟切片制備流程圖Fig.1 Flow chart of paraffin section preparation

圖2a 為冷凍干燥過程捕捉的細胞原始圖像，在Matlab 中調用rgb2gray 函數先將顯微鏡拍攝的原始圖片轉換成灰度圖像，如圖2b；然后調用graythresh和im2bw 函數對細胞圖像進行閾值分割，將灰度圖像進行二值化表達，以此識別細胞的邊緣輪廓，如圖2c；最后利用photoshop 軟件消除二值圖像內部雜質，填充邊緣及孔隙并調整圖像亮度和對比度，最終圖像如圖2d。

圖2 圖像處理過程Fig.2 Image processing process

1.3 數據處理及測量指標

對得到的每張原圖進行圖2 中的圖像處理過程得到對應的最終圖像，再利用Matlab 軟件中bwlabel、regionprops、bwperim 等函數測量和計算所有最終圖像上每個細胞截面積和截面周長，并根據如下公式利用Matlab 編程計算水蜜桃細胞的圓度，壁面粗糙度及孔隙率。

細胞圓度S：

式中：A 為圖像上的細胞截面積，m；L 為圖像上的細胞截面周長，m。

細胞壁面粗糙度r：

式中：L 為細胞圖像上的實際周長，m；L表示與其細胞相似度一致的正多邊形的周長，m。

孔隙率e：在截面上，多孔介質內部孔隙和多孔介質總面積的比值：

式中：A為多孔介質內部細胞面積，m；A為多孔介質內部總面積，m。

含水率：干燥過程中某一時刻稱取5 次物料的質量并求得平均質量，然后利用該時刻的平均質量結合物料絕干質量計算該時間點樣品的含水率w，其計算公式如下：

式中：m為t 時刻取樣物料的平均質量，kg；m 為物料的絕干質量，kg。

水分比：干燥過程中樣品某一時刻的含水率與樣品初始含水率之比（即w/w）。

將所有計算結果以文本格式自動保存，利用Excel 軟件對編程計算得到的不同干燥方式中每個水分比下5 個石蠟切片最終圖像對應的微觀結構參數求取平均值。將微觀結構參數平均值的總分布范圍劃分為n 個小區間，統計每個細胞微觀參數在不同的小區間內的細胞數量，再使用該小區間內的細胞數量除以每張圖像上的細胞總數得到此小區間內的微觀結構參數分布頻率，計算公式如下：

式中：p為第m 個小區間內微觀結構參數的分布頻率；k為第m 個小區間內的細胞數量；K為每張圖片上的細胞總數；1≤m≤n 且m、n 為整數。最后將所有小區間內的微觀結構參數分布頻率進行統計，并使用Origin 軟件繪制各微觀結構參數的頻率分布曲線圖。

2 結果與分析

2.1 不同干燥方式下水蜜桃細胞截面積的變化規律

從圖3 中可以看出，新鮮水蜜桃的細胞截面積分布范圍是600～78000 μm。HAD 過程中，面積為40000～78000 μm的細胞數量明顯降低，面積為0～45000 μm的細胞數量略有增加，同時出現少部分面積大于80000 μm的細胞。這說明HAD 能夠使水蜜桃細胞顯著收縮，但是高溫會導致部分細胞的細胞壁被破壞，從而導致幾個細胞破裂后融合在一起形成“大細胞”。與HAD 相比，VD 能更有效保持物料的原始形狀。水分比由1 降至0.6 的過程中細胞截面積變化幅度小，細胞截面積峰值處于區間8000～10000 μm內；繼續干燥至水分比為0.2 時，細胞截面積在15000 μm下的細胞數目明顯增加，小于20000 μm的細胞約占60%。這主要是因為水分的大量蒸發導致細胞失去支撐，再加上負壓的共同作用造成了細胞截面積減小。FD 能最大程度地維持細胞的原始形狀。從水分比為1 下降至0.8 時，細胞截面積平均值增加6%，這主要是因為在冷凍過程中細胞內水凝結成冰導致細胞略有膨脹；當水分比從0.6 下降至0.4 時，細胞內的部分冰晶由于真空條件直接升華，造成細胞內外存在壓差，故細胞截面積有細微減??；水分比繼續下降至0.2 時，細胞截面積平均值又有所增大，原因是細胞內剩余的冰晶持續升華為氣體，氣體向外擴散導致對細胞的“膨脹”作用加劇。

