高活菌數干酪乳桿菌LZ183E凍干保護劑的制備

周佳豪，雷文平，劉成國,周輝,周杏榮,葉望娟

(湖南農業大學 食品科學技術學院，湖南 長沙，410128)

隨著對乳酸菌(lactic acid bacteria, LAB)益生功能研究的深入，其受到了食品和醫藥領域的廣泛關注；為了讓益生菌便于保存、運輸及使用，對菌株的保護并制備成相應菌劑也成為領域的研究重點[1]。菌株菌液的干燥工藝是制備益生菌菌劑的關鍵步驟之一，目前，主要的干燥方式包括真空干燥、真空冷凍干燥和噴霧干燥等，大量研究表明，真空冷凍干燥是目前在保護LAB活力最為有效且應用最廣泛的干燥方式，其是快速將菌液溫度降低至冰點以下，變成固態，在高真空度和低溫狀態下固態菌液升華除水的一種干燥方式[2-3]。謝桂勉[4]比較了離心噴霧干燥和冷凍干燥對酸奶中LAB活性的影響，結果表明LAB的存活率分別為17.1%和53.5%，冷凍干燥對LAB的活力影響較小。并且WANG等[5]研究發現，與真空和熱風干燥相比，真空冷凍干燥能夠顯著維持LAB發酵產物的抗氧化活性。

真空冷凍過程中LAB細胞內容物易發生變性導致菌株死亡，這就需要加入適宜的保護劑降低菌株在此過程中的死亡[6]。目前，常用的保護劑包括糖類(海藻糖、低聚木糖等)、蛋白質(脫脂乳粉、乳清蛋白等)以及其他聚合物(谷氨酸鈉、抗壞血酸)[7]。不同類型的保護劑的作用機制存在較大，如低聚糖可以進入LAB細胞壁并被截留在細胞膜外而起保護作用；蛋白質可以在菌體表面形成蛋白膜，使得菌株免受外界環境的破壞而發揮保護作用；抗氧化劑能夠降低菌株表面的氧化還原電位，減小益生菌的氧化損傷[8]。因此，復配使用不同類型保護劑可有效減小LAB在冷凍過程中的死亡。

本研究在高密度培養的基礎上，通過單因素試驗考察不同類型凍干保護劑(海藻糖、脫脂乳、低聚木糖和谷氨酸鈉)用量對LactobacilluscaseiLZ183E在冷凍過程中存活率的影響；進一步通過響應面法，對保護劑進行復配研究，協調不同保護劑的性能而獲得較高活菌數的干酪乳桿菌菌劑。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

L.caseiLZ183E，湖南農業大學食品科學技術學院功能乳制品實驗室；MRS肉湯、瓊脂，廣東環凱微生物科技有限公司；海藻糖、低聚木糖、谷氨酸鈉，上海瑞永生物科技有限公司；脫脂乳粉，皇氏集團湖南優氏乳業有限公司。

1.2 儀器與設備

FA2104型電子天平，上海舜宇恒平科學儀器有限公司；GZ-400-S型恒溫培養箱，韶關市廣智科技設備有限公司；SW-CJ-2D型雙人單面垂直凈化工作臺，蘇州凈化有限公司；BKQ-B50II型全自動高壓蒸汽滅菌鍋，山東博科科學儀器有限公司；TG16-WS型臺式高速離心機，湖南湘儀實驗室儀器開發有限公司；LGJ-18C型臺式高速離心機，北京四環科學儀器廠有限公司；MDF-86V408型醫用-80 ℃低溫保存箱，安徽中科都菱商用電器股份有限公司；Bante920型pH計，上海般特儀器制造有限公司。

1.3 試驗設計

1.3.1 菌劑的制備

(1)菌株活化：將保存的LZ183E菌液在MRS液體培養基中37 ℃過夜活化3代。

(2)高密度培養：把活化后處于對數生長期的LZ183E以2%(體積分數)的接種量接種于優化后的MRS培養基中，37 ℃高密度培養30 h，獲得菌液備用。

(3)菌泥的制備：在無菌的條件下，取2 mL菌液于10 mL無菌離心管中，8 000 r/min、4 ℃離心3 min，然后用滅菌生理鹽水進行2次清洗，得到菌泥，備用[9]。

