?

從植物乳桿菌全細胞轉化液中分離純化γ-氨基丁酸的工藝研究*

2010-11-02 06:26張術聰劉婷婷楊套偉夏海鋒饒志明
食品與發酵工業 2010年11期
關鍵詞:氨基丁酸脫色活性炭

張術聰,劉婷婷,楊套偉,夏海鋒,饒志明

(江南大學工業生物技術教育部重點實驗室江南大學生物工程學院,江蘇無錫,214122)

從植物乳桿菌全細胞轉化液中分離純化γ-氨基丁酸的工藝研究*

張術聰,劉婷婷,楊套偉,夏海鋒,饒志明

(江南大學工業生物技術教育部重點實驗室江南大學生物工程學院,江蘇無錫,214122)

前期篩選獲得1株高效轉化L-谷氨酸為γ-氨基丁酸(GABA)的植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)GB01-21,該菌以濃度200g/L的L-谷氨酸為底物,發酵20 h左右,能以99%的摩爾轉化率生產γ-氨基丁酸,產物γ-氨基丁酸的終濃度可達140g/L左右。從全細胞轉化液中分離純化γ-氨基丁酸,著重對脫色工藝進行了研究,考察了溫度、時間、pH和活性炭添加量對脫色效果的影響。通過單因素實驗的基礎上的正交實驗分析,確定了脫色最佳工藝條件為粉末活性炭(150~200目)用量為1.5%,脫色溫度70℃,pH值4.0,脫色時間40 min,γ-氨基丁酸轉化液的脫色率高達98.42%,γ-氨基丁酸的保留率可達97.23%。隨后對γ-氨基丁酸轉化液進行初步分離純化,最終測得γ-氨基丁酸的回收率89.4%,純度為96.7%。

γ-氨基丁酸,全細胞轉化,脫色,分離純化

γ-氨基丁酸(γ-aminobutyricacid,GABA)是一種非蛋白質組成的天然氨基酸,廣泛存在于動物、植物和微生物中,具有降低血壓、促進生殖、活化肝腎等多種生理功能,在食品及醫藥方面具有廣泛的應用前景[1]。生物發酵法合成γ-氨基丁酸具有條件溫和,對環境友好等特點,已受到國內外研究學者的廣泛重視[2],但其發酵液是個極其復雜的多相體系,含有微生物細胞、代謝產物以及未耗盡的培養基等,給GABA的下游分離純化帶來一定困難,這也成為目前工業化生產GABA的瓶頸問題。

目前,只有日本實現了生物合成GABA的工業化生產,國內雖有多家研究機構對發酵法制備GABA技術進行研究,但GABA提取效率或純度比較低,而且成本較高[3-5]。由此可見,如何低成本、高效率地對GABA純化提取已成為工業化生產γ-氨基丁酸的關鍵因素。本實驗室前期篩選出1株高產GABA的菌株——植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)GB01-21,利用全細胞轉化法生產GABA,摩爾轉化率可達99%(已申請國家發明專利,申請號為200910183478.1),且轉化液成分較為單一,有效避免了由發酵液成分復雜給下游提取造成的不利影響,但同時也存在轉化液顏色較深等問題。本研究主要對轉化液脫色工藝條件進行了研究,并在脫色的基礎上對γ-氨基丁酸進一步分離提取,從而獲得了高回收率、高純度的γ-氨基丁酸,為工業化生產打下基礎。

1 材料與方法

1.1 菌株

植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)GB01-21,實驗室保存。

1.2 培養基[6-7]

活化培養基(g/L):酪蛋白胨10,牛肉提取物10,酵母提取物5,葡萄糖5,乙酸鈉5,檸檬酸二胺0.2,吐溫-80 0.1,K2HPO40.2,MgSO40.2,MnSO40.05,CaCO320,pH 值6.5,0.08 MPa 滅菌15 min。

種子培養基(g/L):蛋白胨10,酵母膏5,葡萄糖10,丁二酸鈉5,pH 6.5,0.08 MPa 滅菌 15 min。

1.3 主要試劑和儀器

GABA標準品(Sigma公司),丹磺酰氯(Dns-Cl)、活性炭顆粒炭A、顆粒炭 B、粉末炭 C,NaHCO3、L-谷氨酸(L-Glu)、無水乙醇、冰乙酸、乙酸鈉(均為國藥分析純);實驗用水為去離子水。

PHS-3C型精密 pH計,Mettler公司;UltiMate-3000型高效液相色譜儀,戴安公司;UV-2000紫外-可見分光光度計,上海精密科學儀器有限公司;電熱恒溫水浴鍋,江蘇金壇市環宇科學儀器廠;旋轉蒸發儀,上海滬西分析儀器廠有限公司。