圖3 不同干燥方法下細胞截面積頻率分布曲線圖Fig.3 Frequency distribution curve of cell area under different drying methods

HA-VD 條件下水分比從1 降至0.5 這一階段為HAD 過程，面積為16000～78000 μm的細胞數量明顯下降，面積在600～16000 μm的細胞數量明顯增加，因此細胞收縮明顯。轉入VD 過程后，當水分比0.4 時細胞截面積最大值為6000 μm，水分比從0.4 降至0.2 時細胞截面積大于25000 μm的細胞數量增長8%，細胞截面積均值增大，可能是由于HAD過程破壞了細胞壁，使得VD 過程加劇了細胞破裂變形，再加上VD 過程細胞收縮率降低共同導致大細胞數目增多。F-HAD 條件下，水分比從1～0.6 這一階段為FD 過程。水分比降至0.6 時，由于冰晶升華，因此20000 μm以下的細胞占比超過60%。轉入HAD 過程后，主要是由于FD 過程中冰晶升華破壞了大量細胞結構，因此HAD 會導致大量面積較小的細胞破裂后在發生融合，故0～17000 μm的細胞數量明顯減少，其融合導致面積在17000 μm以上的細胞數量顯著增加。

隨著干燥過程的進行，分布曲線的偏移量，曲線峰值增大或減小的程度各不相同，可能的原因是干燥過程中細胞內的水分轉移不均勻導致細胞的收縮變形是不連續的。

2.2 不同干燥方式下水蜜桃細胞截面周長的變化規律

如圖4，水蜜桃鮮樣細胞截面周長主要分布范圍為0～1300 μm。HAD 過程中，周長頻率分布曲線峰值變化不大，但是水分比至0.2 時由于細胞破裂、融合和變形導致細胞截面周長大于750 μm 的細胞數量增加了6%。VD 過程中細胞發生形變但基本上不發生細胞破裂及細胞融合。當水分比至0.8 時細胞截面周長在1000 μm 以下的細胞數量減少了10%；水分比從0.8 降至0.2 的過程中，截面周長主要分布區間變為100～1780 μm，整個區間內幾乎大部分曲線均右移但移動幅度不大，因此幾乎所有細胞的截面周長略有增大。FD 過程中細胞截面周長呈增大趨勢。水分比0.8 時，細胞截面周長均值增長10%左右；水分比0.6 時，細胞截面周長頻率分布曲線左移，表明細胞失去較多水分皺縮。水分比降低至0.2 時與鮮樣細胞相比細胞截面周長在500 μm 以上的細胞數量重新增加。

圖4 不同干燥方法下細胞截面周長頻率分布曲線圖Fig.4 Frequency distribution curve of cell perimeter under different drying methods

HA-VD 過程中水分比降至0.2 時，有50%左右的細胞截面周長超過了670 μm，與最初未干燥的水蜜桃細胞相比提升了23%。F-HAD 過程中，當水分比為0.2 時與鮮樣細胞相比，頻率分布曲線右移明顯，這主要是由于后半程的HAD 使細胞皺縮形變導致所有細胞截面周長變大。

2.3 不同干燥方式下水蜜桃細胞圓度的變化規律

從圖5 可得水蜜桃鮮樣細胞大部分圓度分布在0.4～0.9 之間，圓度大于0.85 的細胞占比約26%。HAD 過程中，從整體上看水蜜桃細胞圓度是減小的。水分比為0.2 時的細胞圓度均值相比于水分比0.4時有所增加，導致這一現象的原因是細胞破裂后又發生了融合。HAD 會導致細胞收縮，變形及細胞壁折疊，這都是細胞圓度發生變化的原因。VD 過程中，從整體上看細胞圓度是降低的。當水分比為0.8 時，細胞圓度分布范圍主要為0.3～0.8，隨著干燥過程的進行圓度頻率分布曲線持續左移，這表明細胞圓度會隨著水分比的持續降低而降低，水分比為0.2 時曲線峰值對應的圓度為0.35。FD 過程中，水分比從1 降為0.8 時細胞圓度變化幅度不大，75%以上的水蜜桃細胞圓度大于0.4，當水分比從0.8 降至0.6 時細胞圓度大幅度降低。水分比從0.6 降至0.2 這一過程中細胞圓度變化幅度較小，水分比0.2 為時細胞圓度主要分布在0.2～0.7 之間。

