歐洲鰻鱺RIG-I基因的克隆、序列特征分析與原核表達

李英英，陳 曦，楊金先，陳 強，宋鐵英，葛均青

（1.福建省農業科學院生物技術研究所，福州 350003；2.福建省養殖動物營養與新型飼料企業工程技術研究中心，福州 350003）

維甲酸基因I（retinoic acid-inducible gene I，RIG-I）與黑色素瘤分化相關基因5（melanoma differentiation-associated gene 5，MDA5）、實驗遺傳和生理基因2（laboratory of genetics and physiology 2，LGP2）都屬于RIG-I樣受體（RIG-I like receptors，RLRs），是DExD／H box RNA解旋酶家族的成員［1］，可識別病原微生物表面的病原相關分子模式（pathogen associated molecular patterns，PAMPs），與下游接頭分子結合，產生信號級聯放大效應，激活宿主的天然免疫信號通路，誘導干擾素（IFN）和促炎因子等抗病毒效應分子的表達［2-3］。RIG-I和MDA5的結構和功能類似，N端都有兩個串聯的半胱天冬酶富集結構域（CARD），是病毒RNA的胞質傳感器，在病毒入侵時識別病毒mRNA并啟動RIG-I樣受體與其特定的配體結合，誘導機體產生IFN和炎癥因子，抵御病毒侵襲［4］；LGP2的N端缺少CARD結構域，不能傳遞病毒識別信號，但其對RLR信號通路有調控作用［5-8］。盡管RIG-I和MDA5的結構和功能都類似，但RIG-I偏向于識別短鏈dsRNA和5＇PPP dsRNA［9］，未被dsRNA刺激時處于自抑制狀態［10］；而MDA5偏向于識別長鏈dsRNA，未發現其存在自我抑制的狀態［11］。RIG-I既可識別RNA病毒，也可識別DNA病毒；而MDA5僅可識別RNA病毒［12］。因此，在DNA病毒侵染宿主的過程中，RIG-I及其介導的免疫反應在宿主抗病毒免疫應答中發揮重要作用。

鰻鱺屬（Anguilla）魚類是我國重要的經濟魚類，其產值在水產品出口貿易中占有重要地位。隨著集約化養殖的發展，鰻鱺養殖期間病害頻發，給業者造成巨大的經濟損失，嚴重阻礙行業的健康發展。鰻鱺“脫黏敗血綜合征”是養殖鰻鱺幼鰻期高發的傳染性疫病，病鰻主要出現“紅頭”、“脫黏”和“敗血”等癥狀。前期研究中，利用鰻鱺卵巢細胞系（eel ovary cell line，EO）從患“脫黏敗血綜合征”病鰻體內分離出鰻鱺皰疹病毒（Anguillid herpesvirus，AngHV）［13］，證 實 了AngHV是鰻鱺“脫黏敗血綜合征”的致病病原［14］。

AngHV是皰疹病毒目（Herpesvirales）魚蛙皰疹病毒科（Alloherpesviridae）鯉皰疹病毒屬（Cyprinivirus）的線性雙鏈DNA病毒。前期的蛋白質組學分析和進一步的qPCR驗證結果表明，感染AngHV后，鰻鱺皮膚黏液的RIG-I基因及其介導的RLRs信號通路上的多個基因被激活。本研究設計引物，從歐洲鰻鱺（Anguilla anguilla）體內克隆出RIG-I基因，對其進行生物信息學分析，并在大腸桿菌內表達了RIG-I基因，以期為后期制備RIG-I多克隆抗體和進一步探索RIG-I介導的天然免疫在鰻鱺抵御AngHV侵染過程中的作用機制提供研究基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

實驗鰻鱺為福建省農業科學院生物技術研究所實驗室內養殖群體。2×Phanta Max Master Mix、5min TA／Blunt-Zero Cloning Kit購自南京諾唯贊生物科技股份有限公司，PrimeScriptTMII 1stStrand cDNA Synthesis Kit、DNA Marker購自寶日醫生物技術（北京）有限公司，膠回收試劑盒、質粒抽提試劑盒購自生工生物工程（上海）股份有限公司；引物均由生工生物工程（上海）股份有限公司合成。

