糖基化大豆分離蛋白對肌原纖維蛋白功能特性的影響

王 博，伊 東，謝夢穎，潘 男，張莉麗*，夏秀芳*

（東北農業大學食品學院，黑龍江 哈爾濱 150030）

糖基化大豆分離蛋白對肌原纖維蛋白功能特性的影響

王 博，伊 東，謝夢穎，潘 男，張莉麗*，夏秀芳*

（東北農業大學食品學院，黑龍江 哈爾濱 150030）

選擇70 ℃條件下反應4 h所得到的糖基化大豆分離蛋白樣品（蛋白與葡萄糖質量比1∶1）與肌原纖維蛋白以不同比例（9∶1、8∶2、7∶3、6∶4、5∶5）進行復配，測定不同復合蛋白的乳化性能、濁度、表面疏水性、凝膠特性（質構特性、白度值、微觀結構分析），探討糖基化大豆分離蛋白對肌原纖維蛋白功能性質的影響及其機理。結果表明：復合蛋白的乳化性和表面疏水性均較肌原纖維蛋白顯著提升（P＜0.05）；復合蛋白的濁度隨著加熱溫度的升高（30～80 ℃）而不斷增加，隨著糖基化大豆分離蛋白比例的加大，濁度不斷變??；肌原纖維蛋白與糖基化大豆分離蛋白混合凝膠的硬度和彈性均顯著優于其與天然大豆分離蛋白混合凝膠（P＜0.05），微觀結構比其與天然大豆分離蛋白混合凝膠更加致密均勻；與純肌原纖維蛋白凝膠相比，混合凝膠的白度值下降，但混合比例為9∶1時白度值下降不顯著（P＞0.05）。

大豆分離蛋白；糖基化；肌原纖維蛋白；乳化性；凝膠特性

大豆分離蛋白（soybean protein isolate，SPI）是一種含有高蛋白、低膽固醇的功能性食品添加劑[1]。由于其資源豐富，具有較高的營養價值，近年來許多研究者致力于SPI功能性和新用途開發的研究[2]。近年來，合理利用SPI功能性并將其應用到肉品中以提高其品質被廣泛應用，同時滿足了消費者對肉制品品質的追求[3]。

盡管SPI具有良好的凝膠性、乳化性等功能性質，但當SPI應用于肉制品時，由于普通肉制品加熱的最終溫度遠低于SPI的變性溫度，從而使得SPI不能發生有效的結構改變，這樣不利于其與肌原纖維蛋白（myofibrillar protein，MP）的相互作用[4-5]。因此許多學者開始研究改性后SPI對MP功能性質的影響，并發現適當改性后的SPI可以顯著提高MP的功能性質。梁婧等[6]的研究中將不同改性方式的SPI和MP混合，其乳化性和凝膠性顯著提高。張明成[7]用酶水解結合酶交聯改善大豆分離并將其添加到火腿腸中，結果顯示改性后的MP和SPI復配后的乳化性明顯上升?？缀既绲萚8]在探討優化牦牛MP和熱改性SPI共凝膠條件的過程中發現，MP-SPI溶液體積比9∶1、SPI熱改性溫度100 ℃時能形成很好的共凝膠。歐陽艷華等[9]探究了經酶改性的SPI與雞肉MP復配后的凝膠性和乳化性，結果表明混合蛋白的凝膠性和乳化性明顯改善。

糖基化改性由于其不需要外加任何化學試劑，是一個自然、自發的反應[10]，蛋白質的糖基化改性可以提高蛋白質的功能性質、增加酶的熱穩定性，是一種很有前景的改性方法。因此本實驗研究糖基化改性后的SPI對MP功能性質的影響，以期為SPI的綜合利用和生產出具有較高質量的肉制品提供理論指導。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

SPI 哈爾濱高科大豆食品公司；豬背部最長肌哈爾濱家樂福超市。

葡萄糖 上海國藥集團；氯化鈉、氯化鎂、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、乙二醇二乙醚二胺四乙酸（ethylenebis(oxyethylenenitrilo)tetraacetic acid，EGTA）、十二烷基硫酸鈉（sodium dodecyl sulfate，SDS）、溴酚藍 天津市津東天正精細化學試劑廠。

