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抗草甘膦轉基因大豆DNA標準分子構建及多重熒光PCR檢測體系的建立

2012-09-17 08:20賴心田劉小青洪曉明陳國培楊國武
質量安全與檢驗檢測 2012年1期
關鍵詞:草甘膦限值轉基因

賴心田 劉小青 洪曉明 陳國培 楊國武

(深圳市計量質量檢測研究院 廣東深圳 518131)

1 前言

近十幾年來,隨著轉基因作物及其加工產品在數量和應用上的逐漸增多,轉基因產品及其安全性受到了越來越多的關注[1],同時也給轉基因生物安全監管工作帶來更大的挑戰。不少國家已經對轉基因食品進行了限量標識管理,我國也建立了轉基因食品的標識管理目錄,并納入了檢驗檢疫和質檢部門的檢測項目。

目前轉基因大豆的檢測主要是采用普通PCR和單重熒光定量PCR進行,然而隨著TaqMan探針技術的發展[2,3],多重定量 PCR不僅能節省樣品及試劑,同時也能實現一管多檢的高效率[4-6]。此外,進行轉基因作物及其產品的PCR檢測使用重組質粒,可以長期穩定保存并與目的基因保持較高同源性,因此,將檢測的目的基因片段克隆到質粒載體中制備成陽性參照物,不僅可以使陽性參照物長期穩定保存,而且使檢測結果的準確性得到很大的提高[7]。

由于抗草甘膦轉基因大豆外源基因的檢測包括3個部分:花椰菜花葉病毒的CaMV35S啟動子、胭脂堿合成酶的NOS終止子以及5-烯醇丙酮酸莽草酸 -3 - 磷酸合成酶基因 CP4 EPSPS[8],因此,本研究旨在構建穩定、可靠、易制備和保存的抗草甘膦轉基因大豆陽性標準分子,建立抗草甘膦轉基因大豆的多重熒光PCR檢測體系,實現一次PCR反應完成篩選和特異性檢測的過程。

2 材料與方法

2.1 材料

轉基因抗草甘膦大豆標準品為美國孟山都公司的RRS轉基因大豆GTS40-3-2。實驗所用的PCR引物和熒光探針由上海生工生物工程公司合成和標記,所用的分子生物學試劑均購自大連寶生物生物工程公司。

2.2 方法

2.2.1 RRS 外源基因片段克隆

取適量RRS轉基因大豆標準品,研磨成粉狀,采用CTAB法提取大豆基因組,用紫外分光光度計測量其含量,并稀釋至50ng/μL作為PCR擴增模板。在PCR擴增中,利用連接引物、CaMV35S、CP4 EPSPS和NOS引物將3個外源基因片段串聯在一起并克隆至PMD-18T載體上,構建的質粒命名為PMD18T/SOY,并送上海生工測序。構建及檢測中用到的引物[9]如表1所示。

表1 引物表

2.2.2 三重實時熒光PCR體系構建

CaMV35S,CP4 EPSPS,NOS 的熒光引物和探針序列[10]見表2。提取上述構建好的 PMD18T/SOY質粒,并用RNAse消化RNA后稀釋至10ng為模板,同時設立空白對照,進行三重熒光PCR,引物和探針濃度均為20mmol/μL,通過調整Mg2+,酶的濃度,引物和探針的量,最終獲得25μL如下的三重熒光的體系:2.5μL 10 × r - taq buffer,3μL dNTP 2ulMg2+,13.3μL ddH2O,0.4μL 各引物,0.2μL 各探針,0.2 μL r- taq 酶,1μL 10ng/μL 質粒。熒光PCR的反應條件為:95℃,3min;95℃,15s;60℃,34s;40cycle。

表2 實時熒光PCR引物及探針表

2.2.3 三重熒光定量PCR的檢測限值測定

以10ng/μL的PMD18T/SOY質粒進行10倍梯度稀釋,質粒濃度分別為 10、1、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6ng/μL,采用 25μL 體系,體系同2.2.2,同時做陰性空白對照,進行三重熒光定量PCR檢測限值的測定。

3 結果與分析

3.1 RRS外源基因片段克隆

通過設計的中間引物,將抗草甘膦轉基因大豆的CaMV35S、CP4 EPSPS和NOS 3個外源基因融合在一起,采用CaMV35S正向引物和NOS反向引物,以PMD18T/SOY質粒為模板經過PCR擴增后,產物擴增片段堿基理論長度應為549bp,檢測結果見圖1。

圖1 PMD18T/SOY檢測結果

圖1 顯示,擴增條帶大小約為550bp,與理論長度一致。PMD18T/SOY質粒插入片斷經測序分析與標準序列一致,證實PMD18T/SOY構建成功,可用于轉基因定性檢測及限值檢測的陽性參照物。

3.2 三重實時熒光PCR體系建立及檢測限值的測定

經過調整Mg2+、酶的濃度、引物和探針的量獲得大于90%的高擴增效率和重復性一致的三重熒光PCR體系,采用構建好的 PMD18T/SOY質粒10ng為模板,獲得的結果如圖2所示。

