?

MscL與抗生素的相互作用及其潛在用途

2018-03-31 06:42王曉敏唐思陽李月舟
生物學雜志 2018年3期
關鍵詞:鏈霉素靶標細胞膜

江 蘭,王曉敏,唐思陽,李月舟

(浙江大學 醫學院,杭州 310058)

21世紀,全球死亡人數的四分之一源于微生物感染,霍亂與結核被發現再次成為威脅人類生命健康的致命疾病[1]。人類面臨的一個主要醫療問題是細菌引起的某些重癥感染被發現已對常用抗生素產生了抗性[2]。青霉素廣泛使用后僅一年,相當數量的金黃色葡萄球菌(Staphycococcusaureus,S.aureus)對青霉素形成了抗性;幾年后,超過50%的金黃色葡萄球菌不再對青霉素這種藥物敏感[3]。目前,每天都有越來越多的常見或罕見的細菌被報道對不同類型的抗生素形成耐藥性,抗生素的過量使用和病人未按醫囑完成完整的抗生素治療方案都在促使耐多藥細菌(multi-drug resistance, MDR)的出現[4]。耐藥菌如腸桿科細菌、結核桿菌、肺炎桿菌與淋球菌正嚴重威脅人類健康。但是由于財政、管理和科學等諸多障礙,新藥的研發進程已減緩甚至停滯[5-6]。因此,治療病人的MDR細菌感染日益困難。目前,在抗生素的開發渠道研究中僅存在幾種相對較新的小分子[7]。MscL在細菌中普遍存在且氨基酸序列高度保守,此外,人類基因組不含MscL的基因。MscL被認為是 20種最為頂尖的藥物靶標之一[8]。因而,本文就MscL與抗生素的相互作用及其在藥物輸送過程中的潛在用途進行綜述。

1 機械敏感通道

機械敏感通道(mechanosensitive channels, MS), 或稱“機械門控通道”,是一種跨膜通道蛋白,可以感受細胞膜表面的張力,將外界的物理刺激轉化為胞內的生化信號,從而影響細胞的生命活動[9-10]。

1.1 機械敏感通道的分布

MS通道最早在雞骨骼肌細胞中發現[11]。隨著研究的深入,發現其在動物、植物與細菌中廣泛存在[12]。在哺乳動物中,MS通道涉及眾多的生理功能,如細胞生長、細胞容積調節、血壓調控、聽力、觸覺、平衡和痛覺;許多疾病,如神經與肌肉退變、動脈硬化、高血壓、心律失常和青光眼等,都與MS通道異常有關[12-13]。

1.2 細菌上的機械敏感通道

目前,在大腸桿菌中已知有4種MS通道,根據電導將其分為MscM(mini, M)、MscS(small, S)、MscK(potassium, K)和MscL(large, L)[14]。迄今為止,研究最為透徹的是大電導機械敏感通道MscL。大腸桿菌MscL由5個相同的亞基構成,每個亞基含有136個氨基酸,分子質量約為17 ku,其大部分氨基酸為非極性氨基酸,不含半胱氨酸(Cys);每個MscL亞基含有兩個跨膜區域( transmembrane1, TM1與 transmembrane 2, TM2), 一個細胞外Loop區域和位于細胞內的N端與C端[15]。研究表明TM1形成MscL的孔道,TM2位于孔道外側并和膜脂質作用; MscL直接感知細胞膜上的張力而開放,并介導離子、小分子、甚至小的蛋白質通過細胞;MscL不具備離子選擇性,溶質的分子直徑為其唯一的選擇依據[16]。

在革蘭氏陽性菌、革蘭氏陰性菌與古細菌中都有發現MscL的存在,而且細菌MscL的氨基酸序列具有很高的保守性,TM1和TM2中部分氨基酸位點的保守性可高達90%和80%[17-18]。但在哺乳動物和人類基因組中并沒有發現有MscL的同源體。MscL最早在大腸桿菌(E.coli)中發現。研究發現,在細菌的滲透調節過程中,MscL作為 “緊急釋放閥”而起作用:在細菌的外部環境的滲透壓急劇下降時,首先,水開始進入細菌細胞引起細胞膨脹,細胞膜上產生張力;然后,細胞膜上的MscL直接感知張力而開放并且形成一個直徑約為30 ?的通道,釋放胞內物質,維持滲透壓的平衡,從而避免細胞的裂解[19]。MscL敲除的大腸桿菌對低滲沖擊特別敏感,而表達MscL后,其低滲致死的表型可以被恢復正常[20]。MscL對細菌的生長也有非常重要的作用,MscL功能異常的突變體會釋放細胞內容物導致細菌的生長緩慢甚至引起細菌死亡。因此,必須嚴格調節與控制MscL的開放。

