羊種布魯菌omp25的原核表達與免疫原性檢測＊

吳 杰，吳樹清，李東興，劉艷琴，張明月，海 巖

羊種布魯菌omp25的原核表達與免疫原性檢測＊

吳 杰1，吳樹清1，李東興1，劉艷琴1，張明月1，海 巖2

目的在大腸桿菌中表達羊種布魯菌omp25基因并鑒定重組蛋白的免疫原性。方法從羊種布魯菌中用聚合酶鏈反應技術（PCR）擴增得到布魯菌omp25基因片段，并將目的基因插入原核表達載體PET－32a中，構建重組質粒PET－32a／omp25轉入大腸桿菌E．coli Rosetta中并進行誘導表達，用SDS－PAGE和western－blot檢測表達蛋白。結果成功構建了重組質粒PET－32a／omp25，并在大腸桿菌Rosetta中獲得了重組蛋白，重組蛋白與布魯菌陽性血清發生特異性反應。結論重組質粒PET－32a／omp25可以在大腸桿菌Rosetta中成功表達，并且重組蛋白可與布魯菌陽性血清發生特異性反應，說明該重組蛋白有良好的免疫原性，該研究為疫苗的研制及布魯菌病的檢測打下良好的基礎。

布魯菌；omp25；表達；免疫原性

布魯菌病是由布魯菌屬細菌引起的動物源性疾病，是一種人畜共患傳染性疾病，該病在我國發病呈逐年上升趨勢［1］。它主要引起人類波狀熱和慢性感染以及反芻動物流產和睪丸炎等，對于慢性布魯菌病目前尚無根治方法。大量研究表明，布魯菌的外膜蛋白具有很強的免疫原性［2－3］。omp25是布魯菌omp A家族成員之一，omp25基因在布魯菌各個種屬之間有很高的保守性［4］。本研究克隆了羊種布魯菌omp25基因，在大腸埃希菌Rosetta中表達，用純化的表達產物進行western－blot分析，發現重組蛋白具有免疫原性。為檢測布魯菌病及研制布魯菌亞單位疫苗提供了科學依據。

1 材料與方法

1．1 材料

1．1．1 菌株和質粒 羊種布魯菌分離株于東北農業大學動物醫學院P2實驗室分離鑒定。該分離株在羊流產胎兒中分離培養，經染色鏡檢，生化鑒定和PCR檢測，最終確定該菌株為羊種布魯菌生物3型，命名為M306。PET－32a、Rosetta購自大連寶生物有限工程公司。

1．1．2 試 劑 T4 連 接酶、DNA Marker、蛋 白Marker、IPTG和限制性內切酶Eco RⅠ、XhoⅠ購自大連寶生物生物制品有限公司；辣根過氧化物酶（HRP）標記兔抗羊IgG購自Sigma公司，His GraviTrap Kit購自GE公司。引物由上海生工生物工程有限公司合成，濃度2OD／管，儲存液濃度100μmol／L。布魯菌標準陰性，陽性羊血清由內蒙古動物疫病預防控制中心提供，其他常規試劑均為國產試劑。

1．2 方法

1．2．1 目的片段的擴增 根據GenBank上發表的16M布魯菌omp25的基因序列設計羊種布魯菌上下游引物 P1：5′cgcctcgagttagaacttgtagt 3′，P2：5′ccgggatccatgaaatccgtaat 3′（分別加入Eco RⅠ和Xho lⅠ酶切位點）。PCR反應條件為：95℃預變性5 min，94℃變性40 s，55℃復性45 s，72℃延伸45 s；30個循環，最后72℃延伸10 min。同時設去離子水對照。反應結束后用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測并觀察結果。

1．2．2 omp25基因表達載體的構建 PCR產物經限制性內切酶Eco RⅠ、XhoⅠ雙酶切處理，1%瓊脂糖凝膠電泳，回收預期的omp25基因片段與同樣處理的PET－32a表達載體16℃連接過夜，轉化至Rosetta中，涂LB平板（氨芐青霉素和氯霉素抗性），37℃培養過夜，挑取單克隆菌落37℃過夜搖菌，堿變性法提取質粒，進行PCR和Eco RⅠ、Xho lⅠ雙酶切鑒定。挑取陽性單克隆，送上海生工生物工程有限公司測序，并與GenBank報道的omp25基因序列進行同源性比較。將重組質粒命名為PET－32a／omp25。