1.4 實驗方法

1.4.1 分離工藝流程

GABA分離純化的工藝流程為[8]:

1.4.2 菌體培養

將斜面保藏的菌種接種至活化培養基中,30℃、160 r/min振蕩培養24 h,再以2%的接種量接入種子培養基,30℃、160 r/min振蕩培養24 h。

1.4.3 轉化液的制備

離心收集菌體,用雙蒸水洗滌菌體3次,最后用3 L乙酸-乙酸鈉緩沖液(pH 4.8,0.1mol/L)懸浮菌體,加入200 g L-Glu,30℃下,在5L發酵罐中轉化24 h。

1.4.4 轉化液預處理

收集轉化液,離心取上清,在70~80℃加熱30 min,經單層濾紙過濾后再用0.45 μm濾膜進行抽濾,收集濾液4℃保藏備用。

1.4.5 活性炭預處理[9]

試驗用活性炭經驗,熱去離子水洗,濾干、干燥(120℃干燥6~8 h),冷卻到室溫備用。

1.4.6 真空抽濾及結晶

活性炭脫色后,經雙層濾紙過濾后用0.45 μm濾膜進行抽濾,收集濾液于55℃進行真空濃縮至稀稠狀,加入3倍體積的95%的乙醇結晶,4℃下靜置12 h,過濾收集晶體。

1.5 測定方法

1.5.1 GABA和L-Glu 的測定方法[10-11]

采用HPLC法測定GABA及L-Glu:Agilent TC C18柱(250 mm ×4.6 mm);進樣量:10μL;紫外檢測波長:254 nm;柱溫:室溫;流動相A:甲醇;流動相B:四氫呋喃-甲醇-0.05mol/L醋酸鈉(pH值6.2)(體積比為5∶75∶20);洗脫方式:線性梯度洗脫程序見表1。

表1 梯度洗脫程序

1.5.2 樣品和標準品柱前衍生反應

取樣品0.1mL,加入0.2mol/L pH值9.8的NaHCO30.9mL,再加入等量的Dns-Cl丙酮(2g/L)溶液,避光,置于30℃下衍生1 h。

1.5.3 轉化液中色素吸收波長的測定

量取一定量轉化液,以該溶液中色素濃度為100%,稀釋不同倍數,配成一定濃度梯度的標準溶液,以去離子水為空白,測量其在450 nm波長下溶液的吸光度,平行3次。

1.5.4 轉化液脫色

選取溫度、時間、pH值和活性炭添加量4個因素,對轉化液進行脫色實驗,過濾,濾液在450 nm下測定吸光值,計算脫色率[12]:

式中:Ds為脫色率;A0為脫色前樣液的吸光度值;A為脫色后樣液的吸光度值

GABA保留率的計算公式:

式中:Dx為GABA保留率,%;C0為脫色前GABA質量濃度,g/L;C為脫色后的GABA質量濃度,g/L。

2 結果與討論

2.1 轉化液中GABA和L-Glu的測定

按照方法1.4.3進行全細胞轉化制備轉化液,對轉化液進行衍生化,用HPLC進行檢測,結果見圖1。

圖1 GABA、L-Glu以及轉化液HPLC檢測圖

用HPLC測得轉化液中GABA的含量為139.2 g,摩爾轉化率為99.3%;由圖1也可以看出,轉化液中L-Glu幾乎檢測不到,因此可以確定本實驗中下一步分離純化過程不需要考慮L-Glu與GABA的分離,減少了繁瑣的離子交換[13]等分離步驟,節約了成本。

2.2 轉化液中色素吸收波長的測定

對轉化液進行全波長掃描,掃描結果表明GABA轉化液無最大吸收波長,根據文獻[14],GABA轉化液中的色素吸收峰應在400~500 nm,按照1.5.3方法對轉化液中色素吸收波長的進行了測定,結果如圖2所示。

由圖2可知,在450 nm下轉化液濃度與吸光度A的相關系數較高,相關性較好,所以選擇450 nm作為檢測波長。

圖2 色素濃度與吸光度(A)的關系

2.3 活性炭的選擇

實驗中發現,不同顆粒大小的活性炭對預處理轉化液脫色效果差異很大,分別選擇不同顆粒大小的活性炭顆粒炭A,顆粒炭B,粉末炭C在相同的條件下對轉化液進行脫色效果比較,結果見表2。

表2 不同顆粒大小的活性炭對脫色率的影響

由表2可知,粉末狀活性炭C的脫色效果十分顯著,經處理后溶液清澈透明,脫色率達到91.2%。因此,選用粉末狀活性炭C作為脫色用炭。

2.4 活性炭脫色條件研究

2.4.1 單因素實驗確定脫色條件

按照工業上活性炭用量不超過3%的原則,選取溫度、時間、pH值和活性炭添加量4個因素,對轉化液進行脫色實驗,過濾,濾液在450 nm下測定吸光值,計算其脫色率、GABA保留率。