結構和功能的研究顯示MscL是5個TM1緊密捆綁構成一個漏斗狀結構的通道,在胞質側形成一個疏水的限制性位點,此位點的通道直徑約2?,為整個通道最窄的位置。限制性位點作為通道的閘門而發揮作用,因此,在MscL的開放過程中,疏水閘門的直徑范圍約為2?~30?[21],小分子藥物可憑借MscL進入細菌,影響細菌的生長;并且,MscL純化重組于人工膜仍然能夠保持原有的活性與功能[22]。因此,對于藥物而言,MscL是一個非常好的靶標。

2 MscL與抗生素的相互作用

2.1 MscL增強鏈霉素的藥效

鏈霉素是人類發現的第一種氨基糖苷類抗生素,產生于放線菌屬中的鏈霉菌。自1944年發現以來,其作用機制得到了廣泛的研究。它的主要作用機制為:首先,鏈霉素進入細胞;然后,它與核糖體30S亞基的S12蛋白結合并抑制翻譯,并且可能引起mRNA誤讀[23]。鏈霉素廣泛用于治療由革蘭氏陽性菌與革蘭氏陰性菌引起的細菌感染疾病,如結核病、心內膜感染、腦膜感染和瘟疫[24-25]。

但是,體積大且帶電荷的鏈霉素進入細菌細胞內部的機制在很大程度上是未知的。直到最近,有研究報道MscL通道的表達極大程度地增加了鏈霉素與二氫鏈霉素的效力,然而在MscS通道表達時沒有觀察到效力差異,這似乎表明鏈霉素特異性地直接激活通道MscL[26]。目前,有研究人員發現了鏈霉素進入細胞的一種新機制:二氫鏈霉素與MscL的特定部位(如E.coliMscL 第19位亮氨酸L19)直接結合并修飾MscL通道構象,MscL通道被激活和打開,胞內的K+外流,導致細胞膜電位超極化;超極化加大了細胞內外的電化學梯度,使胞外的帶正電的鏈霉素更容易進入細菌細胞,從而增強鏈霉素的藥效[27]。

數據表明,直徑小于30?的化合物則可以通過MscL[28]。而鏈霉素的直徑約為10?,因此,通道MscL可以介導鏈霉素進入細菌細胞,從而殺滅細菌。因此,MscL可能是鏈霉素進入細胞質的一種新途徑。此外,在未表達MscL的菌株中,鏈霉素仍有藥效(但此時需要更高濃度的鏈霉素)[26]。這表明,鏈霉素還可以憑借MscL外的其他途徑進入細胞。MscL不但可以增強鏈霉素的藥效,還可以增強其他一些藥物的藥效。如奇霉素、紫霉素、硝呋奇特等抗生素在MscL表達的菌株藥效能得到極大增強[26]。

綜合結果表明,MscL可以增強抗生素進入細胞質的效率,從而增強抗生素的藥效。這表明可以將MscL作為抗生素研究的靶標。

2.2 MscL協助治療耐甲氧西林金黃色葡萄球菌感染

金黃色葡萄球菌是造成傷口化膿的主要原因,它主要感染皮膚與軟組織等,它是威脅人類健康的主要致病菌之一[29]。1959年,甲氧西林開始用于治療耐青霉素S.aureus引起的感染;1961年開始,英國首先發現耐甲氧西林金黃色葡萄球菌(methicillin-resistantS.aureus, MRSA);迅速地,其他歐洲國家、日本、澳大利亞和美國也陸續發現MRSA[30]。由于新型抗生素研制的緩慢,使得“超級細菌” MRSA的治療越來越難。為了解決這個問題,澳大利亞和美國的研究人員以MscL為靶標設計了一類新型抗生素10(1,3,5-tris[(1E)-2′-(4″-benzoic acid)vinyl] benzene )[31]。研究顯示,抗生素10是一種有效的抗生素,可治愈感染MRSA的秀麗隱桿線蟲。目前,許多MRSA引起的感染使用糖肽類抗生素治療,如萬古霉素[32-33]。按照FDA的標準,治療MRSA感染,萬古霉素的治療濃度范圍為20~40 μg/mL。然而,僅約1.5 μg/mL的抗生素10,即可有效治療MRSA感染。

