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天門冬多糖對環磷酰胺誘導的免疫抑制小鼠的免疫調節作用

2013-10-25 10:23佟春玉孫越春秦學功葛文忠崔玉東
天然產物研究與開發 2013年8期
關鍵詞:天門冬胸腺免疫抑制

佟春玉,孫越春,秦學功,葛文忠,崔玉東

黑龍江八一農墾大學生命科學技術學院,大慶 163319

天門冬,百合科植物。又名天冬。性寒,味甘,微苦。作為一種傳統的中藥,具有養陰清熱,潤肺滋腎的功效。用于治陰虛發熱、咳嗽吐血、肺癰、咽喉腫痛、消渴、便秘等病癥[1]。多糖作為一種免疫調節和促進劑,對巨噬細胞、T淋巴細胞、B淋巴細胞、自然殺傷細胞(NK)和淋巴因子激活的殺傷細胞(LAK)的功能都有調節作用。天門冬多糖(Asparagus cochinchinensis polysaccharide,ASP)是從中藥天門冬中提取的生物活性成分,據報道具有清除自由基及抗脂質過氧化活性。近年來,研究人員發現ASP可以刺激豬和小鼠的體外T、B淋巴細胞增殖,但其在體內的實驗卻未見報道[2,3]。因此,本研究采用環磷酰胺誘導的免疫抑制小鼠模型,研究ASP對免疫抑制小鼠的保護作用,為未來ASP的臨床應用提供一定的實驗依據。

1 材料與方法

1.1 實驗動物

健康Balb/c小鼠,SPF級,雄性,6~8周齡,體重(20±2)g,購于吉林大學基礎醫學院實驗動物中心,合格證號:SCXK(吉2003-0001)。

1.2 實驗試劑

ASP購自西安斯諾特生物技術有限公司,刀豆蛋白A(Con A IV型)、脂多糖(LPS)、環磷酰胺(CTX)均為Sigma產品;細胞因子試劑盒購于美國Biolegend公司,RPMI-1640完全培養基(含100 IU/mL青霉素、100 g/L鏈霉素、1%谷氨酰胺和10%滅活新生胎牛血清,pH 7.2)為Gibco產品;胎牛血清、DMSO、生理鹽水均是國產產品。

1.3 方法

1.3.1 動物分組及給藥

小鼠50只,雌雄各半,隨機分成5組,對照組(生理鹽水),模型組,天門冬多糖高、中、低劑量組,連續給藥7 d,給藥第3 d,除對照組外,其他各組小鼠均腹腔注射CTX 50 mg/kg,連續3 d,建立免疫抑制小鼠模型。

1.3.2 臟器指數測定

7d后,稱重,頸椎脫臼處死小鼠,分離胸腺和脾臟稱濕重,以小鼠胸腺或脾臟重/體重(mg/g)作為胸腺指數或脾臟指數。

1.3.3 免疫抑制小鼠脾淋巴細胞增殖反應測定

無菌條件下制備Balb/c小鼠脾細胞懸液加入到96孔板中,每孔100 μL,調整脾細胞濃度為5×106個細胞/mL,此后,加入 Con A(終濃度 5 μg/mL)或 LPS(終濃度 20 μg/mL)100 μL,使終體積為200 μL并各設三個復孔。96孔板置于37℃,5%CO2細胞培養箱中培養44 h后,每孔加入20 μL的MTT(5 mg/mL)再繼續培養4 h。4 h后移除培養液,每孔加入150 μL DMSO震搖10 min,在570 nm測量吸光值。

1.3.4 免疫抑制小鼠血清細胞因子含量的檢測

小鼠第7 d給藥后摘除眼球取血并分離血清,采用雙抗體夾心ELISA法測定血清IL-2和IL-4含量,參考試劑盒使用說明書步驟操作,于450 nm波長處檢測吸光度,根據濃度標準曲線計算IL-2和IL-4含量。

1.3.5 統計分析

所有數據均用SPSS 13.0統計軟件包進行處理,數據以均數±標準差(Mean±SD)表示,資料進行正態性檢驗;多組計量資料采用one-way ANOVA,方差齊時采用LSD法,方差不齊時采用Dunnett's T3法。P<0.05有統計學意義。

2 實驗結果

2.1 ASP對免疫抑制小鼠胸腺指數和脾臟指數的影響

ASP對脾臟指數的影響如表1所示,與空白組相比,CTX組的胸腺指數和脾臟指數顯著降低,而ASP各劑量組的胸腺指數脾臟指數明顯升高(P<0.01),說明ASP在一定的劑量范圍內可以緩解CTX對小鼠的免疫抑制作用。

表1 ASP對CTX引起的免疫低下小鼠胸腺指數和脾臟指數的影響(±s)Table 1 Effects of ASP on thymus and spleen index in immunosuppressed mice(±s)

表1 ASP對CTX引起的免疫低下小鼠胸腺指數和脾臟指數的影響(±s)Table 1 Effects of ASP on thymus and spleen index in immunosuppressed mice(±s)

注:與對照組相比,##P<0.01;與CTX組相比,**P<0.01。Note:##P<0.01vs.Control group;**P<0.01 vs.CTX group.