活性炭用量對轉化液的脫色效果影響較大(如圖3),隨著活性炭用量的增加脫色效果越來越好,但當活性炭用量超過2.0%時,脫色率增加的幅度比較小,而GABA的損失率卻繼續增加。由實驗結果確定選用2.0%作為最佳活性炭脫色濃度,該用量明顯低于工業應用中活性炭用量不超過3%的要求。

圖3 活性炭用量對脫色效果的影響

轉化液的脫色效果隨著脫色時間的增加而越來越好(如圖4),在超過30 min后,脫色率的變化幅度不大,而GABA的保留率隨著時間的延長卻越來越小,綜合考慮選擇脫色時間為30 min。

圖4 脫色時間對活性炭脫色效果的影響

溫度對活性炭脫色效果影響較大(如圖5)。由圖5可以看出,隨著脫色溫度的升高,脫色率升高,GABA保留率則降低,溫度從30℃升到60℃時,脫色率變化顯著,保留率降低的也較快,溫度升至60℃后,預處理液脫色率變化不明顯,而保留率也繼續降低,因此確定脫色溫度為60℃。

圖5 溫度對活性炭脫色效果的影響

轉化液的pH值對活性炭脫色效果有一定的影響(見圖6),在pH值為5.0時,脫色率達到最大為93.3%,此時GABA的保留率也較高為89.3%,所以選擇脫色pH值為5.0。

圖6 pH值對活性炭脫色效果的影響

2.4.2 正交設計確定活性炭脫色最佳工藝條件

根據單因素實驗結果,選擇四因素三水平,按L9(43)進行正交實驗,見表3,以確定最佳的活性炭脫色工藝條件。

表3 活性炭脫色因素水平表

以預處理轉化液的脫色率、保留率為指標,進行正交試驗,確定活性炭脫色的最佳工藝條件,具體的試驗結果見表4。

表4 活性炭脫色正交試驗設計及結果

由表4分析得知,影響活性炭脫色效果的因素中,按影響程度的大小順序為B>D>C>A。最佳的工藝條件為A2B3C3D2;而在脫色過程中對GABA的保留率的影響因素順序為A>D>C>B,依次為pH值、時間、活性炭添加量和溫度,最佳工藝條件為A1B3C1D2。綜合考慮脫色率和GABA的保留率,最終確定工藝條件為A1B3C1D2,即在70℃下、調節pH值為4.0、添加1.5%的活性炭、脫色40 min。在最佳工藝條件下進行了脫色的效果試驗,脫色率為98.42%,GABA的保留率為97.23%。

2.5 轉化液中GABA分離純化及產品質量評價

按照方法1.4.3進行全細胞轉化制備的轉化液,用HPLC測其中GABA的含量為139.2 g,按上述脫色條件進行進行脫色后,旋轉蒸發濃縮至稀糊狀,加入3倍體積的95%乙醇靜置12 h,過濾干燥后得到128.7gGABA成品,用氨基酸自動分析儀分析(圖7),產品純度可達96.7%,整個工藝GABA的回收率為89.4%。

圖7 GABA成品氨基酸自動分析儀分析圖譜

3 結論

目前,以生物合成法生產GABA,由于下游分離提取困難,已成為微生物法工業化生產GABA的主要制約因素,因此GABA的分離提取工藝已成為研究熱點。王文等[3]采用高速離心、超濾和稀釋過濾相結合的方法,將GABA的回收率由原來的50%提高到將近95%,但 GABA的純度仍然較低,僅為31.63%。王兢[4]采用NKA-9大孔吸附樹脂和陰離子交換樹脂D201對乳酸菌SK005發酵生產GABA的發酵液進行脫色純化處理,產品的純度達到了90.8%,但收率不高。本研究小組前期利用高轉化率的植物乳桿菌全細胞轉化法生產GABA,避免了發酵液成分復雜給下游提取造成的不利影響,但同時也存在轉化液顏色較深等問題,因此本研究對轉化液脫色工藝條件進行了研究。確定了活性炭脫色的最佳工藝條件:活性炭用量1.5%,脫色溫度70℃,pH值4.0,脫色時間40 min,GABA轉化液的脫色率高達98.42%,GABA的保留率可達97.23%。運用此工藝對GABA轉化液進行進一步分離純化,GABA的回收率為89.4%,純度為96.7%,回收率和純度在國內均處于領先水平,而且該工藝操作簡單,成本低,具有工業化應用的優勢。

[1]陳恩成,張名位,彭超英,等.γ-氨基丁酸的功能特性及其在食品原料中的富集技術研究進展[J].湖北農學院學報,2004,24(4):316-320.