圖5 不同干燥方法下細胞圓度頻率分布曲線圖Fig.5 Frequency distribution curve of cell roundness under different drying methods

HA-VD 過程中細胞圓度總體上呈減小趨勢，但水當分比為0.2 時，圓度大于0.5 的細胞數量比VD 多10%左右，造成此現象的原因主要是前半程采用了不同的干燥方法。這表明相比于VD，熱風干燥能更好的維持細胞圓度。F-HAD 過程中水分比1～0.5 之間為FD 過程，細胞圓度減小幅度大，其頻率分布曲線左移并與FD 過程類似，當轉入HAD 過程后，高溫使得細胞變形、收縮和破裂，因此導致細胞圓度持續減小。

2.4 不同干燥方式下水蜜桃細胞壁面粗糙度的變化規律

由圖6 可知，水蜜桃鮮樣細胞壁面粗糙度主要分布在1～2 之間。干燥過程中隨著水分比的降低，細胞壁將產生褶皺。HAD 過程中水分比從1 降至0.6 這一階段，細胞壁快速皺縮導致細胞變形較大，當水分比降至0.6 時，曲線峰值對應的壁面粗糙度為1.5，此時壁面粗糙度主要分布在1.1～2.5 之間，這表明壁面粗糙度明顯增加；在水分比從0.6 降至0.2 時這一過程中，由于部分細胞破裂后發生融合，因此曲線左移但移動幅度較小，這表明壁面粗糙度略微減小。VD 過程中水分比為0.8 時，70%的水蜜桃細胞壁面粗糙度在1.2 以上，曲線峰值對應的壁面粗糙度為1.3。與HAD 相比，VD 過程中細胞壁面粗糙度頻率分布曲線向右移動更加緩慢。水分比為0.2 時，曲線峰值對應的壁面粗糙度為1.45，壁面粗糙度在1.26～1.75 之間的細胞占比超過60%。FD 相比其它干燥方式其平均壁面粗糙度最小且水分比從1 降至0.8 這一過程中壁面粗糙度變化幅度不大；水分比從0.8 降至0.6 這一過程中曲線右移明顯，因此壁面粗糙度明顯增大；水分比從0.6 至干燥結束，此階段壁面粗糙度變化不明顯；因此對于FD 過程，壁面粗糙度增大主要發生在前半程，后半程干燥過程幾乎不變。

圖6 不同干燥方式下細胞壁面粗糙度分布頻率曲線圖Fig.6 Frequency distribution curve of cell wall surface roughness under different drying methods

HA-VD 前半程壁面粗糙度的變化與單一HAD過程幾乎相同；當水分比降至0.6 以下時，曲線峰值對應的壁面粗糙度都在1.3～1.5 之間；由圖6（d）與單一HAD 相比，HA-VD 的壁面粗糙度均值介于HAD和VD 之間，這表明組合干燥進一步降低了細胞壁面粗糙度。F-HAD 整個過程中曲線一直右移，這表明壁面粗糙度持續增大，與單一HAD 過程相比其壁面粗糙度均值增大幅度明顯降低。

2.5 不同干燥方式下水蜜桃細胞截面孔隙率的變化規律

由圖7 可得，在HAD 過程中孔隙率先增大后減小，這主要是由于高溫會導致細胞收縮并破壞細胞壁，隨后發生破裂和融合；但這與香蕉、芒果等水果干燥時的孔隙率變化趨勢正好相反,其趨勢為先略微減小后增加。造成這種差異的原因主要是香蕉、芒果等水果干燥末期細胞的破裂融合程度沒有水蜜桃劇烈。VD 和FD 過程中孔隙率一直增大。FD 過程中水分比為0.8～0.4 時孔隙率增長較快，這是由于冰晶升華的過程中細胞主要發生形變且細胞截面積減小，導致孔隙率的增大。FD 與VD 過程均主要發生細胞變形，但是細胞截面變形小且細胞破裂和融合的程度遠低于HAD。

