釀酒酵母中線粒體活性對甲酸處理下細胞死亡率的影響*

杜林，李蓮

1(仲愷農業工程學院輕工食品學院，廣東廣州，510225)

2(中山大學生命科學院，廣東廣州，510275)

釀酒酵母中線粒體活性對甲酸處理下細胞死亡率的影響*

杜林1，李蓮2

1(仲愷農業工程學院輕工食品學院，廣東廣州，510225)

2(中山大學生命科學院，廣東廣州，510275)

已知甲酸可抑制線粒體呼吸鏈末端的細胞色素氧化酶，低濃度的甲酸可導致細胞內線粒體活性氧的快速爆發并進一步殺死酵母細胞。因此，對可能影響釀酒酵母細胞線粒體產生活性氧的因素進行了研究，分析了菌齡、低溫預處理、還原劑、線粒體ATP酶基因突變等對甲酸毒性的影響。結果表明，釀酒酵母對甲酸的抗性與線粒體活性密切相關，通過線粒體突變降低線粒體活性可增強釀酒酵母對甲酸的抗性。

釀酒酵母，甲酸抗性，線粒體，活性氧

甲酸是結構最簡單的有機酸，也是一種弱有機酸。甲酸為酵母菌等微生物的代謝產物，但在濃度較高時其對酵母菌本身具有毒性。以纖維素為原料生產酒精是目前生物能源研究領域的一個重要內容。纖維素可以用理化方法和生物方法進行降解并以釀酒酵母發酵，但釀酒酵母在纖維素的水解液中的生長情況往往并不理想[1-2］。甲酸由于生成的濃度較高，而最低抑菌濃度比乙酸等其他弱有機酸低十倍以上，是纖維素水解液中主要的抑菌因素之一。因此，酵母菌的甲酸抗性突變株在纖維素發酵產酒精中具有較大的價值。另外，在微生物制取氫氣方面，一個很有吸引力的方法是以釀酒酵母轉化各種生物原料產生甲酸，再以大腸桿菌等的氫化酶將甲酸分解為CO2和H2。但釀酒酵母難以耐受20 mmol/L以上的甲酸，因此獲得甲酸抗性突變株可以大大提高甲酸的積累濃度，并促進這一技術的應用[3］。但是，由于對甲酸細胞毒性機理的認識不充分，目前并沒有見到構建強甲酸抗性酵母菌株的報道。

甲醇在人體肝臟內會被代謝為甲醛，并進一步氧化為甲酸。因此在醫學領域甲酸的毒性機理已得到較多研究[4］。已經有研究者證明，甲酸和CO、氰化物、AS2O3等具強細胞毒性的化合物類似，可以和線粒體內膜上的細胞色素氧化酶上亞鐵離子發生結合，抑制細胞色素氧化酶的活性[5-8］。我們據此推測，甲酸導致細胞快速死亡的機理不是由于細胞內能量的耗盡，而是因為它引起細胞色素氧化酶活性的異常，導致活性氧的產生、爆發，進而氧化破壞細胞。我們的初步研究表明，線粒體產生的活性氧和甲酸誘導的酵母細胞死亡關系密切[9］。因此，我們推測，降低酵母菌線粒體活性，抑制活性氧的產生，可以增強釀酒酵母對甲酸的抗性。

1 材料與方法

1.1 儀器與設備

恒溫搖床(哈爾濱東明儀器HZQ-C);培養箱(Thermo);流式細胞儀(Vantage SE，BD Biosciences)。

2.2 酵母菌菌株、質粒及培養基

釀酒酵母BY4741由美國Rochester大學的David Goldfarb教授惠贈。釀酒酵母W303-1a野生型菌株由中山大學微生物遺傳實驗室提供，W303-1a背景ATP酶4亞基基因缺失株由中山大學微生物遺傳實驗室構建。

YPD液體培養基:2%蛋白胨，1%酵母提取物，2%D-(+)-葡萄糖，分裝后121℃高壓滅菌20 min。

2.3 酵母細胞的培養及甲酸處理后的酵母細胞存活率測定

取對數期釀酒酵母細胞培養液0.5 mL，接種至裝于250 mL三角瓶中的50 mL YPD液體培養基中，置于30℃，200 r/min往復式振蕩培養箱培養細胞至對數期或穩定期，分別取1 mL菌液于1mL離心管中，立即加入相應摩爾濃度的甲酸，30℃處理40 min后，在YPD培養基上以標準平板計數法計數，每一稀釋度涂3個平板，以3次獨立的實驗結果計算存活率。