[2]Huang J,Mei L H,Xia J.Application of artificial neural network coupling particle swarm optimization algorithm to biocatalytic production of GABA[J].Biotechnol Bioeng,2006,96(5):924-931.

[3]王文,馮晶.超濾技術在GABA發酵液分離純化過程中的應用[J].江蘇大學學報:自然科學版,2005,26(1):5-8.

[4]王兢.高純度γ-氨基丁酸的制備及脫色工藝研究[D].無錫:江南大學碩士論文,2006.

[5]陳穎.米糠中γ-氨基丁酸的富集[D].無錫:江南大學碩士論文,2005.

[6]劉清,姚惠源.生產γ-氨基丁酸乳酸菌的選育及發酵條件優化[J].氨基酸與生物資源,2004,26(1):40-43.

[7]Masaru Nomura,Ikuyo Nakajima.Lactococcus lactis contains only one glutamate decarboxylase gene[J].Microbiology,1999(145),1 375-1 380.

[8]張偉國,錢和.氨基酸生產技術及其應用[M].北京:中國輕工業出版社,1997.

[9]吳田瑞,楊林.食用變性淀粉的性質及用途[J].陜西糧油科技,1995,20(4):16-19.

[10]閆淑蓮,趙光,劉永利.反相高效液相色譜-丹酰氯柱前衍生法的氨基酸分析測定[J].首都醫科大學學報,2003,24(3):338-339.

[11]鄧福華,梅樂和,黃俊.發酵液中γ-氨基丁酸含量的高效液相色譜法測定[J].材料科學與工程學報,2005,23(???:100-102.

[12]楊云,劉福勤,馮衛生,等.堿法提取大棗渣多糖及活性炭脫色的工藝研究[J].食品與發酵工業,2004,30(7):30-32.

[13]黃美娥,于華忠,曹庸.蕨菜葉、莖中γ-氨基丁酸的提取分離及含量測定[J].氨基酸和生物資源,2004,27(1):77-78.

[14]馬曉博.利用米糠谷氨酸脫發酶富集γ-氨基丁酸及其分離與純化[D].無錫:江南大學碩士論文,2008.

Study on Separation and Purification Technology of γ-aminobutyric Acid by Whole-cell Bioconversion

Zhang Shu-cong,Liu Ting-ting,Yang Tao-wei,Xia Hai-feng,Rao Zhi-ming
(Key Laboratory of Industrial Biotechnology,Ministry of Education,School of Biotechnology,Jiangnan University,Wuxi 214122,China)

A strain named Lactobacillus plantarum GB01-21 that can produce γ-aminobutyric(GABA)efficiently was screened in our laboratory.During the 20 hours,200g/L L-Glu can be transformed into 140g/L GABA.In this work,γ-aminobutyric was separated and purified from the whole-cell transforming solution.The decolorizing technical conditions such as temperature,time,pH and amount of active carbon were studied.As a result,the optimum decolorization conditions were determined through single factor and orthogonal experiments as follows:activated carbon dosage 1.5%,decolorization temperature 70 ℃,pH value 4.0 and decolorization time 30 min.Under these conditions,the decolorization rate and recovery rate of bioconversion broth reached 98.42%and 97.23%,respectively.Finally,γ-aminobutyric acid was isolated and purified from bioconversion broth and the recovery rate and the purity of γ-aminobutyric acid was 89.4%and 96.7%,respectively.These findings pave the way for industrial production of GABA.

γ-aminobutyric acid,whole-cell transforming,decolorization,separation and purification

碩士研究生(饒志明教授為通訊作者)

*國家“863計劃”(2007AA02Z207);國家自然科學基金(30970056);霍英東青年基金(121020)

2010-06-03,改回日期:2010-06-28

猜你喜歡
氨基丁酸脫色活性炭
氨基丁酸對畜禽應激影響的研究進展
玩轉活性炭
真空處理對發芽稻谷中γ-氨基丁酸含量的影響
神奇的活性炭
脫色速食海帶絲的加工
7.0 T MR γ-氨基丁酸化學交換飽和轉移成像的新技術研究
改性活性炭吸附除砷的研究
直接合成法制備載銀稻殼活性炭及其對苯并噻吩的吸附
應用D301R樹脂對西洋參果脫色工藝研究
桑葉中γ-氨基丁酸含量及富集方法的研究進展
91香蕉高清国产线观看免费-97夜夜澡人人爽人人喊a-99久久久无码国产精品9-国产亚洲日韩欧美综合