1.2 方法

1.2.1 組織總RNA提取及cDNA合成

取歐洲鰻鱺的內臟組織（肝臟、脾臟和腎臟），Trizol法提取總RNA，超微量紫外分光光度計測定其濃度和純度；每個樣品取500 ng RNA，用PrimeScriptTMII1stStrand cDNA Synthesis Kit反轉錄合成cDNA，-20℃保存備用。

1.2.2RIG-I基因的克隆

根據前期轉錄組測序獲得的歐洲鰻鱺RIG-I基因mRNA序列，用DNASTAR lasergene V7.1設計特異性擴增歐洲鰻鱺RIG-I基因的引物對：RIG-I RW（ACCGGGGACGCGTTGAGTAAGC）和RIG-I FW（TATCCAAAGCGACGAGTGTGAAGC）。以反轉錄得到的cDNA為模板，進行PCR擴增，擴增產物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測，切膠純化回收目的片段。將目的片段克隆至pCE2-TA／Blunt-Zero載體，用PCR鑒定后選取陽性菌株，進行測序驗證。

1.2.3RIG-I基因序列的生物信息學分析

用DNASTAR lasergene V7.1分析查找擴增片段中的ORF序列，利用NCBI的BLAST在線工具對擴增獲得的序列進行同源性分析（https：／／blast.ncbi.nlm.nih.gov／Blast.cgi？PROGRAM＝blastn＆PAGE_TYPE＝BlastSearch＆LINK_LOC＝blasthome）；用Protparam分析核苷酸及氨基酸序列的組成成分和理化性質（http：／／web.expasy.org／protparam／）；用TMHMM2.0分析預測蛋白質跨膜結構域（https：／／services.healthtech.dtu.dk／service.php？TMHMM-2.0）；用SignalP-5.0分析預測蛋白信號肽結構（http：／／www.cbs.dtu.dk／services／SignalP／）；用PSORT IIPrediction進行亞細胞定位（http：／／psort.hgc.jp／form2.html）；用HNN預 測 蛋 白 質 二 級 結 構（http：／／npsa-pbil.ibcp.fr／cgi-bin／npsa_automat.pl？page＝／NPSA／npsa_hnn.html）；用CDD分析基因蛋白保守功能結 構 域（https：／／www-ncbi-nlm-nih-gov.frodon.univ-paris5.fr／Structure／cdd／wrpsb.cgi）。

1.2.4 表達質粒的構建

根據測序得到的歐洲鰻鱺RIG-I基因序列（GenBank序列號：ON873727），在其ORF序列前端添加NdeⅠ酶切位點、ATG起始密碼子和His tag，在末端添加終止密碼子及HindⅢ酶切位點（NdeⅠ--ATG--His tag--RIG-I--Stop codon--HindⅢ，Protein Length＝947），合成該序列后克隆至pET-30a載體，提取質粒后雙酶切鑒定，獲得30a-RIG-I表達質粒。

1.2.5RIG-I基因的誘導表達

將質粒30a-RIG-I轉化至感受態E.coliBL21（DE3）細胞，挑選陽性克隆，接種于LB液體培養基中。37℃、200 r·min-1培養至OD為0.6～0.8時，加入終濃度為0.5 mmol·L-1的IPTG，置于15℃培養16 h。離心收集細菌菌體，超聲破碎后分別取細胞裂解液、裂解液上清和裂解液沉淀進行SDS-PAGE分析。