1.2 儀器與設備

AL-104型精密電子天平 常州萬泰天平儀器有限公司；DK-8B型電熱恒溫水浴鍋 西化儀科技有限公司；STARTER 3100型pH計 成都啟運通儀器有限公司；冷凍干燥機 常州中云干燥工程有限公司；QT-1旋渦混合器 西安華辰樂天實驗室設備有限公司；TG16-WS型高速離心機 常州市萬合儀器制造有限公司；TU-1800紫外-可見光分光光度計 濟南博鑫生物技術有限公司；T18高速勻漿機 德國IKA公司；TA-XT Plus型質構分析儀 英國Stable Micro System公司；色差儀CS-10杭州彩譜科技有限公司；S-3400N掃描電子顯微鏡日本日立公司；EMS 150R離子噴膜儀 海德創業生物科技有限公司。

1.3 方法

1.3.1 糖基化SPI的制備

參照王松等[11]的方法并略加修改，SPI和葡萄糖質量比1∶1放于燒杯中用蒸餾水溶解，使蛋白質量分數為8%，保鮮膜密封，將混合液置于70 ℃恒溫水浴鍋中反應4 h后，取樣冷凍干燥，測定樣品蛋白含量，備用。

1.3.2 MP的提取

參照Liu Gang等[12]的方法并略加修改。選取豬背部最長肌，去除可見脂肪和結蹄組織后，將肉切成小塊絞碎稱質量備用。提取，加入4 倍體積的提取液（10 mmol/L磷酸鹽、 0.1 mol/L NaCl、2 mmol/L MgCl2和1 mmol/L EGTA，pH 7.0）勻漿60 s，4 ℃、3 500 r/min冷凍離心15 min，取沉淀，以同樣方法再提取兩次，將沉淀中加入4 倍體積洗液（0.1 mol/L NaCl）勻漿60 s，在4 ℃、3 500 r/min條件下冷凍離心15 min，去上清液，重復洗一次，去上清液后再加4 倍體積洗液，勻漿60 s，4 層紗布過濾，用0.1 mol/L HCl調pH值至6.0，3 500 r/min、4 ℃冷凍離心15 min，得到沉淀即為MP，在4 ℃保存備用，存儲時間不得超過48 h。用雙縮脲法測定其蛋白含量。整個提取過程需在4 ℃條件下完成。

1.3.3 糖基化SPI與MP的復合

提取的MP與糖基化SPI分別按蛋白質量比9∶1、8∶2、7∶3、6∶4和5∶5進行復合，對復合蛋白進行各指標測定。

1.3.4 復合蛋白性質的測定

1.3.4.1 復合蛋白乳化活性及乳化穩定性的測定

參照Agyare等[13]的方法，并稍作修改。復合蛋白溶解在pH 6.5、0.1 mol/L磷酸鹽緩沖溶液中，使蛋白質量濃度為1 mg/mL，將2.0 mL大豆油和8.0 mL蛋白溶液放入直徑為中2.5 cm的塑料離心中用勻漿機高速勻漿1 min，立即從距離心管底部0.5 cm的地方取勻漿液50 μL加入到5 mL 0.1%的SDS溶液中，振蕩混勻后用TU-1800紫外分光光度計在500 nm波長處測定吸光度記作A0，勻漿后10 min再次在相同位置取勻漿液50 μL加入到5 mL 0.1%的SDS溶液中，振蕩混勻后測定吸光度記做A10，用0.1% SDS溶液作空白對照。復合蛋白溶液的乳化活性指數（emulsifying activity index，EAI）和乳化穩定性指數（emulsifying stability index，ESI），分別用公式（1）、（2）來表示。

式中：A500nm為500 nm波長處的吸光度；φ為油相體積分數（φ = 0.2%）；ρ為蛋白質質量濃度/（mg/mL）；A0、A10為乳狀液在0、10 min的吸光度。