組別Group濃度Concentration(mg/kg)胸腺指數Thymus index(mg/g)脾臟指數Spleen index(mg/g)空白組Control Group - 2.57±0.09 5.19±0.06 CTX組CTX Group CTX(50) 1.35±0.07## 3.08±0.19##實驗組 Experimental Group 10+CTX(50) 1.73±0.11** 4.20±0.18**20+CTX(50) 2.16±0.09** 4.53±0.10**40+CTX(50) 2.53±0.08** 4.84±0.12**

2.2 ASP對免疫抑制小鼠脾淋巴細胞增殖的影響

圖1 ASP對脾淋巴細胞體內增殖的影響Fig.1 Effect of ASP on splenocyte proliferation in vivo

ASP對小鼠脾淋巴細胞增殖的影響如圖1所示。ConA或LPS刺激脾淋巴細胞會引起細胞增殖,而50 mg/kg的CTX能有效地抑制ConA或LPS刺激脾淋巴細胞增殖反應(P<0.01)。與此相反,ASP加上CTX可以有效地緩解CTX對脾細胞增殖反應的抑制作用,并呈劑量依賴的方式。

2.3 ASP對免疫抑制小鼠血清細胞因子IL-2和IL-4的影響

ASP對免疫抑制小鼠血清中主要細胞因子水平的影響如圖2所示,我們使用ELISA方法檢測小鼠血清中的IL-2和IL-4的細胞因子水平。從圖中可以看出,CTX組血清中的細胞因子IL-2和IL-4比對照組顯著降低(P<0.01);與CTX組相比,當ASP組劑量為20 mg/kg或40 mg/kg時,免疫抑制小鼠血清中的IL-2和IL-4的水平都顯著提高(P<0.01)。

圖2 ASP對免疫抑制小鼠血清中IL-2和IL-4分泌水平的影響Fig.2 Effect of ASP on serum IL-2 and IL-4 of immunosuppressed mice

3 討論

環磷酰胺為氮芥與磷酰胺基結合而成的化合物,是臨床常用的烷化劑類免疫抑制劑??捎糜谥委煾鞣N自身免疫性疾病,即能抑制細胞增殖,非特異性殺傷抗原敏感性小淋巴細胞,限制其轉化為免疫母細胞[4]。本文采用CTX所致免疫低下小鼠模型,研究ASP對免疫抑制小鼠免疫功能的影響,探討ASP的免疫藥理效應,摸索其最佳劑量范圍。

眾所周知,細胞有絲分裂原ConA可以刺激T淋巴細胞增殖,LPS可以刺激B淋巴細胞增殖,T淋巴細胞主要參與機體的細胞免疫反應,B淋巴細胞主要參與體液免疫反應[5-7]。在體內細胞增殖實驗中,采用MTT法測定ASP對LPS和ConA誘導的淋巴細胞增殖的影響。結果顯示ASP可以緩解CTX組對小鼠脾細胞體內增殖反應的抑制作用,因此說明ASP通過細胞免疫和體液免疫兩種方式參與機體免疫反應,并呈現一定的劑量依賴模式。

細胞因子能介導和調節免疫應答,檢測細胞因子分泌水平可以密切反映機體的免疫狀態。IL-2主要由TH1細胞分泌,參與細胞免疫反應;IL-4主要由TH2細胞分泌,參與體液免疫反應[8-10]。本研究中,在CTX誘導小鼠免疫功能抑制的基礎上,給予ASP,可顯著增加小鼠血清中IL-2、IL-4含量。表明ASP對CTX誘導的免疫抑制小鼠的免疫功能具有一定的免疫調節作用,能提高小鼠的免疫防御功能。

綜上可見,ASP可以消除CTX誘導的小鼠免疫抑制作用,對臨床具有一定的應用價值,未來需對ASP免疫增強機制進一步研究,為其臨床應用提供科學依據。

1 Li ZX(李志孝),Huang CG(黃成鋼),Cai YJ(蔡育軍),et al.The chemical structure and antioxidative activity of polysaccharide from Asparagus cochinchinensis.Acta Pharm Sin(藥學學報),2000,35:358-362.

2 Pan GZ(潘貴珍),Hu TJ(胡庭俊),Su ZJ(蘇子杰),et al.Effect of Asparagus cochinchinensis polysaccharide on proliferation of swine splenic lymphocytes in vitro.J Feed Ind(飼料工業),2012,33:35-37.

3 Kang L(康樂),Yao DB(姚東璧),Hu TJ(胡庭俊),et al.The effect of Asparagus cochinchinensis polysaccharide on proliferation of splenic lymphocytes from mice in vitro.Chin J Anim Hus Vet Med(中國畜牧獸醫),2010,37:15-17.

4 Huang XH,Hu YH,Zhao X,et al.Sulfated modi?cation can enhance the adjuvant activity of Astragalus polysaccharide for ND vaccine.Carbohyd Polym,2009,73:303-308.

5 Li R,Chen WC,Wang WP,et al.Extraction,characterization of Astragalus polysaccharides and its immune modulating activities in rats with gastric cancer.Carbohyd Polym,2009,78:738-742.

6 Lu J,Guan S,Shen X,et al.Immunosuppressive activity of 8-gingerol on immune responses in mice.Molecules,2011,16:2636-2645.

7 Contreras OM,Soldevila G,Lopez GP,et al.Role of CRTAM during mouse early T lymphocytes development.Dev Com Immunol,2010,34:196-202.

8 Shao P,Zhao LH,Zhi C,et al.Regulation on maturation and function of dendritic cells by Astragalus mongholicus polysaccharides.Int Immunopharmacol,2006,6:1161-1166.

9 Chu Y,Yan X,Li X,et al.Effect of Chinese herbalmedicinal ingredients on IL-2 mRNA levels of T lymphocytes in mice measured using semiquantification RT-PCR.Agric Sci China,2006,5:873-878.

10 Mitsias DI,Tzioufas AG,Veiopoulou C,et al.The Th1/Th2 cytokine balance changes with the progress of the immunopathological lesion of Sjogren’s syndrome.Clin Exp Immunol,2002,128:562-568.

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