(4)凍干：向含菌泥的10 mL離心管中加入2 mL已配制的凍干保護液，于-80 ℃冰箱中凍存6 h，然后迅速放入真空冷凍干燥機中干燥24 h以上，直至菌液凍干呈顯棉絮狀，得到凍干菌劑，此過程保持無菌[10]。

1.3.2 單一組分的凍干保護劑用量的確定

通過單因素試驗考察海藻糖、脫脂乳粉、低聚木糖和谷氨酸鈉等保護劑的用量對LZ183E在冷凍過程中存活率的影響，其實驗設計如下[11-13]：

按照1.3.1的方法制備凍干菌劑，其中控制真空冷凍干燥機條件不變，以菌株存活率和菌劑產酸能力為指標，探究不同質量分數的海藻糖(2%、4%、6%、8%、10%)、低聚木糖(2%、4%、6%、8%和10%)、脫脂乳粉(2%、6%、10%、14%和18%)、谷氨酸鈉(0.5%、1.0%、1.5%、2.0%和2.5%)對菌株LZ183E在凍干以后活力的影響，確定其適宜的濃度范圍，并以未加保護劑為空白對照組(CK組)。

1.3.3 復配保護劑的響應面法優化

在單因素試驗的基礎上，以菌株存活率為指標，選取對菌株活性影響顯著的3個因素進行3因素3水平的響應面試驗進行復配優化，確定保護劑的最佳配比。

1.4 測定方法

1.4.1 活菌數測定及存活率的計算

活菌數參照GB 4789.35—2016進行測定。將凍干菌粉按原比例復溶進行試驗，凍干前后菌株存活率按公式(1)計算：

(1)

1.4.2 pH值的測定

將凍干后的菌劑以3%的接種量加入滅菌后的脫脂牛奶中，37 ℃發酵12 h后使用pH計直接測定發酵乳的pH值。

1.5 數據分析

利用Excel 2010軟件進行數據整理及統計分析，以SPSS Statistics 21進行方差分析(ANOVA)、LSD多重比較以及進行正交試驗方差分析，顯著水平P<0.05；采用Design-Expert V 10 軟件進行響應面分析；使用Origin 2018軟件繪圖。

2 結果與分析

2.1 海藻糖用量對菌劑活力的影響

海藻糖能夠避免低溫和失水等極端環境對益生菌造成損傷，其使得液晶-凝膠態相變溫度降低，保持菌體細胞膜處于液晶狀態，減緩相變引起的細胞膜磷脂膜結構和功能損傷[14]。由圖1可知，雖然海藻糖用量在2%～10%(質量分數)時對LZ183E在凍干過程的保護作用無顯著差異(P>0.05)，菌株存活率處于波動狀態，但是凍干后菌株LZ183E仍然維持較高活力，其存活率在(93.479±1.667)%～(97.326±0.25)%，顯著高于CK組(P<0.05)。當海藻糖用量在6%(質量分數)時，對菌株的保護效果最好，并且此時菌劑的產酸能力也對應較強，發酵12 h后發酵乳的pH相對較低，為4.572±0.002；SKIBINSKY等[15]研究發現使用不同量的海藻糖，單層和雙層的模擬磷酸分子膜面積均發生擴張，但僅是有或無海藻糖兩種情況的數據差異，不存在海藻糖用量依賴性，這也就證明不同用量的海藻糖對菌株存活率影響較小的現象?？傮w而言，海藻糖是一種較佳的保護劑，并且在6%(質量分數)的用量時對菌株的保護作用較好。

圖1 海藻糖用量對菌劑活力的影響Fig.1 Effect of the trehalose on the viability of LAB agents注:不同小寫字母代表差異顯著(P<0.05)(下同)