1.3.4.2 復合蛋白濁度的測定

復合蛋白的濁度根據Benjakul等[14]的方法并稍作修改進行測定。復合蛋白配制成蛋白質量濃度1 mg/mL的溶液后吸取5 mL放入試管中，將試管分別放在30、40、50、60、70、80 ℃的水浴鍋中加熱30 min后取出，冷卻至室溫，以不加蛋白的溶液為空白，在600 nm波長處測定吸光度。

1.3.4.3 復合蛋白表面疏水性的測定

依據Chelh等[15]的方法測定復合蛋白的表面疏水性。1 mL的3 mg/mL蛋白溶液加入200 μL 1 mg/mL的溴酚藍，室溫條件下攪拌10 min后，7 000 r/min離心15 min，取上清液稀釋10 倍后在595 nm波長處測定吸光度（A樣品）。溴酚藍空白樣是用1 mL的pH 6.0 20 mmol/L的磷酸鹽緩沖液加200 μL溴酚藍，磷酸鹽緩沖液作空白樣（A空白）。表面疏水性以溴酚藍結合量表示，如公式（3）所示。

1.3.4.4 復合蛋白凝膠的制備

將復合蛋白按比例溶解在0.6 mol/L的NaCl溶液中配制成蛋白質量濃度為40 mg/mL的溶液，將溶液放入25 mm×40 mm密封的玻璃瓶中后，將其放入80 ℃的水溶鍋中加熱30 min，取出凝膠放在冰浴中冷卻后貯存在2～4 ℃的冰箱中過夜備用。制備好的凝膠在每次分析前要放在室溫條件下（25～27 ℃）平衡30 min。

1.3.4.5 復合蛋白凝膠質構的測定

復合蛋白凝膠室溫條件下平衡30 min，將待測樣品置于測定平臺上，利用物性分析儀在室溫條件下進行測量。以質構剖面分析方法測定凝膠的硬度和彈性等。物性儀的參數設定如下：測試前速率為5 mm/s，測試速率為2 mm/s，測試后速率為5 mm/s，下壓距離為凝膠高度的50%，引發力為5 g，探頭型號選擇P/0.5。每個樣品進行3 次平行實驗，取平均值。

1.3.4.6 復合蛋白凝膠白度值的測定

復合凝膠的白度值用色差儀來測定，色差儀可以測定出凝膠的L值、a值、b值，白度值按Park[16]的方法來計算，見公式（4）。

式中：L代表亮度（0代表黑色，100代表白色）；a代表紅度（a為正時表示紅色，a為負時表示綠色）；b代表黃度（b為正時表示黃色，b為負時表示藍色）。

1.3.4.7 復合蛋白凝膠微觀結構的觀察

取待測凝膠樣品，切成約2 mm×5 mm的小條，用體積分數為2.5% pH 6.8的戊二醛浸泡過夜固定，再用0.1 mol/L pH 6.8磷酸鹽緩沖液洗滌3 次，每次10 min。然后分別用體積分數為50%、70%、80%、90%的乙醇進行脫水，每次10 min；再用100%乙醇脫水3 次，每次10 min。之后用氯仿脫脂1 h，再分別用100%乙醇與叔丁醇體積比1∶1和叔丁醇進行置換各一次，每次15 min。用冷凍干燥儀對樣品進行干燥。掃描時將凝膠樣品觀察面向上黏貼在掃描電子顯微鏡樣品臺上，用EMS 150R型離子濺射鍍膜儀進行離子濺射噴金，將處理好的樣品放入樣品盒中待檢。加速電壓為5 kV，在1 000 倍的放大條件下進行掃描觀察。

1.4 數據分析

每個實驗重復3 次。數據統計分析采用Statistica 8.1軟件進行，使用Tukey HSD程序進行差異顯著性（P＜0.05）分析，采用Sigmaplot 10.0軟件作圖。

