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微生物產β-木糖苷酶的研究進展

2013-07-22 07:16范園園李秀婷滕超
食品研究與開發 2013年12期
關鍵詞:木糖聚糖糖苷酶

范園園,李秀婷,滕超

(北京工商大學食品學院,食品添加劑與配料北京高校工程研究中心,北京 100048)

木聚糖是半纖維素的主要組分,廣泛分布于高等植物的細胞壁中,是自然界中一類存量巨大的可再生資源,也是較容易提取、降解和利用的一類半纖維素。因木聚糖為異質多糖,其降解和生物轉化需要多種酶的參與,主要包括木聚糖酶(β-D-xylanxylanohydrolase,EC 3.2.1.8)和β-木糖苷酶(β-D-xyloside xylo hydrolase,EC 3.2.1.37)、α-葡萄糖醛酸酶、乙酰酯酶等[1]。

β-木糖苷酶是一種外切酶,主要催化水解木糖苷和以外切方式從非還原性末端水解聚合度較低的木寡糖(木二糖或木三糖)為木糖。同時β-木糖苷酶還可以作用于萜類、甾體等甙元與木糖形成的糖苷鍵,釋放出甙元。目前,包括β-木糖苷酶在內的木聚糖酶系已廣泛應用于包括食品、藥品、造紙、能源等多個領域。但相對木聚糖酶系其它水解酶(木聚糖酶等)而言,β-木糖苷酶的相關研究仍相對薄弱。本文將從酶的來源、定位與分類、酶學性質、生產調控、基因的克隆與表達等幾個方面對木糖苷酶的研究進展進行論述,對研究現存問題和方向進行分析,并對應用前景進行展望。

1 β-木糖苷酶的來源

β-木糖苷酶在自然界中分布非常廣泛,現已從細菌、放線菌和真菌(包括霉菌、酵母、蕈菌)等微生物以及部分高等植物中分離得到。大多數細菌或真菌只產生一種β-木糖苷酶,例如細菌Bacillus thermantarcticus,以及真菌Aspergillus carbonarius、Aureobasidium等均只分泌一種β-木糖苷酶。但隨著研究的深入,迄今為止已發現可同時產生多種β-木糖苷酶微生物,例如Tsujibo 等從腐爛木材上分離到一株嗜熱鏈霉菌熱紫鏈霉菌(Streptomyces thermoviolaceus)OPC-520 在含木聚糖培養基上可以同時分泌2 種木糖苷酶(STX-I和STX-II),測定分子量分別為54 000 和33 000[2]。另外,試驗結果顯示兩種木糖苷酶的性質也存在較大差別(STX-I 和STX-II 等電點、酶最適反應溫度分別為4.2 和8.0,以及70 ℃和60 ℃)。通過對兩種酶氨基酸序列分析發現,STX-I 及STX-II 分別與糞肥桿菌外切葡聚糖酶以及短小芽孢桿菌木聚糖酶具有很高的序列同源性。Matsuo 等從Penicilluium wortmanni IFO 7237 中分離純化得到4 種木糖苷酶,其等電點各不相同[4]。Lorenz 等研究發現嗜熱厭氧細菌Thermoanaerobacterium sp.JW/SY485 可同時產3 種木糖苷酶,酶相關性質(包括酶活力及與底物的親和性)均不相同[5]。實驗據此推測,菌株在某種碳源物質缺乏或豐富時可能會相應的分泌不同種類的木糖苷酶,以保持對碳源較高的利用效率。

2 β-木糖苷酶分泌部位

根據酶分泌部位的不同,β-木糖苷酶可大體分為胞內型、胞外型以及膜結合型三種,另外同種菌株還會隨著生長機制及培養條件的不同而有所變化[6]。例如,在大多數細菌及酵母中β-木糖苷酶是以溶質狀態分布在細胞之內的,在這些微生物生長過程中,低聚木糖必須以一定的方式進入細胞中才可以被降解[7]。而在絲狀真菌中,有些木糖苷酶在菌絲生長初期位于菌絲體內,而在后期則會分泌或者裂解分布到培養基當中[8],也有一些菌體所產木糖苷酶始終保留在細胞內[9]。除此以外有些微生物(如Streptomyces sp.EC 10)所產木糖苷酶則為膜結合型[10]。通常大部分β-木糖苷酶僅具有單一活性,但研究也發現有相當比例的β-木糖苷酶為雙功能酶或多功能酶,例如Motoki 等從Aspergillus japonicas 中分離到的β-木糖苷酶即屬于多功能酶,除具有木糖苷酶活性外還具有β-葡糖苷酶以及α-L-阿拉伯呋喃糖苷酶活性[11]。