1.2.6 表達RIG-I的western blot驗證

取誘導后的裂解液上清液進行SDS-PAGE電泳［設置Multiple Tag（Purified）（南京金斯瑞生物科技有限公司）作為His-Tag陽性對照］，半干法轉移至PVDF膜，用含5%脫脂奶粉的TBST緩沖液37℃封閉1 h，TBST緩沖液洗膜后，置于1∶3 000倍稀釋于TBST中的鼠抗His-Tag單克隆抗體（英國艾博抗生物技術有限公司）室溫孵育1 h，TBST緩沖液洗膜后，置于1∶15 000倍稀釋于TBST緩沖液中的HRP標記的羊抗鼠IgG（美國Cell Signaling Technology，CST）室溫孵育1.5 h，TBST洗膜后，采用Super ECL Plus化學發光液（北京蘭博利德生物技術有限公司）顯色，用ChemiScope 6000 Touch成像系統（上海勤翔科學儀器有限公司）拍照。

2 結果與分析

2.1 歐洲鰻鱺RIG-I基因的克隆

設計引物對RIG-IRW／RIG-IFW，利用PCR從合成的歐洲鰻鱺cDNA中擴增出約3 361 bp的條帶（圖1），克隆至pCE2-TA／Blunt-Zero載體后測序，經BLAST比對分析，證實成功克隆了歐洲鰻鱺的RIG-I基因。

圖1 歐洲鰻鱺RIG-I基因的PCR擴增Fig.1 PCR amp lification of Anguilla anguilla RIG-I

2.2 歐洲鰻鱺RIG-I基因的生物信息學分析

DNASTAR lasergene V7.1分析表明，歐洲鰻鱺RIG-I基因的ORF序列長度為2 823 bp堿基，編碼940個氨基酸；Blast的結果表明，歐洲鰻鱺RIG-I基因與GenBank中日本鰻鱺（A.japonica）RIG-I基因的序列（MK838769.1）同源性為96.71%，有93 bp堿基發生點突變，對應52個氨基酸發生點突變（圖2）。

圖2 歐洲鰻鱺RIG-I的基因和氨基酸序列Fig.2 Gene and am ino acid sequence of Anguilla anguilla RIG-I

Protparam分析顯示，歐洲鰻鱺RIG-I蛋白分子量約為108 kDa，等電點為6.31，屬酸性蛋白；不穩定系數為42.58，較不穩定；總平均親水性系數為-0.487，屬親水性蛋白；不存在跨膜結構；無信號肽。亞細胞定位顯示，65.2%位于細胞質，21.7%位于細胞核，8.7%位于細胞骨架，4.3%位于過氧化物酶體。HNN預測結果顯示，RIG-I蛋白的二級結構中α-螺旋（alpha helix）占47.55%，延伸鏈（extended strand）占15.11%，無規則卷曲（random coil）占37.34%。CDD分析結果表明，RIG-I蛋白有6個保守功能區，其在氨基酸序列上的位置及所屬蛋白家族如表1所示，2～91 aa和102～190 aa屬于DD超家族，254～456 aa屬于DEAD-like_helicase_N超家族；621～755 aa屬于DEAD-like_helicase_C超家族；471～604 aa和819～932 aa屬于不同的RIG-I_C家族。

表1 歐洲鰻鱺RIG-I蛋白的CDD分析結果Tab.1 CDD analysis of Anguilla anguilla RIG-I

2.3 歐洲鰻鱺RIG-I基因的原核表達

將添加了酶切位點和His-tag的RIG-I基因的ORF序列克隆至pET-30a載體，用NdeⅠ／HindⅢ進行雙酶切（圖3），結果出現約2 844 bp的特異性條帶，表明成功構建表達質粒30a-RIGI。將質粒30a-RIG-I轉化至E.coliBL21，IPTG誘導表達后進行SDS-PAGE分析，結果顯示，與未經誘導的載體相比，經15℃誘導16 h后在全菌、裂解液上清和裂解液沉淀約108 kDa處均出現明顯的蛋白條帶，與預期歐洲鰻鱺RIG-I蛋白大小一致，且在細胞裂解液沉淀中的蛋白含量明顯高于上清，說明該蛋白可溶性較差，主要分布于包涵體內（圖4-a）。進一步的western blot分析顯示，含原核表達質粒30a-RIG-I的誘導菌體可被His-Tag單克隆抗體特異性檢測出約108 kDa的蛋白條帶，這與表達蛋白的預期大小一致，而His-Tag對照檢測到的蛋白大小約為40 kDa（圖4-b），表明實現了歐洲鰻鱺RIG-I基因在E.coliBL21（DE3）中的表達。