2 結果與分析

2.1 糖基化SPI對MP乳化性能的影響

乳化能力通常是衡量一定量的蛋白質溶液在一定條件下所能乳化油的量[17]。肉的乳化體系是一種由斬拌或絞碎的脂肪顆粒、溶出的蛋白、各種水溶及水不溶物質組成的多相復合體系[18]。評價蛋白質乳化能力主要有EAI和ESI兩個指標。

圖1 糖基化SPI對MP乳化活性（a）和乳化穩定性（b）的影響Fig. 1 Effect of glycosylated SPI on the emulsifying activity (a) and emulsifying stability (b) of myof i brillar protein

圖1a展示的是不同比例的MP與SPI、糖基化SPI復合蛋白乳化活性的變化。乳化活性指的是蛋白乳化液的濁度與乳化微粒界面面積之間的線性關系，主要反映蛋白質在油水界面的擴散、吸附和定向排列[19]。從圖1a可以看出，復合蛋白的乳化活性均高于MP，并隨著SPI、糖基化SPI所占比例的增加呈現上升的趨勢。在同一復配比例條件下，MP-糖基化SPI復合蛋白的乳化活性顯著高于MP與SPI復合蛋白（P＜0.05）。復配比例為5∶5時，MP與SPI、糖基化SPI復合蛋白的乳化活性分別達到了15.03、20.06 m2/g，后者比前者提高了33.42%。這是因為SPI是一種優良的天然乳化劑，但由于其較差的溶解性限制了其乳化性能的發揮。而經過糖基化改性后的SPI由于引入了親水羥基，溶解性增加，同時暴露出疏水性氨基酸殘基，使其能夠較好地吸附在油水界面，從而與MP復合后可顯著提高其乳化活性。

圖1b展示的是不同比例的MP與SPI、糖基化SPI復合蛋白乳化穩定性的變化。乳化穩定性與乳化微粒直徑或顆粒度有一定的關系，通常乳化微粒越小乳化穩定性越好，但也受其他的因素影響[20]。由圖1b可知，在同一復配比例條件下，MP與糖基化SPI復合蛋白的乳化穩定性顯著高于MP與SPI復合蛋白（P＜0.05），并且其隨著糖基化SPI所占比例的增加呈現先上升后下降的趨勢，在復配比例7∶3時達到最大值39.12%，比MP的乳化穩定性提高了68.18%。得到這一結果可能是因為糖基化SPI增加了混合體系的黏度，從而使油水界面上蛋白質的吸附層厚度增加，繼而阻止油滴聚集，最終使得體系乳化穩定性提高。但當糖基化SPI比例過大時，復合蛋白的親水性增強，會優先吸附體系中的水使得蛋白的疏水基團不能有效地暴露在油水界面上，因此導致乳化穩定性下降[21]。

2.2 糖基化SPI對MP濁度的影響

濁度是反映蛋白聚集程度的指標，形成具有優良質構特性的凝膠的前提條件是形成大的聚集物[22]。它可以反映溶液中懸浮粒子的數量和大小，當濁度小時說明蛋白質分散并且懸浮顆粒的直徑小，當濁度升高時說明蛋白聚集、懸浮顆粒直徑變大。蛋白質的濁度能夠用來粗略地評價蛋白聚集程度[23]。圖2所示是不同比例MP與SPI、糖基化SPI復合溶液濁度的變化。隨著加熱溫度的升高（30～80℃），各溶液的濁度不斷增加，這是因為蛋白溶液在加熱過程中蛋白質單體可通過疏水建、氫鍵、二硫鍵、靜電作用以及范德華力等形成蛋白聚集體[24]。當加熱溫度相同時，MP與SPI、糖基化SPI復合溶液的濁度均小于MP溶液，并且隨著SPI和糖基化SPI比例的加大濁度不斷變小。這說明MP間的結合能力大于MP與SPI間的結合。還可以發現，MP-糖基化SPI復合液的濁度比在相同溫度、混合比例的MP-SPI復合液顯著增加。在加熱溫度為80 ℃時，比例為9∶1、8∶2、 7∶3、6∶4、5∶5的MP-糖基化SPI復合液的濁度比MP-SPI復合液分別提高了18.41%、14.76%、22.79%、11.94%、10.81%。這是由于SPI經過糖基化改性后結構發生改變，暴露出許多內部基團，同時引入糖鏈，增加了蛋白間聚合的機會，形成較多的蛋白聚集體。