3 β-木糖苷酶的酶學性質

1991 年,Henrisaat 等根據氨基酸序列的相似性把糖基水解酶分成不同的家族。2009 年,Cantarel 等將不同來源的β-木糖苷酶分別歸于第3、30、39、43、52 和54 等不同六個族糖基水解酶。而迄今為止發現真菌來源的β-木糖苷酶屬于第3、第43 及第54 等三個家族[12]。不同家族的木糖苷酶酶學性質均有所差別,而酶性質的差異直接影響其使用條件及應用領域。

3.1 pH 與β-木糖苷酶的活性

大部分木糖苷酶的最適pH 在3.0-6.0 之間。已報道的β-木糖苷酶的等電點多為弱酸性(見表1)。但也有部分菌株所產β-木糖苷酶為中性或偏堿性。例如Katapodis 等對一種來源于Sporotrichum thermophile 的β-木糖苷酶進行了研究,結果顯示其最適pH 為7.0[13];而Tuohy 等從Talaromyces emersonii 中分離到的β-木糖苷酶的等電點為8.9[14]。不同來源的β-木糖苷酶對pH 得耐受性同樣存在明顯差異,例如吳華偉等從草菇中分離得到的β-木糖苷酶的最適pH 為6.4~6.8,在pH5.8~7.7 之間酶活力相對穩定[15];欒宏偉等從Leifsonia shinshuensis DICP 16 菌體分離出的β-木糖苷酶則在pH 6.0~11.0 之間具有很好的穩定性[16]。

表1 不同來源β-木糖苷酶的性質Table 1 The nature of β-xylosidases in different sources

續表1 不同來源β-木糖苷酶的性質Continue table 1 The nature of β-xylosidases in different sources

3.2 溫度與β-木糖苷酶的活性

溫度對酶活性有很大的影響,在一定范圍內,反應溫度升高酶的反應速率相應增加。但同時過高的溫度又容易導致酶蛋白質變性,進而導致酶失活。因此,在工業應用中,酶的熱穩定性成為首要考慮的重要參數,較好的溫度耐受性將極大的擴展酶的使用范圍及應用領域。

β-木糖苷酶的最適反應溫度范圍一般為40 ℃~60 ℃(見表1),而近年來從一些嗜熱細菌和耐熱真菌中分離到的β-木糖苷酶都有較高的熱穩定性。Bachmann 等研究發現褐色高溫單孢菌(Thermomonospora fusca)的β-木糖苷酶最適溫度達82 ℃,其活性可在65 ℃保持8 h 以上,在70 ℃也可以保持1.5 h[18]。Xue等從海棲熱袍菌(Thermotoga maritima)中分離到一株極耐高溫的β-木糖苷酶,它的最適反應溫度為90 ℃,在95 ℃時酶半衰期為22 min[39]。

3.3 金屬離子與β-木糖苷酶的活性

大多數酶屬于蛋白質,因此其結構和活性都有可能會受到金屬離子的影響。研究表明,金屬離子的種類以及濃度均會對β-木糖苷酶的活性產生顯著影響。例如,K+、Ca2+一般對β-木糖苷酶酶活力具有促進作用。王嵐研究了不同金屬離子對來源于嗜熱真菌β-木糖苷酶活力的影響,一定濃度的K+、Ca2+可以提高酶活力的22.4%和14.8%[40]。Zanoelo 等曾報道Ca2+不僅可以提高真菌Scytalidium thermophilum 的β-木糖苷酶的酶活,還可以提高酶的熱穩定性,使其在65 ℃下的半衰期從11 min 延長至30 min[41]。Hayashi 等研究也表明Ca2+可顯著提高β-木糖苷酶的活性[42]。而一些金屬離子如Hg2+的則對酶活力具有明顯的抑制作用[43-44]。