2.6 細胞內活性氧爆發的流式細胞儀檢測

細胞質中活性氧檢測:取5 mL YPD加入試管中，接入50 μL過夜培養的酵母菌液，搖床培養6h(30℃，200 r/min)。吸取以DMSO為溶劑的10 mmol/L雙乙酸二氯熒光黃(dichlorofluorescein diacetate，DCFH-DA)溶液2 μmol/L，使染色時DCFH-DA的工作濃度為20 μmol/L，避光孵育15 min，使DCFH-DA充分進入細胞。根據需要，迅速加入一定量的1mol/L甲酸，室溫或培養箱恒溫避光處理，根據實驗要求，分別吸取100 μL處理中的各樣品菌液加入FACS管中，加入900 μL冷藏的PBS，立即以流式細胞儀上樣分析。所用氬離子激光器激光波長為488 nm，在530 nm檢測激發出的熒光，以流式細胞儀FL-1通道進行檢測?；蚣尤隤I后以FL-1和FL-2通道檢測。

超氧陰離子的檢測:先以無菌DMSO配置10 mmol/L的超氧化物陰離子熒光探針二氫溴化乙錠(Dihydroethidium，DHE)溶液，取0.5 μL加于1 mL菌液，使DHE的終濃度為5 μmmol/L，30℃避光孵育15 min，加入相應濃度甲酸避光處理，以流式細胞儀FL-2通道進行分析。激發光波長為535 nm，發射光波長為610 nm。

3 結果與分析

3.1 甲酸處理導致線粒體超氧陰離子的產生與自由基的擴散

為了了解活性氧爆發時細胞內超氧陰離子及細胞質內過氧化氫等活性氧的水平，故使用活性氧熒光探針DCFH-DA和DHE同時對甲酸處理時細胞中的活性氧進行檢測。

圖1 FACS分析甲酸誘導的細胞質活性氧和超氧陰離子產生

由圖1可見，在用甲酸處理10 min時，以熒光探針DCFH-DA和DHE依次檢測到活性氧的產生。細胞內DHE陽性率超過DCFH-DA的陽性率，顯示DHE氧化后的熒光先產生。這和兩種熒光染料的特性有關，DHE可檢測線粒體產生的超氧陰離子，DCFH-DA可反映細胞質中的活性氧水平。線粒體電子傳遞鏈障礙導致活性氧產生時，超氧陰離子首先產生。所以實驗中首先檢測到較多的細胞產生了超氧陰離子，而此時以DCFH-DA檢測到的細胞質活性氧陽性的細胞卻比超氧陰離子陽性的細胞少，說明細胞質內的活性氧是由線粒體內超氧陰離子擴散形成。

3.2 還原劑預處理對活性氧爆發及存活率的影響

N-乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine，NAC)，是細胞內還原性谷胱甘肽的前體，因為能夠快速穿過細胞膜，因此是一種細胞生物學研究中廣泛使用的還原劑。NAC可在細胞內形成含巰基的代謝產物，促進GSH的合成，消除自由基。在用甲酸處理酵母細胞，使其細胞內活性氧爆發前我們先用NAC預處理細胞，使其細胞內NAC達到較高濃度以抑制活性氧的水平，檢測抑制活性氧對細胞存活率的影響。

圖2 還原劑NAC預處理對60 mmol/L甲酸處理后死亡率的影響

由圖2可見，和對照相比，2 mmol/L的NAC預處理明顯降低了死亡率，說明細胞內還原劑的增加，活性氧的抑制可降低甲酸處理后細胞的死亡率。有可能是由于NAC減少了活性氧，從而抑制了活性氧對酵母細胞的損傷。另外，使用PI染色后流式細胞儀分析細胞膜完整性的方法也證明NAC預處理可以降低甲酸處理后的酵母細胞死亡率。

3.3 釀酒酵母線粒體活性對甲酸處理下細胞存活率的影響

在病理和生理條件下，通常線粒體都是活性氧的主要來源。線粒體電子傳遞鏈的障礙，往往導致活性氧的大量形成。而在不同遺傳性狀的釀酒酵母細胞中，或同一種細胞處在不同的生長條件下，其線粒體活性往往有很大差異[10］。因此我們對不同類型釀酒酵母細胞中活性氧的爆發及細胞死亡情況進行了研究。

3.3.1 酵母細胞菌齡對甲酸處理時細胞死亡率的影響

和穩定期細胞相比，對數期的酵母細胞代謝更為旺盛，其線粒體活性更高，因此我們推測同濃度甲酸在對數期酵母細胞中能導致更猛烈的活性氧爆發，從而對細胞造成更大的破壞，因此用甲酸處理培養24 h的穩定期細胞時活性氧產生情況，并比較培養6 h的對數期細胞和培養24 h的穩定期細胞在同濃度甲酸處理時的存活率。

由圖3可見，對數期細胞對甲酸的敏感程度比穩定期細胞高得多，這在甲酸濃度較高時更為明顯。故甲酸的毒性和酵母細胞的代謝狀態密切相關。因此可以認為，對數期細胞由于處于代謝旺盛的特點，其細胞內較高活性的線粒體在甲酸處理下產生更多的活性氧，從而導致更多的對數期細胞死亡。