研究顯示,抗生素10對革蘭氏陽性菌具有很強的藥效,但對革蘭氏陰性菌的作用較小[34];抗生素10對陰性菌的藥效較弱,可能是由于革蘭氏陰性菌含有脂多糖外膜保護細菌。盡管抗生素10對MRSA感染的治療十分有效,但是它在治療濃度下在人和哺乳動物細胞系中均沒有顯示細胞毒性[35-36]。因此,以MscL為靶標的抗生素10是一種極具潛力的抗菌試劑。這也表明將MscL作為靶標來研發新藥以治療耐藥菌感染是一個很好的研究方向。

3 MscL的潛在用途

MscL能夠在體外表達,并且當MscL純化重組于脂質雙分子層后仍具有機械敏感性;MscL的激活不需要其他蛋白等輔助成分,完全依賴于脂質雙分子層,脂質雙分子層的厚度、膜的剛度與脂質單分子層的自發曲率都會影響MscL的機械敏感性[22, 37]。此外,MscL具有極大的開放孔徑和廣泛的物質通透性。MscL的這些特征,促使它在藥物的攝入與釋放應用研究中十分具有吸引力。

3.1 MscL可介導藥物進入細胞

目前,不能透過細胞膜的生物大分子主要依靠細胞穿透肽(cell-penetrating peptides, CPPs)介導進入細胞,CPPs已經成為大分子跨越細胞膜的有效工具,但是生物分子必須與CPPs有關聯才可以透過細胞膜進入細胞[38]。因此,對于沒有關聯CPPs但又需要進入細胞發揮其作用的生物活性分子,必須尋找其他途徑。

例如,生物活性分子——鬼筆環肽,它不易透過細胞膜,但是它是微絲的特異性標志物,因此在微絲的相關研究中需采取特殊的理化處理,鬼筆環肽才可透過細胞膜進入細胞,這給研究工作帶來不便[39]。MscL雖然只存在于細菌,但是MscL可以人工重構于哺乳動物細胞,并且其仍然具有完好的生理功能[40]。因此,有研究人員將MscL在體外表達,并將其重構于哺乳細胞,發現一些重要的生物活性分子如鬼筆環肽、聚賴氨酸肽、乳鐵蛋白衍生肽等不能透過細胞膜的大分子通過MscL進入哺乳動物細胞[41-42]。

因此,MscL可介導不能透過細胞膜的生物活性分子轉運進入哺乳動物細胞,表明MscL可作為轉運工具將多肽或者藥物分子轉入細胞,這為藥物的攝取提供了新的研究方向。

3.2 MscL可調控藥物釋放

大腸桿菌MscL作為大電導的機械敏感離子通道,是目前研究最為清楚的通道蛋白之一。MscL通道的開放需要克服極大的能量障礙,因此,在正常的情況下MscL通道是關閉的;但是,當細胞膜上的壓力達到閾值時,MscL通道的構象將發生變化,由閉合轉為開放[43]。

通常情況下,MscL的開放是來源于膜上的壓力刺激。然而,引進極性或者帶電氨基酸,以及其他帶電化合物到E.coliMscL的第22位氨基酸或者第26位氨基酸的位置同樣會引起MscL的自發開放[44-45]。研究顯示,MscL的兩個氨基酸位點G22或者G26突變為半胱氨酸,然后用人工合成的光敏感化合物修飾G22C或者G26C,用波長為366 nm的紫外光照射MscL通道,光敏感化合物將會發生電荷分離,引起與化合物連接的MscL通道打開;然后再用可見光照射MscL通道,通道則回到關閉狀態[46-47]。在光照條件下,修飾后的MscL的開放或者關閉是可調控的。