2.2 低聚木糖用量對菌劑活力的影響

低聚木糖是應用較為廣泛的功能性低聚糖，其可作為益菌因子在菌劑制備中發揮雙重作用，不僅能有效保護益生菌在冷凍過程中的活力，還能促進益生菌的生長代謝[16]。由圖2可知，隨著低聚木糖用量的增加，LZ183E在凍干后的存活率表現出先上升后下降的趨勢，在10%(質量分數)的添加量時具有最高存活率(96.081±0.395)%，明顯高于CK組；尤其當用量從2%升至6%(質量分數)時，菌株存活率顯著升高(P<0.05)，而此后隨著用量進一步增大，其存活率的增加或降低并不顯著(P>0.05)，表明低聚木糖在低濃度時其保護效果具有濃度差異性，而當過高時已經飽和對菌株的保護效果不明顯。此外，菌劑在產酸能力上，隨著低聚木糖用量的升高也表現出較強的產酸能力，發酵12 h后發酵乳pH可降低至4.5以下，這進一步表明低聚木糖可作為益生因子而促進LAB的生長代謝。綜合可得，當低聚木糖添加量為10%(質量分數)時有較好保護作用。

圖2 低聚木糖用量對菌劑活力的影響Fig.2 Effect of the xylooligosaccharides on the viability of LAB agents

2.3 脫脂乳粉用量對菌劑活力的影響

脫脂乳粉是一種復合保護劑，包含豐富的蛋白質(乳清蛋白和酪蛋白)、糖類等物質，不僅是益生菌優良的天然培養基，且對在保護益生菌方面具有重要意義[17]。由圖3可知，脫脂乳粉的保護作用也存在用量依賴性，隨脫脂乳粉用量的增加，LZ183E的存活率緩慢上升，在10%～14%(質量分數)趨于穩定，此時菌株存活率高于97%，而當高于14%的用量時存活率急劇下降(P<0.05)，但仍然高于CK組；并且菌劑的產酸能力也表現出對應關系，菌株存活率越高，產酸能力越強。這可能是由于脫脂乳粉是一種復合型保護劑，物質組成較為復雜，凍干后其無定型的多孔結構和蛋白保護膜，有效增強了菌株存活能力和菌劑的復水能力；然而脫脂乳粉用量過高，體系滲透壓升高，使得菌株細胞結構被破壞，細胞內容物外泄和蛋白質變性等，存活率顯著降低[18]。由此，選用10%(質量分數)的脫脂乳粉為最佳。

圖3 脫脂乳粉用量對菌劑活力的影響Fig.3 Effect of the skimmed milk powder on the viability of LAB agents

2.4 谷氨酸鈉用量對菌劑活力的影響

谷氨酸鈉屬于氨基酸類物質，分子質量小，可以透過益生菌細胞膜進入細胞內，抑制并減緩冰晶的生成和生長，從而避免冷凍給菌株造成的損傷[19]。由圖4可知，谷氨酸鈉用量在0.5%～1.5%(質量分數)時菌株保持著高于95%的存活率，當用量大于1.5%(質量分數)時干菌株存活率顯著下降(P<0.05)，并且用量在2.5%(質量分數)時存活率最低，為(85.758±0.949)%，已經接近CK組，對菌株的保護作用表現出明顯不足。此時產酸能力也相對較弱，但對整體產酸能力影響不大。這可能是由于谷氨酸鈉能夠透過細胞膜進入干酪乳桿菌細胞內，當谷氨酸鈉質量分數過高，進入胞內的谷氨酸鈉含量也偏高，導致胞內部分活性物質失活，而當菌株在低溫和失水狀態時難以較好地維持其生命活力，其存活率顯著降低。因此，選擇1.5%(質量分數)的谷氨酸鈉用量最為適宜。

圖4 谷氨酸鈉用量對菌劑活力的影響Fig.4 Effect of the sodium glutamate on the viability of LAB agents