圖2 糖基化SPI對MP濁度的影響Fig. 2 Effect of glycosylated SPI on the turbidity of myof i brillar protein

2.3 糖基化SPI對MP表面疏水性的影響

圖3 糖基化SPI對肌原纖維蛋白表面疏水性的影響Fig. 3 Effect of glycosylated SPI on the surface hydrophobicity of myof ibrillar protein

表面疏水性是蛋白質重要的結構性質，可用來評價蛋白質的空間構像，與蛋白質的功能性質息息相關。在分析蛋白分子三維結構時會發現有一些疏水基團暴露在分子表面，這些疏水性基團片段對分子之間相互作用方面起了關鍵作用，此即為蛋白質的表面疏水性[25]。因此，表面疏水性對理解蛋白質的功能性質起著至關重要的作用。蛋白質的表面疏水性不僅可以反映分子表面疏水性基團的相對含量，還可以用以衡量蛋白質的變性程度[15]。不同比例的MP與SPI、糖基化SPI復合蛋白表面疏水性的變化如圖3所示，復合蛋白的表面疏水性均高于MP，并隨著SPI、糖基化SPI所占比例的增加呈現上升的趨勢。在同一復配比例條件下，MP-糖基化SPI復合蛋白的表面疏水性顯著高于MP-SPI復合蛋白（P＜0.05）。MP的表面疏水性（溴酚藍結合量）為20.99 μg，而復配比例為5∶5時，MP與SPI、糖基化SPI復合蛋白的表面疏水性分別達到了28.92、40.17 μg，比MP的表面疏水性分別提高了37.78%、91.38%，并且后者比前者提高了38.90%。這是由于未改性SPI中多數的疏水性基團通過疏水作用而聚集，并埋藏在分子內部[26]。而SPI經過糖基化改性后，蛋白分子結構展開使埋藏在內部的更多疏水基團暴露出來，并且蛋白參與反應后會有更多的疏水性氨基酸殘基存在，從而可以顯著提高混合蛋白的表面疏水性。

2.4 糖基化SPI對MP凝膠特性的影響

2.4.1 糖基化SPI對MP凝膠質構的影響

圖4 糖基化SPI對MP凝膠質構的影響Fig. 4 Effect of glycosylated SPI on the texture prof i le analysis of myof i brillar protein gels

MP與SPI、糖基化SPI按蛋白質量比9∶1、8∶2、7∶3、6∶4、5∶5混合制備復合凝膠，凝膠質構的變化如圖4所示。蛋白質凝膠的質構特性能夠很好地體現蛋白質形成凝膠的能力，其中硬度和彈性是蛋白質凝膠質構最主要的兩個參數。從圖4可以看出，與MP凝膠相比，添加SPI和糖基化SPI制備的復合凝膠的硬度和彈性均顯著降低（P＜0.05），并且隨著SPI和糖基化SPI添加量的增加，凝膠的硬度和彈性均呈現下降的趨勢。這與馬宇翔等[27]的研究結果一致，他們研究了SPI對鹽溶豬肉蛋白熱誘導凝膠強度的影響，結果表明，SPI添加量越高混合蛋白凝膠的強度越低。這是因為無論是天然還是改性后的SPI在蛋白質量濃度為4 g/100 mL時都無法獨立形成凝膠[28]，而再將其添加到MP中，會使得MP的濃度下降，MP的凝膠強度在一定范圍內與蛋白質量濃度成正比，因此，添加SPI的量越大，MP分子在形成凝膠網絡結構時受到的阻礙越大，無法形成強度較好的凝膠。從圖4還可以發現，MP-糖基化SPI復合凝膠的硬度和彈性均顯著高于同一比例條件下天然MP-SPI復合凝膠，在復合比例為9∶1、8∶2、7∶3、6∶4、5∶5時，凝膠硬度分別提高了38.51%、42.46%、22.01%、7.38%、12.15%，凝膠彈性分別提高了5.27%、15.72%、10.02%、1.65%、4.20%。這與Feng等[29]的觀點一致，其發現加入改性后的SPI可以有效改善混合凝膠的強度。這是由于SPI經糖基化改性后引入了糖鏈，分子運動阻力增大，黏度增加，同時反應后蛋白質的疏水性側鏈殘基會暴露出來，從而有利于與MP的相互作用[30]。