1．2．3 PET－32a／omp25重組蛋白的誘導表達及純化 含重組質粒的菌液按1∶100的量接種在的LB培養基中（含氨芐青霉素，氯霉素50μg／m L），37℃振蕩培養至OD600為0．6～1．0，再加入IPTG終濃度為1 mmol／L。37℃繼續培養，經12%的分離膠檢測表達情況。將誘導產物經離心收集菌體，超聲處理，利用His GraviTrap Kit試劑盒，對融合蛋白進行重力流純化，對純化產物進行SDS－PAGE分析。

1．2．4 表達產物的純化和 Western－blot檢測 純化蛋白經SDS－PAGE后電轉到NC膜上（50 m A，80 min），5%的脫脂奶粉4℃封閉過夜，布魯菌陽性血清由5%的脫脂乳1／100倍稀釋作為一抗，37℃作用2 h，按1∶3 000倍稀釋的辣根過氧化物酶（HRP）標記的兔抗羊IgG作為二抗，37℃作用1 h，DAB顯色3～5 min后用自來水終止。

2 結 果

2．1 重組表達質粒PET－32a／omp25的鑒定 PET－32a／omp25重組質粒經PCR和Eco RⅠ、XhoⅠ雙酶切鑒定，得到了預期大小的642bp片段。測序結果表明目的基因omp25正向插入PET－32a載體，并且測序結果與GenBank中公布的M16株布魯菌omp25基因序列完全相同（圖1）。

圖1 重組質粒PET－32a－omp25的PCR及雙酶切鑒定Fig．1 Digestion analysis and PCR amplification of the recombinant plasmid PET－32a－omp25 M，M＊：DNA marker；1：negative control；2：PCR application of recombination plasmid PET－32a／omp25；3：PET－32a／omp25 cleaved by Eco RⅠ、Xho lⅠ

2．2 重組蛋白omp25的表達 陽性重組菌液在OD0．8時經1 mmol／L IPTG 誘導5 h，進行12%SDS－PAGE電泳分析，出現了大小約為43 k Da的蛋白條帶與預期分子量基本一致（圖2）。

圖2 表達產物的SDS－PAGEFig．2 SDS－PAGE of expression productions M：protein marker；1，2：PET－32a／omp25 induced 5h；3：PET－32a（＋）induced 5h，4：E．coli Rosetta induced 5 h

2．3 重組蛋白omp25的純化及western－blot分析

采用GE公司的His GraviTrap親和純化試劑盒對重組蛋白進行純化，將收集的洗脫液進行SDSPAGE電泳檢測。在約43 k Da可見純化的蛋白條帶（見圖3）。Western－blot分析結果表明，純化的重組蛋白能與羊種布魯菌陽性血清發生特異性反應，43 k Da處出現特異免疫反應條帶由此表明重組蛋白omp25有好的免疫原性（圖3）。

圖3 表達純化產物的SDS－PAGE及western－blot分析Fig．3 SDS－PAGE and western－blot analysis of purified products M：Protein marker；1：the purified recombinant protein；2：identification by western－blot

3 討 論

omp25是布魯菌外膜結構蛋白［5］，是具有代表性的第3組外膜蛋白［6］。在布魯菌各個種屬之間具有高度的保守性，同源性達98%以上。布魯菌omp25基因的缺失可引起布魯菌的毒力減弱，并能夠對宿主起到免疫保護作用［7］。Philpper從B．abortus544基因庫中，以抗omp25單克隆抗體調出了omp25基因，并分析了其脫氧核糖核昔酸序列omp25基因長約917bp，在起始密碼子6個堿基前有7個核昔酸序列（TAAGGAG）與大腸桿菌16sRNA序列具有同源性，估計是核糖體結合位點［8］。布魯菌細胞壁膜結構是大多數細菌識別宿主的獨特標志物，能綁定胞外的許多基質蛋白，特別是纖維連接素和玻璃體粘連蛋白，這也是許多其他的病原微生物普遍存在的一個屬性。研究證實布魯菌表面主要的抗原成分是LPS和omps。到目前為止，己發現有7種主要omps，它以共價鍵的形式與細胞外膜的膚聚糖（PG）層緊密結合。