圖7 細胞截面孔隙率變化直方圖Fig.7 Cell cross-section porosity histogram

HA-VD 前半程孔隙率的變化與HAD 過程類似，轉入VD 后，大部分細胞截面縮小的情況下，細胞截面積均值卻增大（即小細胞數量減少，大細胞數量增加，導致最后階段孔隙率減?。?，這一趨勢與VD 略有不同。整個F-HAD 過程中孔隙率的變化與HAD類似，水分比為0.2 時孔隙率略有減小，這是由于FD后的稀疏孔隙分布在HAD 高溫作用下細胞發生收縮，破裂及融合，故導致大細胞數量增加，因此孔隙率減小。

2.6 不同干燥方式下水分比與微觀結構參數的關系

在干燥過程中，為了能夠較易獲取任意水分比下的微觀結構參數，將水分比與微觀結構參數進行擬合，只需測量干燥過程中任意時刻樣本的水分比后代入擬合公式即可獲得此時刻細胞的微觀結構參數，擬合結果如圖8。由于水蜜桃細胞微觀結構參數與水分比呈非線性關系，故選取下列擬合公式：

式中：Y 表示細胞微觀結構參數均值比；X 為水分比；a,b,c,d 為系數，見表1。

所有干燥過程完成后水蜜桃細胞截面積均值有增有減，截面周長均值、壁面粗糙度均值、孔隙率都增大，而細胞圓度均值減小。根據表1，Y 和X 的（除A/A（HAD）及L/L（HA-VD）外）均在0.9 以上。由圖8 及表1 中的擬合系數綜合分析，不同干燥方式對細胞大小和形狀參數均值影響程度不同，其中包含HAD 干燥過程中對細胞截面積均值的影響較為劇烈；VD 和FD 對細胞截面周長均值影響程度更大；VD 對于細胞圓度均值影響最大而HAD 則最??；VD 對于細胞壁面粗糙度均值影響較小而HAD則最大；VD 對孔隙率的影響程度最大且干燥過程中孔隙率一直在增加。

圖8 不同干燥方式下水蜜桃細胞微觀結構參數均值比與水分比擬合曲線Fig.8 The correlation between the cell parameter ratios and the moisture ratio during different drying methods by polynomial fitting

表1 不同微觀參數的擬合系數及決定系數Table 1 Fitting coefficients and determination coefficients of different microscopic parameters

由表中的可得，HAD 過程中圓度、壁面粗糙度和孔隙率，VD 過程中細胞截面周長、圓度及孔隙率，FD 過程中的細胞截面周長、壁面粗糙度和孔隙率，HA-VD 過程中的圓度、壁面粗糙度及孔隙率，以及F-HAD 過程中的細胞截面積，周長，孔隙率和壁面粗糙度與水分比的擬合效果均較好，以上參數均可作為建立不同干燥方式下宏微觀關系式時可選擇的水蜜桃細胞微觀結構參數的代表。

3 結論

選擇細胞截面積，截面周長，圓度，壁面粗糙度和孔隙率為微觀結構參數，研究了不同干燥方法下水蜜桃細胞微觀結構的變化規律，得出如下結論：

水蜜桃微觀結構發生變化的階段一般是在HAD前半程（水分比1～0.5）以及VD 和FD 的后半程（水分比0.5 以下）。選取水分比作為干燥過程中的宏觀參數，在不同干燥方式下建立了水分比與細胞微觀參數的擬合方程。結果表明細胞截面積均值的變化程度為：FD＜HAD＜VD＜HA-VD＜F-HAD，截面周長均值變大的幅度依次為：HAD＜HA-VD＜VD＜F-HAD＜FD，細胞圓度均值變小的程度依次為：HAD＜FD＜FHAD＜HA-VD＜VD，細胞壁面粗糙度均值增大幅度依次為：F-HAD＜VD＜FD＜HA-VD＜HAD，孔隙率增大的程度依次為：FD＜F-HAD＜HAD＜HA-VD＜VD。因此與單一干燥方法相比，相對應的組合干燥能夠顯著抑制細胞截面周長，圓度，壁面粗糙度及孔隙率的變化。

不同干燥方法對細胞大小和形狀參數均值的影響程度明顯不同，其中，HAD 干燥過程中對細胞截面積均值的影響較為劇烈；VD、FD 及F-HAD 對細胞截面周長均值影響程度更大但差異不大；HAD 對于細胞圓度均值影響最小而VD 則最大；VD 對于細胞壁面粗糙度均值影響較小而HAD 則最大；VD 對孔隙率均值的影響最大，但是不同干燥方法對干燥結束后孔隙率的影響差異不大。