因此,MscL作為一個在光照下可自由開放與關閉的納米閥門,為今后研究調控藥物的釋放提供了一個新的研究方向。

4 總結與展望

數據顯示,細菌耐藥性問題已經成為一個全球問題,革蘭氏陽性菌,特別是金黃色葡萄球菌、屎腸球菌、糞腸球菌和肺炎鏈球菌的耐藥性問題對人類健康構成嚴重威脅[48]。盡管耐藥菌日漸增多,但是新藥的研發進程卻十分緩慢[49],因此,人類急需尋找能有效抑菌的藥物或者治療方案。大量的實驗數據表明,MscL通道具有在細菌中普遍分布和在不同細菌中有很強的序列保守性等多方面的特點,使得MscL靶標在治療細菌感染有很好的前景[47-50]。近年來,關于MscL的研究逐漸增多,研究人員開始注意MscL在治療耐藥菌方面的應用,研究主要集中于E.coliMscL,但是并沒有E.coliMscL的晶體結構。這需要盡快獲得E.coliMscL的晶體,將理論知識與晶體結構相對應,考慮設計藥效更強的藥物分子。目前,其他細菌中的MscL的研究仍然較少,因此,也需要加大在其他種類細菌中的MscL研究,積累更多的理論依據,確定不同細菌中的MscL與抗生素作用的機制,在理論指導下篩選或者設計有效的藥物分子。

[1]WILLIAMS D N.Antimicrobial resistance: are we at the dawn of the post-antibiotic era?[J].The Journal of the Royal College of Physicians of Edinburgh, 2016, 46(3):150-156.

[2]NII-TREBI N I.Emerging and Neglected Infectious Diseases: Insights, Advances, and Challenges[J].Biomed Res Int, 2017:5245021.

[3]ZHANG Y.Antibiotics: From modern medicine to global risk[J].Berkeley Scientific Journal, 2017, 21(1):28-30.

[4]DI GENNARO F, PIZZOL D, CEBOLA B, et al.Social determinants of therapy failure and multi drug resistance among people with tuberculosis: a review.[J].Tuberculosis, 2017, 103:44-51.

[5]VENTOLA C L.The antibiotic resistance crisis: Part 1: causes and threats[J].P & T: A peer-reviewed Journal for Formulary Management, 2015,40(4):277-283.

[6]VENTOLA C L.The antibiotic resistance crisis: Part 2: Management strategies and new agents[J].P&T: A Pear-reviewed Tournal for Formulary Managoment, 2015,40(5):344-352.

[7]BUTLER M S, BLASKOVICH M A, COOPER M A.Antibiotics in the clinical pipeline at the end of 2015[J].Journal of Antibiotics, 2016, 70(1):3-24.

[8]BARH D, JAIN N, TIWARI S, et al.A novel comparative genomics analysis for common drug and vaccine targets inCorynebacteriumpseudotuberculosisand other CMN group of human pathogens[J].Chemical Biology & Drug Design, 2011,78(1):73-84.

[9]RASMUSSEN T.How do mechanosensitive channels sense membrane tension?[J].Biochemical Society Transactions, 2016,44(4):1019-1025.

[10]RANADE S S, SYEDA R, PATAPOUTIAN A.Mechanically activated ion channels[J].Neuron, 2015,87(6):1162-1179.

[11]GUHARAY F, SACHS F.Stretch-activated single ion channel currents in tissue-cultured embryonic chick skeletal muscle[J].J Physiol, 1984, 352:685-701.

[12]KUNG C, MARTINAC B, SUKHAREV S.Mechanosensitive channels in microbes[J].Annual Review of Microbiology, 2010,64(1):313-329.

[13]ALPER S L.Genetic diseases of PIEZO1 and PIEZO2 dysfunction[J].Current Topics in Membranes, 2017, 79:97-134.

[14]CORRY B, MARTINAC B.Computational studies of the bacterial mechanosensitive channels[M].Mechanosensitive Ion Channels, Springer Netherlands, 2008.

[15]BLOUNT P, SUKHAREV S I, MOE P C, et al.Membrane topology and multimeric structure of a mechanosensitive channel protein ofEscherichiacoli[J].EMBO J, 1996,15(18):4798-4805.