圖3 質粒30a-RIG-Ⅰ的酶切鑒定Fig.3 Restriction enzyme digestion of plasm id 30a-RIG-Ⅰ

圖4 SDS-PAGE和western blot分析歐洲鰻鱺RIG-I基因在大腸桿菌中的表達Fig.4 SDS-PAGE and western blot analysis of the expression of Anguilla anguilla RIG-I in E.coli

3 討論

相較于哺乳動物，魚類的獲得性免疫系統分化不完全［15］，其抵御病原侵襲更依賴其天然免疫系統。大量研究表明，病毒侵染時，RIG-I介導的天然免疫在魚類抵御病毒侵襲的過程中發揮著重要作用［12］，CHEN等［16］的研究發現，在神經壞死病毒（nervous necrosis virus，NNV）侵染斑馬魚的過程中，RIG-I被激活并特異性的介導II型IFN-I的產生；LIU等［17］通過轉錄組和蛋白質組聯合分析發現，Ⅱ型鯉皰疹病毒（Cyprinid herpesvirus 2，CyHV-2）感 染 銀 鯽（Carassius auratus gibelio）后，RIG-I及其介導的信號通路內的調節因子會被激活。前期研究中，通過蛋白質組分析發現，感染AngHV的歐洲鰻鱺體內RIG-I蛋白表達量顯著上調，其介導的天然免疫信號通路上的多個基因也被激活，表明鰻鱺抵御AngHV侵染的過程中，RIG-I介導的天然免疫發揮著重要作用。FENG等［18］和HUANG等［19］均克隆鑒定了日本鰻鱺的RIG-I基因，但二者鑒定到的兩個日本鰻鱺RIG-I基因亞型AjRIG-I和AjRIG-Ib同源性僅為39%，本文鑒定到的歐洲鰻鱺RIG-I基因與AjRIG-Ib的同源性達到96.71%，僅部分堿基發生點突變，而與AjRIG-I的同源性較低，該結果可為研究鰻鱺RIG-I基因提供參考資料。

生物信息學分析結果表明，RIG-I蛋白主要位于細胞質中，較不穩定，該結果與此前報道的RIG-I是病毒RNA胞質傳感器［4］，未被dsRNA刺激時處于自抑制狀態［10］相一致。哺乳動物RIG-I蛋白一般有4個保守功能區，從N端到C端依次為：兩個串聯的CARD結構域，DEx D／H-box類RNA解旋酶結構域和C端結構域（CTD）。CDD預測結果中，歐洲鰻鱺RIG-I蛋白有6個保守功能區，從N端開始，前兩個均屬于DD超家族，第三和第五個分別屬于DEAD-like_helicase_N超家族和DEAD-like_helicase_C超家族，第四個和第六個屬于不同的RIG-I_C家族。DD超家族是蛋白質互作模塊中最大的一類，在細胞凋亡、壞死和免疫細胞信號通路中發揮著關鍵作用，包含4個亞科：DD，death effector domain（DED），CARD和pyrin domain（PYD）［20］。CARD_RIG-I_r1（cd08816）和CARD_RIG-I_r2（cd08817）兩個結構域均屬于DD超家族中的CARD亞科，表明歐洲鰻鱺RIG-I蛋白與哺乳動物的RIG-I蛋白類似，在N端也有兩個串聯的CARD。歐洲鰻鱺RIG-I蛋白的C端具有CTD結構域，屬于RIG-I_C家族；但預測的結果中，歐洲鰻鱺RIG-I蛋白DEAD-like_helicase_N端結構域和一個DEADlike_helicase_C端結構域之間還有一個結構域屬于RIG-I_C家族，該結構域與C端的CTD結構域屬于不同的RIG-I_C家族，該結構對歐洲鰻鱺RIG-I蛋白的功能有何影響，有待進一步的研究驗證。