本實驗證實omp25蛋白表達量高，占總菌體蛋白的含量高，具有良好的免疫反應原性，具備作為免疫學活性抗原的潛力和優勢，為疫苗的開發和免疫學檢測方法的建立，提供了候選抗原。

［1］文學忠，于瑞華，姜秋杰．布魯氏菌病近況［J］．吉林畜牧獸醫，2007（5）：20－23．

［2］Bowden R A，Cloeckaert A，Zygmunt M S，et al．Evaluation of immunogenicity and protective activity in BALB／c mice of the 25－k Da major outer－membrane protein of Brucella melitensis（OMP25）expressed in Escherichia coli［J］．J Med Micobiol，1997，47：39－48．

［3］Brocker B J，Tabatabai L B，Mayfeld J E．Conserbation of antigenicityin a 31－k Da Brucella protein ［J］．Vet Microbiol，1988，18：313－525．

［4］Matthew D，Edmonds，Cloeckaert A，Phlip HE．Brucella species lacking the major outer membrane protein Omp25 are attenuated in mice and protect against Brucella ovis［J］．Vet Micobiol，2002，88：205－221．

［5］Bowden R A，Verger J M，Grayon M，et al．Rspid identification of rough Brucella isolates bu a latex coagglutination assay with the 25－lilodalton outer membrane protein and rough－lipopolysaccharide specific monoclonal antibodies［J］．Clin Diagn Lsb Innunol，1997，4（5）：611－614．

［6］Oliveira S C，Splitter G A．Immunization of mice with recombinant L7／L12 ribosomal protein confers protein confers protection against Brucella abortus infection［J］．Vaccine，1996，14（10）：959－962．

［7］Edmonds M D，Cloeckaert A，Booth N J，et al．Attenuation of a Brucella abortus mutant lacking a major 25 k Da outer membrane protein in cattl［J］．Am J Vet Res，2001，62（9）：1461－1466．

［8］Cloeckaert A，Zymunt M S，Wergifosse P，et al．Demonstration of pertidoglycan－associated Brucella outer－membrane proteins by use of monoclonal antibodies［J］．Gen Microbiol，1992，（138）：1543－1550．

Expression and immunogenicity of the recombinant protein omp25 of Brucella melitensis strain

WU Jie1，WU Shu－qing1，LI Dong－xing1，LIU Yan－qin1，ZHANG Ming－yue1，HAI Yan2

（1．College of Veterinary Medicine，Inner Mongolia Agricultural University，Hohhot 010018；2．Inner Mongolia Center for Disease Control and Prevention，Hohhot 010010，China）

To express omp25 gene of Brucella in E．coli Rosetta and detect the immunogenicity of the recombinant protein，the target fragment of omp25 gene was amplified by PCR from the B．melitensis M306 strain and was cloned into expression vector PET－32a．After transforming into competent E．coli Rosetta and inducing by IPTG，the recombinant protein was expressed．As detected by SDS－PAGE and western－blot，this recombinant protein has immunogenicity．It was confirmed DNA sequencing and restriction enzymes cleavage that the recombinant plasmid PET－32a／omp25 was constructed successfully．Furthermore，the result of SDS－PAGE and western－blot assay showed that PET－32a／omp25 was expressed successfully in E．coli Rosetta and the recombinant protein could react with B．melitensis positive serum．This study provides a good foundation for the diagnosis of brucellosis and the preparation of new types of vaccines of Brucella．

Brucella；omp25；expression；immunogenicity

R378．5

A

1002－2694（2012）03－0241－03

＊國家“十一五”重點科技支撐項目（2006BAD04A16－4）

吳樹清，Email：wushuqing2009＠126．com

1．內蒙古農業大學獸醫學院，呼和浩特 010018；2．內蒙古疾病預防控制中心，呼和浩特 010010 Email：wujie＿de＠yeah．net

2011－05－06；

2011－09－22