2.4.2 糖基化SPI對MP凝膠白度值的影響

表1 糖基化SPI對MP凝膠白度值的影響Table 1 Effect of glycosylated SPI on the whiteness of myof i brillar protein gels

不同比例的MP與天然SPI、糖基化SPI混合凝膠的白度值變化如表1所示，MP與天然SPI、糖基化SPI混合凝膠的白度值均低于純MP凝膠，并且隨著天然SPI和糖基化SPI添加比例的增大，混合凝膠的白度值呈逐漸變小的趨勢。這與楊振[21]的研究結果一致，向MP凝膠中添加SPI會使得其白度值降低。得到這一結果是因為天然SPI本身呈現淡黃色，并且SPI在糖基化改性過程中會形成褐色色素類物質。但通過差異顯著性分析可以發現，MP-糖基化SPI以9∶1混合形成凝膠的白度值與純MP凝膠白度值差異不顯著（P＞0.05）；在復合比例為9∶1、8∶2、7∶3時，MP-糖基化SPI混合凝膠的白度值略低于MP-SPI復合凝膠，但差異不顯著（P＞0.05），隨著SPI比例的進一步增加，兩者間的差異顯著（P＜0.05）。因此，在將糖基化SPI應用于肉制品時，為了避免影響肉制品的感官顏色，應選擇適當的復配比例。

2.4.3 糖基化SPI對MP凝膠微觀結構的影響

圖5 糖基化SPI對MP凝膠微觀結構的影響Fig. 5 Effect of glycosylated SPI on the microstructure of myof i brillar protein gels

掃描電子顯微鏡是觀察凝膠微觀結構的主要方法，通過掃描電子顯微鏡觀察蛋白質凝膠的微觀結構可以直觀地反映凝膠的結構與強度的關系。圖5展現的是MP凝膠、MP與SPI和糖基化SPI按不同比例制備的混合凝膠的微觀結構。由于實驗條件有限，MP-糖基化SPI以6∶4、5∶5形成的凝膠較弱，取樣未成功，因此沒有得到其微觀結構圖?？梢钥闯?，MP凝膠有較好的空間網絡結構，其結構均勻致密，線條纖細，形成的網格細小，蛋白質間相互交聯，沒有明顯的空洞。而隨著SPI添加量的增大，混合凝膠所形成的網絡結構越來越松散不規則，線條粗細不均勻，形成大小不同的空洞和斷層。這都是由于SPI的不規則碎片和小分子無序混亂地與MP混合，阻礙了MP形成較好的網絡結構[31]。當MP-SPI混合比例為6∶4和5∶5時幾乎不能觀察到網絡結構，只能觀察到SPI的不規則碎片。這與馬宇翔等[27]的研究結果也是一致的，其發現添加SPI的混合凝膠的結構變得粗糙。從圖5還可以發現，在相同比例條件下，MP-糖基化SPI形成的凝膠的網絡結構要好于MP-SPI所形成的。尤其是以9∶1混合的MP-糖基化SPI凝膠的網絡結構能與純MP凝膠相媲美，網絡結構也很致密均勻，但略有空洞形成。由此可以看出，蛋白凝膠微觀結構決定了凝膠的質構特性，網絡結構越致密均勻，其硬度和彈性越好。這與圖4所展現的凝膠硬度和彈性是一致的。