圖3 甲酸處理后對數期及穩定期細胞的存活率比較

3.3.2 低溫預處理對甲酸誘導的細胞死亡率的影響

由于線粒體的產能速度和微生物細胞外環境密切相關，即細胞外因素會影響線粒體活性，因此我們推測低溫預處理降低線粒體活性后，再以甲酸處理細胞，這時線粒體活性氧爆發應該減弱，細胞的死亡率應該下降。故在加入甲酸之前，先將細胞置于4℃10 min，再將其和正常培養的對照樣品同時加入甲酸處理40 min，然后以標準平板計數法比較二者的存活率。在本實驗中，我們還對另一實驗室研究常用的釀酒酵母BY4741進行了測定。

由圖4可見，短時間的低溫預處理，即可明顯提高甲酸處理后的細胞存活率。該結果也表明，甲酸誘導細胞死亡和細胞的代謝狀態有關。

圖44℃預處理對60 mmol/L甲酸誘導的細胞死亡率的影響

3.3.3 線粒體呼吸缺陷對甲酸處理細胞存活率的影響

ATP酶結構上的缺陷會影響其合成ATP的能力及線粒體的整體活性。所以我們通過敲除ATP酶亞基基因的方法，降低線粒體的活性，以期減弱甲酸誘導的活性氧的爆發并提高細胞存活率，并采用標準平板計數法對同濃度甲酸處理后野生型和ATP酶4亞基缺失株的存活率進行了比較。

由圖5可見，線粒體缺陷會大大提高細胞的存活率，分析其原因，推測是在線粒體活性較低的情況下，甲酸誘導其產生的活性氧較少，故活性氧對細胞的破壞較小，所以細胞的存活率明顯上升。此外，我們還發現位于線粒體外膜的AIF基因缺失后，其線粒體膜電位會下降，同時細胞對甲酸的抗性也會增強(數據未列出)。

圖5 ATP酶亞基缺失對60 mmol/L甲酸處理細胞死亡率的影響

4 結論與討論

活性氧是指一些能和還原性物質反應的含氧化合物。正常生理情況下，超氧陰離子的生成由NAD(P)H氧化酶、黃嘌呤氧化酶參與，也可由線粒體內電子傳遞鏈中的半醌類化合物參與[11］，是線粒體內形成的第一種活性氧。由于甲酸可以阻斷呼吸鏈，因此可以導致超氧陰離子的形成。超氧陰離子在線粒體內產生后，可以在線粒體內部或細胞質內轉化成過氧化氫，因而在實驗中可以用DCFH-DA檢出較高比例的活性氧陽性細胞。在谷胱甘肽大量消耗的情況下，過氧化氫可破壞細胞成分，或進一步轉化成氧化性更強的羥自由基，對核酸等結構產生致命的破壞。

正常細胞會產生少量的活性氧，而一些細胞強毒性試劑如抑制細胞色素氧化酶的砷化物、氰化物可導致活性氧的快速大量產生。本文研究表明，甲酸處理會使細胞迅速產生超氧陰離子，并進一步轉化為細胞質中其他類型的活性氧。和穩定期的細胞相比，對數期釀酒酵母細胞對甲酸更為敏感，死亡率更高;還原劑NAC短時間預處理，較低溫度預處理，敲除ATP酶的4亞基均可以降低細胞的死亡率。因此，降低甲酸處理下線粒體產生活性氧的能力可增強釀酒酵母細胞對甲酸的抗性。

因此，在深入研究甲酸毒性機理和抗性機制的基礎上，利用分子生物學方法，改變釀酒酵母細胞內甲酸作用的靶位點或生化過程，構建線粒體呼吸鏈或其他線粒體膜蛋白的突變株，可獲得具有較強甲酸抗性的菌株。

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ABSTRACTBasing on the discovery that formic acid can inhibit the cytochrome oxidase which is located at the end of mitochondrial respiratory chain，and low concentration of formic acid can lead to the rapid outbreak of the reactive oxygen species which can kill yeast cells further，factors affecting the production of reactive oxygen species in Saccharomyces cerevisiae cells were studied.Effects of cell age，low-temperature，reducing agents pretreatment，and mitochondrial ATPase gene mutation to formic acid toxicity were analyzed.The results show that formic acid resistance of Saccharomyces cerevisiae is closely related to mitochondrial activity，reducing mitochondrial activity by mitochondrial mutation can enhance cellular resistance to formic acid.

Key wordsSaccharomyces cerevisiae，formic acid resistance，mitochondria，reactive oxygen species

Effect of Mitochondrial Activity to the Cell Survivla Rate of Saccharomyces cerevisiae After Formic Acid Treatment

Du Lin1，Li Lian2
1(Institute of Light Industry and Food Engineering，Zhongkai University of Agriculture and Engineering，Guangzhou 510025，China)
2(School of Life Science，Sun Yat-sen University，Guangzhou 510275，China)

教授(E-mail:dulin2000@163.com)。

*廣東省產學研結合資助項目“廣東客家黃酒的發酵菌種研究與工業化應用”。

2012-05-15，改回日期:2012-06-07