圖2 三重熒光PCR檢測結果

從圖2中可看出,CaMV35S、CP4 EPSPS和NOS的Ct值接近,空白無污染,建立的三重熒光PCR體系適合對以該質粒為陽性參照進行的轉基因定性檢測。此外,以10ng/μL的質粒為母液,并進行10倍梯度稀釋進行CaMV35S、NOS和CP4 EPSPS三重熒光PCR檢測限值分析,擴增曲線見圖3。以質粒濃度的log值為橫坐標,以Ct值為縱坐標,建立擴增基因的標準曲線圖,見圖4。

圖3 三重熒光PCR CaMV35S、NOS和CP4 EPSPS檢測限值測定結果

圖4 三重熒光PCR CaMV35S、NOS、CP4 EPSPS基因標準曲線

圖3 和圖4顯示,3個基因的熒光PCR每個循環呈等差的3-4Ct值增加,Ct值介于13-30之間,且這3個基因的熒光PCR檢測限值均為10-3ng/μL,即能檢測到1pg的DNA,靈敏度特別高。并且圖4中CaMV35S、NOS和CP4 EPSPS的r2值分別為0.998、0.999、0.999,這也說明梯度稀釋的質粒模板擴增線性相關性非常好。

4 討論

使用PMD18T/SOY作為參比分子時,構建的多重熒光定量PCR體系靈敏度極高,可對抗草甘膦轉基因大豆進行定性和定量檢測。但是,高靈敏度的同時也帶來一定的風險性,如果有微量轉基因物質氣溶膠存在,則很容易造成污染,使空白在Ct值為30多時有峰揚起,因此,需嚴格控制熒光定量PCR體系配制區與模板加樣區的隔離,避免氣溶膠等的存在,從而避免出現假陽性。

歐盟聯合研究中心標準物質與測量研究所(Institute for Reference Materials and Measurements,IRMM或者ERM)提供的抗草甘磷轉基因大豆GTS40-3-2標準物質是 5%、2%、1%、0.5%、0.1%和0%6個濃度梯度的種子粉末,由于不同種子在提取的DNA質量、純度和復雜程度上很難保持一致,容易導致PCR擴增效率的差異,這都會對轉基因成分定量分析的準確度產生一定的影響。此外,種子作為標準物質進行定量檢測重復性難以控制,線性相關性也較差。在本研究中,將融合了抗草甘膦轉基因大豆的CaMV35S、CP4 EPSPS和NOS 3個外源基因的質粒PMD18T/SOY作為標準物質分子,并在此基礎上建立多重熒光PCR,實現一管多檢,定量檢測未知樣品時可稀釋到10-6,檢測限值達10-3ng/μL,線性關系良好且范圍寬,作為參比分子非常精確,在建立的多重熒光PCR中,它的r2均在0.998以上。同時,作為標準分子的質??梢酝ㄟ^微生物進行大量培養,DNA易于擴增,可提供無限穩定量的標準物質,一個標準分子可以同時包含多個外源目的基因,并且純度較高。因此與常規的從生物公司購買標準品相比,此方案更具有操作性,更能保證目的片段的擴增效率,降低了轉基因檢測的成本。

[1] 陳穎,徐寶梁,王曙光,等.實時熒光定量PCR技術在轉基因玉米檢測中的應用研究[J].作物學報,2004,30(6):602-607.

[2] 朱元招,尹靖東,王鳳來,等.抗草甘膦轉基因大豆PCR定量檢測研究[J].中國農業大學學報,2005,10(3):25-29.

[3] 譚帥.轉基因食品檢測技術概述[J].大眾商務,2009,5:206.

[4] 陳碧華,張建偉,王廣印,等.轉基因食品檢測技術的應用與發展Ⅱ.檢測技術的分類、比較、應用及檢測步驟[J].食品科學,2008,29(11):705 -711.

[5] 曹澤鴻.轉基因食品的檢測方法[J].中國食品添加劑,2005,4:100-105.

[6] 趙錦,鄧平建,劉建軍,等.轉基因食品多重定性PCR及實時熒光定量PCR檢測方法的研究[J].中國衛生檢驗雜志,2004,14(4):412 -414.

[7] Burns M,Corbisier P,Wiseman G,et al.Comparison of plasmid and genomic DNA calibrants for the quantification of genetically modified ingredients[J].Eur Food Res Technol,2006,224(2):249-258.

[8] 陳碧華,張建偉,王廣印,等.轉基因食品檢測技術的應用與發展Ⅰ.主要檢測技術及其特點[J].食品科學,2008,29(10):698-705.

[9] SN/T 1195-2003大豆中轉基因成分的定性 PCR檢測方法[S].

[10] SN/T 1204-2003植物及其加工產品中轉基因成分實時熒光PCR定性檢驗方法[S].

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