4 β-木糖苷酶的生產調控

已有研究表明,利用微生物生產β-木糖苷酶的過程受到多種因素的影響,比如碳源、氮源、碳氮比、初始pH 等。

4.1 不同碳源對β-木糖苷酶合成的影響

發酵過程中碳源不僅是微生物生長代謝的能量來源,也是酶合成的誘導物。因此碳源的種類會直接影響酶的活力和產率。Gasparic 等研究發現,分別以木聚糖和葡萄糖為碳源對菌株Prevotella ruminicola B1進行發酵,所產β-木糖苷酶酶活相差約20 倍,木聚糖對此菌株產β-木糖苷酶具有明顯的誘導作用[45]。Tsujibo 等證明Streptomycesthermoviolaceus OPC-520 β-木糖苷酶的活性可被樺木木聚糖及木寡糖(木二糖和木三糖)誘導,而單糖(如木糖、阿拉伯糖和葡萄糖)則不能誘導β-木糖苷酶的合成;試驗同時顯示當向含有樺木木聚糖的培養基中加入葡萄糖時,β-木糖苷酶的合成受到強烈抑制[46]。Zanoelo 等對Scytalidium thermophilum 產β-木糖苷酶的研究也發現,培養基中加入葡萄糖后可顯著降低β-木糖苷酶的活性,同時發現放線菌酮能阻斷木聚糖對酶的誘導作用[41]。毛連山等考察了不同分子量大小木聚糖作為碳源對里氏木霉(Trichoderma Reesei)RutC-30 產木聚糖酶酶系組成的影響,結果顯示低分子質量的木聚糖有利于內切-β-木聚糖酶的生成,而較高分子質量的木聚糖則有利于β-木糖苷酶的誘導合成[47]。

4.2 氮源及碳氮比對β-木糖苷酶合成的影響

β-木糖苷酶的合成同時受酶誘導物和酶蛋白質前體的調控,酶誘導物主要為菌株可利用的碳源,而酶蛋白質的前體則主要來自于氮源。因此氮源的種類和添加量同樣會影響β-木糖苷酶的活力和產率。例如,王嵐研究了不同氮源對嗜熱擬青霉產胞外β-木糖苷酶的影響,結果顯示以牛肉蛋白胨為發酵氮源時產胞外β-木糖苷酶酶活最高,尿素次之。但以尿素為氮源時,發酵液中雜蛋白比例較低[40]。

另外,碳氮比也是影響微生物發酵產酶水平的重要因素,一般來說碳氮比過低容易造成微生物因氮源過多而生長過旺,進而對碳源消耗過快導致酶合成水平下降;而碳氮比過高則會造成菌株因氮源不足而生長緩慢,同樣不利于酶的合成。毛連山等在研究里氏木霉RutC-30 產木聚糖酶時發現,較高的碳氮比會顯著促進菌株β-木糖苷酶的發酵得率但同時會抑制內切木聚糖酶的合成[48]。另外結果還顯示在以天然纖維質材料為碳源進行發酵時,碳源的利用順序為木聚糖而后纖維素,同時發酵后期纖維素分解生成的葡萄糖也會對β-木糖苷酶的合成產生明顯的抑制作用。

4.3 其它因素對β-木糖苷酶合成的影響

pH 對微生物生命活動的影響很大。pH 的改變會引起細胞膜正負電荷的改變,從而引起細胞膜透性的變化,影響微生物對營養物質的吸收、酶的形成及活力以及微生物的代謝途徑等。發酵過程中pH 的變化會直接影響微生物的生長及酶的合成,因此通過發酵初期及培養過程中pH 的調控也可以有效促進特定酶系的合成。洪楓在研究初始pH 對里氏木霉合成木聚糖酶影響時發現,低pH 有利于β-木糖苷酶的合成,而且在低pH 條件下木糖苷酶表現出較高的活性,水解木聚糖效率提高了2-3 倍[49]。另外也有研究證實通過在培養基中添加合適的表面活性劑也可以促進β-木糖苷酶的合成[50]。