2.5 復配保護劑的響應面分析法優化結果

通過分析單因素試驗結果，控制海藻糖用量為6%，以L.caseiLZ183E存活率為指標，進一步對低聚木糖、脫脂乳粉以及谷氨酸鈉復配用量進行優化；其Box-Behnken 設計表及結果分別見表1和表2[20-21]。

表1 保護劑復配優化Box-Behnken試驗因素與水平Table 1 Factors and levels of Box-Behnken tests for compounding of protective agents

表2 Box-Behnken試驗結果與分析Table 2 Results and analysis of Box-Behnken tests

軟件Design Expert V 10對試驗結果擬合的回歸方程為Y=98.226 8+0.551 25X1-0.320 125X2-0.350 875X3-1.063X1X2-0.134 5X1X3-0.057 75X2X3-1.346 275X12-1.087 025X22-0.207 525X32。其方差分析結果如表3所示。

表3 響應面結果方差分析Table 3 Variance analysis of response surface methodology results

由表3可知，本實驗建立的模型極顯著(P<0.01)；失擬項不顯著(P>0.05)，因此模型可靠性較高；并且R2=0.912 5，說明脫脂乳粉、低聚木糖和谷氨酸鈉對LZ183E存活率的影響顯著；信噪比(signal-to-noise，S/N)=8.728 4>4，也從另一角度說明所建立的模型是可靠的。經方差分析，3個因素對凝固型發酵牛乳影響的主次順序為X1>X3>X2，即脫脂乳粉用量>谷氨酸鈉用量>低聚木糖用量。

研究表明,響應面的等高線越偏向橢圓，因素間交互作用越強；并且其呈現在閉合的橢圓或圓形，表明在試驗范圍內有最值[22-23]。試驗所得響應面曲線及等高線如圖5所示。當谷氨酸鈉用量保持不變時，隨著脫脂乳粉和低聚木糖用量的升高，菌株存活率均表現為先升后降，脫脂乳粉用量在8.5%～13.5%(質量分數)和低聚木糖量在6%～10.5%(質量分數)較為適宜；等高線呈現閉合橢圓且響應面為凸形，表明脫脂乳粉用量和低聚木糖用量交互作用顯著，并且此區間內有最大值。當低聚木糖用量不變時，隨著脫脂乳粉和谷氨酸鈉用量的增大，菌株存活率也表現出先增后降的趨勢，脫脂乳粉用量在8.7%～13.2%(質量分數)和谷氨酸鈉用量在0.3%～1.75%(質量分數)較佳；此范圍內等高線為閉合橢圓且響應面為凸形，說明脫脂乳粉用量和谷氨酸鈉用量交互作用有最大值。當脫脂乳粉用量不變時，隨低聚木糖和谷氨酸鈉用量的增加，菌株存活率同樣表現為先增后降的趨勢，低聚木糖用量在7.1%～11.9%(質量分數)，谷氨酸鈉用量在0.4%～18%(質量分數)較佳；此時等高線的形狀為閉合橢圓且響應面為凸形，說明在此區間內低聚木糖和谷氨酸鈉交互作用強，并具有最大值。此外，上述分析和表3中的顯著性一致。

a-X1、X2交互作用；b-X1、X3交互作用；c-X2、X3交互作用圖5 各因素交互作用的響應面和等高線Fig.5 Response surface and contour of the interaction of various factors

3 結論

利用Design Expert 8.0.5軟件將結果帶入模型進行統計分析，確定保護劑的最佳復配參數為低聚木糖用量8.785 55%、脫脂乳粉用量11.484 2%和谷氨酸鈉用量1.038 34%(均為質量分數)，此時菌株存活率預測值為98.539 7%。為了提高實際操作效率，并結合單因素實驗結果，最終將配方修訂為海藻糖用量6.0%、低聚木糖用量8.5%、脫脂乳粉用量11.5%和谷氨酸鈉用量1.0%(均為質量分數)。在此最優配比下進行驗證試驗，菌株的存活率為(98.236±0.137)%，接近模型的預測值，表明了此模型的可靠性，獲得了較高活菌數下高存活率的L.caseiLZ183E菌劑。