[16]BOOTH I R, BLOUNT P.The MscS and MscL families of mechanosensitive channels act as microbial emergency release valves[J].Journal of Bacteriology, 2012,194(18):4802-4809.

[17]BALLEZA D, G MEZLAGUNAS F.Conserved motifs in mechanosensitive channels MscL and MscS[J].Biophysics of Structure & Mechanism, 2009,38(7):1013-1027.

[18]LEE C P, MAKSAEV G, JENSEN G S, et al.MSL1 is a mechanosensitive ion channel that dissipates mitochondrial membrane potential and maintains redox homeostasis in mitochondria during abiotic stress[J].Plant Journal for Cell & Molecular Biology, 2016, 88(5):809-825.

[19]OU X, BLOUNT P, HOFFMAN R J, et al.One face of a transmembrane helix is crucial in mechanosensitive channel gating[J].Proc Natl Acad Sci U S A, 1998, 95(19):11471-11475.

[20]MOE P C, LEVIN G, BLOUNT P.Correlating a protein structure with function of a bacterial mechanosensitive channel[J].J Biol Chem, 2000,275(40):31121-31127.

[21]CORRY B, MARTINAC B.Bacterial mechanosensitive channels: experiment and theory[J].Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Biomembranes, 2008,1778(9):1859-1870.

[22]FOO A, BATTLE A R, MARSH B J, et al.Measuring the release of fluorescein from mscL-loaded liposomes with stressed lipid bilayers[J].Biophysical Journal, 2010,98(3):328a.

[23]WILSON D N.Antibiotics and the inhibition of ribosome function[M].Protein Synthesis and Ribosome Structure: Translating the Genome, Wiley-VCH Verlag GmbH & Co.KGaA, 2006.

[24]BAZETT M, BERGERON M E, HASTON C K.Streptomycin treatment alters the intestinal microbiome, pulmonary T cell profile and airway hyperresponsiveness in a cystic fibrosis mouse model[J].Scientific Reports, 2016, 6:19189.

[25]TANYWE A, FERNANDEZ R S.Effectiveness of rifampicin-streptomycin for treatment of Buruli ulcer: a systematic review[J].Jbi Database of Systematic Reviews & Implementation Reports, 2017,15(1):119-139.

[26]ISCLA I, WRAY R, WEI S, et al.Streptomycin potency is dependent on MscL channel expression[J].Nature Commun, 2014, 5:4891.

[27]ROBIN W, IRENE I, GAO Y, et al.Dihydrostreptomycin directly binds to, modulates, and passes through the MscL channel pore[J].Plos Biology, 2016,14(6):e1002473.

[28]CRUICKSHANK C C, MINCHIN R F, LE DAIN A C, et al.Estimation of the pore size of the large-conductance mechanosensitive ion channel ofEscherichiacoli[J].Biophys J, 1997, 73(4):1925-1931.

[29]KRAUS D, PESCHEL A.Staphylococcusaureusevasion of innate antimicrobial defense[J].Future Microbiology, 2008,3(4):437-451.

[30]ENRIGHT M C, ROBINSON D A, RANDLE G, et al.The evolutionary history of methicillin-resistantStaphylococcusaureus(MRSA)[J].Proc Natl Acad Sci U S A, 2002, 99(11):7687-7692.

[31]Iscla I, Wray R, Blount P, et al.A new antibiotic with potent activity targets MscL[J].The Journal of Antibiotics, 2015, 68(7):453-462.

[32]ROSSI F, DIAZ L, WOLLAM A, et al.Transferable vancomycin resistance in a community-associated MRSA lineage[J].New England Journal of Medicine, 2014, 370(16):1524-1531.

[33]GRABS A J, LORD R S.Treatment failure due to methicillin-resistantStaphylococcusaureus(MRSA) with reduced susceptibility to vancomycin[J].Medical Journal of Australia, 2002,176(11):563.

[34]DINANT A, BOULOS R A.Zolav : a new antibiotic for the treatment of acne[J].Drug Design Development & Therapy, 2016,10:1235-1242.

[35]LI J, GUO J, OU X, et al.Mechanical coupling of the multiple structural elements of the large-conductance mechanosensitive channel during expansion[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2015,112(34):10726-10731.