5 β-木糖苷酶基因的克隆與表達

目前,已發現的天然菌株產β-木糖苷酶水平普遍不高并且所產酶系成分復雜難于純化。因此現階段要實現β-木糖苷酶較大規模生產還存在一定困難。而通過相關工程菌的構建則是解決這一生產瓶頸的重要途徑。

相對國外而言,我國關于重組β-木糖苷酶的研究還比較有限。薛業敏等從Thermoanaerbacter ethanolicus JW200 克隆出編碼高度耐熱穩定性的β-木糖苷酶的基因,以高拷貝質粒pAlter2Ex1 在大腸桿菌中得到高效表達,酶的熱穩定性得到很大提升,重組酶的β-木糖苷酶在75 ℃時半衰期為1 h[51]。吳愛蓮以Thermoanaerobacterium sp.JW/SL YS485 中的β-木糖苷酶基因xylC 為研究對象,經基因定點突變后在大腸桿菌中實現高效表達,結果顯示利用工程菌株發酵產酶水平提高了55 倍(較天然菌株)[52]。梁艷麗等將Bacillus halodurans C-125 中編碼β-木糖苷酶的基因BH1068克隆到大腸桿菌中得到高效表達,使其穩定性提高,并增加了酶對木糖的耐受性,對木糖的耐受能力由56 mmol/L 增加到300 mmol/L[53]。

國外關于β-木糖苷酶克隆及表達的研究相對較多。細菌有Aeromonas caviae ME-1、Bacillus pumilus、Butyrivibrio fibrisolvens、Streptomyces thermoviolaceus OPC-520、Thermotoga maritime 等,真菌有Aspergillus niger、Aspergillus nidulans、Trichoderma reesei、Talaromy ces emesonii 等。例如,Xue 等將海棲熱袍菌(Thermotoga maritima)β-木糖苷酶基因在大腸桿菌中進行表達,重組酶最適反應溫度達到90 ℃[39]。Kitamoto 等將來源于Aspergillus oryzae KBN616 中的β-木糖苷酶基因在強啟動子調控下高效表達,產酶水平較對照組高出13 倍以上[54]。

6 β-木糖苷酶的應用前景

隨著對β-木糖苷酶研究的深入,其應用領域也越來越廣。能源工業方面,利用β-木糖苷酶與木聚糖酶的協同水解能夠高效降解木聚糖為木單糖,而木糖可以被繼續轉化為大宗化工原料(如乙醇、乳酸等)[55]。造紙工業中,β-木糖苷酶可作為生物漂白劑,已有文獻報道β-木糖苷酶單獨或者與木聚糖酶協同作用對麥草漿進行預處理可以明顯提高漂白漿的白度[56]。在醫藥工業,還可以利用β-木糖苷酶水解去除木糖殘基來制造具有重要生理功能的紫杉醇[57]。在食品領域,β-木糖苷酶被應用于食品焙烤、低聚木糖制備、酒類釀造等方面并取得了良好的使用效果。在環境保護方面,β-木糖苷酶的應用使許多工農業廢棄物以及一些生活垃圾可以更徹底的降解,有利于環境保護,同時β-木糖苷酶的使用減少了許多有害的有機或者無機化學試劑的應用,有利于環境社會的可持續發展。

7 β-木糖苷酶研究的現存問題及方向

相對木聚糖酶系其它水解酶而言,β-木糖苷酶的相關研究仍相對薄弱,還存在一些問題需要進行更加深入的研究。首先,目前用于較大規模生產的β-木糖苷酶多來自于轉基因微生物,而關于轉基因微生物的安全性評價方面還存在一些爭議,而目前發現的天然菌株產β-木糖苷酶水平普遍不高,高產β-木糖苷酶天然菌株的獲取仍是今后研究的重要組成部分。其次,當前關于β-木糖苷酶的研究還主要集中在β-木糖苷酶的分離、生產、純化以及性質研究等方面,局限在酶蛋白的整體層面,而對于其三維分子結構和分子作用機制方面的研究還相對欠缺。到目前為止,還無法徹底解釋β-木糖苷酶與其他木聚糖降解酶系組分的協同機理、底物選擇專一性、底物誘導專一性以及結構與功能的關系等方面的問題。同時,隨著研究的不斷深入,一些新的問題不斷出現,需要作出合理的解釋,例如,在某種特定微生物當中,β-木糖苷酶多樣性對于該微生物的意義及多種β-木糖苷酶之間的功能分配與協作問題等。在應用方面,由于各應用領域的工藝要求的不同,對β-木糖苷酶的性質及穩定性要求各不相同,而目前對于特定領域需要的β-木糖苷酶的針對性研究相對較少,使得β-木糖苷酶的應用存在一定的局限性,有待進一步研究。