3 結 論

通過對復合蛋白乳化性質、濁度、表面疏水性及凝膠質構特性和白度值的測定，并對凝膠微觀結構進行觀察可知：MP-糖基化SPI的乳化活性和乳化穩定性均較MP-SPI顯著提升（P＜0.05），并且隨著糖基化SPI所占比例的增大乳化活性呈上升趨勢；MP-糖基化SPI的濁度與表面疏水性高于MP-SPI，表面疏水性隨著糖基化SPI所占比例的增加呈現上升的趨勢，并且在同一復合比例條件下，MP-糖基化SPI的表面疏水性顯著高于MP-SPI（P＜0.05）；MP-糖基化SPI復合凝膠的硬度和彈性均顯著優于MP-SPI復合凝膠（P＜0.05）；在一定比例條件下，MP-糖基化SPI復合凝膠的微觀結構比MP-SPI復合凝膠更加致密均勻。通過本實驗的研究得出，糖基化SPI與天然SPI相比對混合蛋白的功能性質起到了積極的作用，從而拓寬了SPI在食品工業（尤其是肉制品）中的應用。

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Effect of Glycosylated Soybean Protein Isolate on Functional Properties of Myof i brillar Protein

WANG Bo, YI Dong, XIE Mengying, PAN Nan, ZHANG Lili*, XIA Xiufang*
(College of Food Science, Northeast Agricultural University, Harbin 150030, China)

Glycosylated soybean protein isolate (SPI) was prepared by reaction between SPI and glucose at a ratio of 1:1 (m/m) at 70 ℃ for 4 h, and its blends with myof i brillar protein (MP) at different ratios of 9:1, 8:2, 7:3, 6:4 and 5:5 (m/m) were determined for emulsifying properties, turbidity, surface hydrophobicity and gel properties (texture properties, whiteness and microstructure) in order to elucidate the effect and mechanism of glycosylated SPI on the functional properties of MP. The results showed that the emulsifying properties and surface hydrophobicity of glycosylated SPI and MP blends were significantly improved compared with MP (P ＜ 0.05). The turbidity of the blended proteins rose with increasing temperature (30-80 ℃), but it decreased with higher proportion of glycosylated SPI. The gel hardness and springiness of MP and glycosylated SPI blends were signif i cantly better than those of MP and native SPI blends (P ＜ 0.05), and the gel microstructure was more compact and uniform than that of MP and native SPI blends. Compared with MP, the gel whiteness of the mixed proteins signif i cantly decreased, except for no signif i cant difference at a mixing ratio of 9:1 (P ＞ 0.05).

soybean protein isolate; glycosylation; myof i brillar protein; emulsifying properties; gel properties

10.7506/spkx1002-6630-201707011

TQ936.2

A

1002-6630（2017）07-0063-07

王博, 伊東, 謝夢穎, 等. 糖基化大豆分離蛋白對肌原纖維蛋白功能特性的影響[J]. 食品科學, 2017, 38(7): 63-69. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201707011. http://www.spkx.net.cn

WANG Bo, YI Dong, XIE Mengying, et al. Effect of glycosylated soybean protein isolate on functional properties of myof i brillar protein[J]. Food Science, 2017, 38(7): 63-69. (in Chinese with English abstract)

10.7506/spkx1002-6630-201707011. http://www.spkx.net.cn

2016-04-28

國家高技術研究發展計劃（863計劃）項目（2013AA102208）；黑龍江省博士后資助項目（LBH-15013）；黑龍江應用技術研究與開發計劃重大項目（GA15B302）

王博（1992—），女，碩士研究生，研究方向為畜產品加工。E-mail：wangbo9214@163.com

*通信作者：張莉麗（1981—），女，副教授，博士，研究方向為發酵和蛋白質工程。E-mail：Lilizhang2011@163.com夏秀芳（1973—），女，教授，博士，研究方向為畜產品加工。E-mail：Xxfang524@163.com