[36]RAO S, PRESTIDGE C A, MIESEL L, et al.Preclinical development of Ramizol, an antibiotic belonging to a new class, for the treatment ofClostridiumdifficilecolitis[J].Journal of Antibiotics, 2016, 69(12):879-884.

[37]RUI H, KUMAR R, IM W, et al.Membrane tension, lipid adaptation, conformational changes, and energetics in MscL gating[J].Biophysical Journal, 2011,101(3):671-679.

[38]EUDES F, CHUGH A.Cell-penetrating peptides[J].Plant Signaling & Behavior, 2008,3(8):549-550.

[39]KASHIWAZAKI J, YAMASAKI Y, ITADANI A, et al.Endocytosis is essential for dynamic translocation of a syntaxin 1 orthologue during fission yeast meiosis[J].Molecular Biology of the Cell, 2011,22(19):3658-3670.

[40]HEUREAUX J, CHEN D, MURRAY V L, et al.Activation of a bacterial mechanosensitive channel in mammalian cells by cytoskeletal stress[J].Cellular and Molecular Bioengineering, 2014,7(3):307-319.

[41]DOERNER J F, FEBVAY S, CLAPHAM A D E.Controlled delivery of bioactive molecules into live cells using the bacterial mechanosensitive channel MscL[J].Nature Communications, 2012,3:990.

[42]YANG N J, HINNER M J.Getting across the cell membrane: an overview for small molecules, peptides, and proteins[M].Methods in Molecular Biology, 2015,1266:29.

[43]MELO M N, ARNAREZ C, SIKKEMA H, et al.High-throughput simulations reveal membrane-mediated effects of alcohols on MscL gating[J].Journal of the American Chemical Society, 2017, 139(7):2664-2671.

[44]SUKHAREV S, BETANZOS M, CHIANG C S, et al.The gating mechanism of the large mechanosensitive channel MscL[J].Nature, 2001,409(6821):720-724.

[45]PEROZO E, KLODA A, CORTES D M, et al.Site-directed spin-labeling analysis of reconstituted Mscl in the closed state[J].Journal of General Physiology, 2001,118(2):193-206.

[46]YILMAZ D, DIMITROVA A I, WALKO M, et al.Study of light-induced MscL gating by EPR spectroscopy[J].European Biophysics Journal, 2015,44(7):557-565.

[47]GH M S, COX C D, WILHELM M J, et al.In vivo nonlinear light scattering probe of drug-induced activation of bacterial mechanosensitive channels[C].Louisiana:Biophysical Society Meeting, 2017.

[48]LOZANO C, TORRES C.Update on antibiotic resistance in Gram-positive bacteria.[J].Enfermedades Infecciosasy Microbiologia Clinica, 2017, 35(suppl):2-8.

[49]LIN S Z.Precision Therapy: Cell therapy and development of new drugs[J].Cell Transplantation, 2017, 26(3):379-380.

[50]BARH D, JAIN N, TIWARI S, et al.A novel comparative genomics analysis for common drug and vaccine targets inCorynebacteriumpseudotuberculosisand other CMN group of human pathogens[J].Chemical Biology & Drug Design, 2011,78(1):73-84.

猜你喜歡
鏈霉素靶標細胞膜
“百靈”一號超音速大機動靶標
外周血紅細胞膜脂肪酸C20:1n9水平與冠狀動脈病變嚴重程度的關系研究
液相色譜-串聯質譜法測定葡萄中鏈霉素和雙氫鏈霉素
納米除草劑和靶標生物的相互作用
親水作用色譜-串聯質譜法測定蜂蜜中鏈霉素和雙氫鏈霉素殘留
復雜場景中航天器靶標的快速識別
農用硫酸鏈霉素正式退出舞臺
前列腺特異性膜抗原為靶標的放射免疫治療進展
生化法處理后的鏈霉素廢水出水對斑馬魚SOD活性和MDA含量的影響
皮膚磨削術聯合表皮細胞膜片治療穩定期白癜風療效觀察
91香蕉高清国产线观看免费-97夜夜澡人人爽人人喊a-99久久久无码国产精品9-国产亚洲日韩欧美综合