[1]聶國興,王俊麗,明紅.木聚糖酶的應用現狀與研發熱點[J].工業微生物,2008,38(1):53-59

[2]Tsujibo H,Miyamoto K,Kuda T,et al.Purification,properties,and partial amino acid sequences of thermostable xylanases from Streptomyces thermoviolaceus OPC-520[J].Environ microbiol,1992,58(1):371-375

[3]Tsujibo H,Mitsuo K,Sadao I,et al.Molecular characterization of a high-affinity xylobiose transporter of Streptomyces thermoviolaceus OPC-520 and Its transcriptional regulation[J].J Bacteriol,2004,186(4):1029-1037

[4]Matsuo M,Fujie A,Win M,et al.Four types of β-xylosidase from Penicillium wortmanni IFO 7237[J].Agric Biol Chem,1987,51(9):2367-2379

[5]Lorenz W,Wiegel J.Isolation,analysis,and expression of two genes from Thermoanaerobacterium sp Strain JW/S-YS485:a beta-xylosidase and a novel acetyl xylan esterase with cephalosporin C deacetylase activity[J].J Bacteriol,1997,179(17):5436-5441

[6]Lenartovicz V,deSouza C G,Moreira F G,et al,Temperature and carbon source affect the production and secretion of thermostable βxylosidase by Aspergillus fumigates[J].Process Biochem,2003,38(12):1775-1780

[7]Bajpai P.Microbial xylanolytic enzyme system:properties and application[J].Adv appl microbiol,1997,43(1):141-194

[8]Wong K,Saddler J.Trichoderma xylanases,their properties and application[J].Crit Rev Biotechnol,1992,12(5/6):413-435

[9]Lembo T,Azevedo M,Bloch C,et al.Purification and partial characterization of a new β-xylosidase from Humicola grisea var.thermoidea[J].World J microbiol biotechnol,2006,22(5):475-479

[10]Belfaquiha N,Penninckx M J.A bifunctional β-xylosidase-xylose isomerase from Streptomyces sp.EC 10[J].Enzyme and microbial technol,2000,27(1):114-121

[11]Motoki W,Koji Y,Sachio H,et al.Purification and Properties of an Extracellular β-Xylosidase from Aspergillus japonicas and Sequence Analysis of the Encoding Gene[J].The Society for Biotechnology,Japan,2008,106(4):398-404

[12]Cantarel B,Coutinho P,Rancurel C,et al.The carbohydrate-active enzymes database (CAZy):an expert resource for glycogenomics[J].Nucleic Acids Res,2009,37(database):233-238

[13]Katapodis P,Nerinckx W,Claeyssens M,et al.Purification and characterization of a thermosable intracellular β-xylosidase from the thermophilic fungus Sporotrichum thermophile[J].Process biochem,2006,41(12):2402-2409

[14]Tuohy M G,Puls J,Claeyssens M,et al.The xylan-degrading enzyme system of Talaromyces emersonii:novel enzymes with activity against aryl beta-D-xylosides and unsubstituted xylans[J].J biochem,1993,290(2):515-523

[15]吳華偉,戴軍,邵蔚藍,等.草菇中木糖苷酶的分離純化及其酶學性質[J].無錫輕工大學學報,2003,23(3):30-34

[16]欒宏偉,胡瑩,劉興寶,等.一種來源于Leifsonia shinshuensis DICP 16 菌體的β-D-木糖苷酶的分離純化及其性質[J].生物工程學報,2008,24(5):867-873

[17]Lama L,Calandrell V,Gambacorta A,et al.Purification and characterization of the thermostable xylanase and β-xylosidase by the thermophilic bacterium Bacillus thermantarcticus[J].Res microbiol,2004,155(4):283-289

[18]Bachmann S L,Mccarthy A J.Purification and characterization of a thermostable β-xylosidase from Thermomonospora fusca[J].J general micobiol,1989,135(2):293-299

[19]Shao W L,Wiegel J.Purificafion and characterization of a thermostable β-xylosidase from Thermoanaerobacter enthanolicus[J].J bacteriol,1992,174(18):5848-5853.

[20]Pinphanichakam P,Tangsakul Z,ThongnumwonT,et al.Purification and characterization of β-xylosidase from Streptomyces sp.CH7 and its gene sequence analysis[J].World J microbiol biotechnol,2004,20(7):727-733

[21]Flores M E,Perez R,Huitron C.β-Xylosidase and xylanase characterization and production by Streptomyces sp.CH-M-1035[J].Lett appl microbiol,1997,24(5):410-416

[22]Kurakake M,Osada S,Komaki T.Transglycosylation of β-xylosidase from Aspergillus awamori K4[J].Biosci biotechnol biochem,1997,61(12):2010-2014

[23]Kiss T,Kiss L.Purification and characterization of a thermostable intracellular β-xylosidase from Aspergillus carbonarius[J].World J microbiol biotechnol,2000,16(5):465-470

[24]Kumar S,Ramon D.Purification and regulation of the synthesis of a β-xylosidase from Aspergillus nidulans[J].FEMS microbiol lett,1996,135(2/3):287-293

[25]Kitamoto N,Yoshino S,Ohmiya K,et al.Sequence analysis,overexpression,and antisense inhibition of a β-xylosidase gene,xylA,from Aspergillus oryzae KBN616[J].Appl environ microbial,1999,65(1):20-24

[26]Sulistyo J,Kamiyama Y,Yasui T.Purification and some properties of Aspergillus pulverlentus β-xylosidase with transxylosylation capacity[J].J ferment bioeng,1995,79(1):17-22

[27]Andrade S V,Polizeli M L,Terenzi H F,et al.Effect of carbon source on the biochemical properties of β-xylosidase produced by Aspergillus versicolor[J].Process Biochem,2004,39(12):1931-1938

[28]Saha B C.Purification and properties of an extracellular β-xylosidase from a newly isolated Fusarium proliferatum[J].Bioresour technol,2003,90(1):33-38

[29]Lembo T,Azevedo M O,Bloch J C,et al.Purification and partial characterization of a new β-xylosidase from Humicola grisea var.thermoidase[J].World J microbiol biotechnol,2006,22(5):475-479

[30]Deshpande V,Lachke A,Mishra C,et al.Mode of action and properties of xylanase and β-xylosidase from Neurospora crassa[J].Biotechnol Bioeng,1986,28(12):1832-1837

[31]Yan Q J,Wang L,Jiang Z Q,et al.A xylose-tolerant β-xylosidase from Paecilomyces thermophila:characterization and its co-action with the endogenous xylanase[J].Biores technol,2008,99(13):5402-5410

[32]Ito T,Yokoyama E,Sato H,et al.Xylosidases associated with the cell surface of Penicillium herquei IFO 4674[J].J biosci bioeng,2003,96(4):354-359

[33]Rahman A K,SugitaniN,Hatsu M,et al.A role of xylanase,aipha-Larabinofuranosidase and xylosidase in xylan degeadation[J].Can J microbiol,2003,49(1):58-64

[34]Li Y K,Yao H J,Cho Y T.Effective induction,purification and characterization of Thrichoderma koningii G-39 β-xylosidase with high transferase activity[J].Biotechnol appl bioehem,2000,31(2):119-125

[35]Poutanen K,Puls J.Characteristics of Trichoderma reesei β-xylosidase and its use in the hydrolysis of solubilized xylans[J].Appl microbiol biotechnol,1988,28(4/5):425-432

[36]Hayashi S,Ohno T,Yokoi H.Production and properties of the cellassociated β-xylosidase from Aureobasidium[J].J lnd microbiol biotechnol,2001,26(5):276-279

[37]Yanai T,Sato M.Purification and characterization of an β-D-xylosidase from Candida utilis IFO 0639[J].Biosci biotechnol biochem,2001,65(3):527-533

[38]Bhattacharyya S,Khowala S,Kumar A,et al.Purification and characterization of an extracellular β -xylosidase of Termitomyces clypeatus[J].Biotechnol prog,1997,13(6):822-827

[39]Yemin Xue,Weilan Shao.Expression and characterization of a thermostable β-xylosidase from the hyperthermophile Thermotoga maritime[J].Biotechnology letters,2004,26(19):1511-1515

[40]王嵐.嗜熱擬青霉J18 胞外β-木糖苷酶的純化和性質[D].(碩士學位論文).北京:中國農業大學,2006

[41]Zanoelo F F,Polizeli M L,Jorge J A.Purification and biochemical properties of a thermostable xylose-tolerant β-D-xylosidase from Scytalidium thermophilum[J].J ind microliol biotechnal,2004,31(4):170-176

[42]Hayashi S,Ohno T,Ito M,et al.Purification and properties of the cell-associated β-xylosidase from Aureobasidium[J].J Ind Microbiol Biot,2001,26(5):276-279

[43]Shenq-Chyi Chang,Hui-Chin Chou,Min-Kuei Cheng,et al.Purification and characterization of β-xylosidase from an isolated Xylaria regalis 76072314[J].Fung sci,2005,20(3/4):105-112

[44]Mohamed G,Ines M,Ali G,et al.Catalytic properties of the immobilized Talaromyces thermophilus β-xylosidase and its use for xylose and xylooligosaccharides production[J].Journal of molecular catalysis B:Enzymatic,2009,57(1/4):242-249

[45]Gasparic A,Martin J,Daniel A S,et al.A xylan hydrolase gene cluster in Prevotella ruminicola B (1)4:Sequence relationships,synergistic in-teractions,and oxygen sensitivity of a novel enzyme with exoxylanase and beta-(1,4)-xylosidase activities[J].Environ microbiol,1995,61(8):2958-2964

[46]Tsujibo H,Takada C,Tsuji A,etal.Cloning,sequencing,and expression of the gene encoding an intracellular beta-D-xylosidase from Streptomyces thermoviolaceus OPC-520[J].Biosci biotechnol biochem,2001,65(8):1824-1831

[47]毛連山,勇強,余世袁.低聚木糖生產用木聚糖酶的選擇性合成[J].現代化工,2004,24(1):132-134

[48]毛連山,余世袁.低聚木糖生產用里氏木霉木聚糖酶選擇性合成的研究現狀[J].現代化工,2007,27(2):17-21

[49]洪楓,陳琳,余世袁.培養基初始pH 值對木聚糖酶合成的影響[J].工業微生物,1999,29(4):15-18

[50]Long K,Knapp J S.The effect of junlon PW110 and tween 80 on the production of cellulolytic enzymes by Coprinus cinereus[J].Mycological research,1991,95(9):1077-1081

[51]薛業敏,盧晨,毛忠貴,等.阿拉伯糖苷酶基因的克隆、表達以及表達產物的酶的穩定性[J].中國農業大學學報,2003,8(5):9-13

[52]吳愛蓮.嗜熱厭氧菌中糖苷酶的定向改造[D].南京:南京師范大學,2007

[53]梁艷麗,李興玉,毛自朝,等.嗜堿芽孢桿菌C-125 木糖苷酶積基因的表達與酶特性鑒定[J].生物工程學報,2009,25(9):1386-1393

[54]Kitamoto N,Yoshino S,Ohmiya K,et al.Sequence analysis,overexpression and antisence inhibition of a β-xylosidase gene,xylA,from Aspergillus oryzae KBN616[J].Environ microbiol,1999,65(1):20-24.

[55]Katahira S,Fujita Y,Mizuike H,et al.Construction of a xylan-fermenting yeast srain through codisplay of xylanolytic enzyme of the surface of xylose utilizing Saccharomyces cerevisie cells[J].Appl environ microbiol,2004,70(9):5407-5414

[56]毛連山,尤紀雪,宋向陽,等.內切木聚糖酶與木糖苷酶預處理對麥草漿漂白性能的影響[J].林產化學與工業,2003,23(2):7-11

[57]Patel R N.Tour de paclitaxel:biocatalysis for semisynthesis[J].Annu rev microbiol 1998,52(1):361-395

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